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毕赤酵母的摇瓶发酵方法

IT圈 admin 35浏览 0评论

2024年5月7日发(作者:李衍)

毕赤酵母的摇瓶发酵方法:

一、 摇瓶发酵方法

:

毕赤酵母摇瓶发酵方法分为两个阶段,

1

、酵母菌株生长阶段;

2

、 脂肪酶 诱导表达阶段。

1

、 酵母生长阶段。

准备试剂:

1000ml BMGY

培养基,

1000ml BMM

培养基,

10X

的甲醇,摇瓶

1L

(灭

菌),温控摇床,

50ml

离心管(灭菌)。紫外分光光度计,石英比色皿。 以下所有

操作均在超净台内或者无菌条件下完成。

1

) 往灭好菌的

IL

摇瓶中加入

100mlBMG

培养基,然后加入约

1ml

脂肪酶菌 株

(培养基:菌液

=100

1

),用透气膜封口(透气,但是细菌不能透过) 。

0

置于温控摇床上,温度调至

30C

,转速为

250-300rpm/min

,使酵母生长,

OD

600

=2.0-6.0

,时间约为

15-24

小时。

2

) 将发酵液转入

50ml

离心管,

1500g-3000g

离心

5min

。去掉上清,用

BMMY

养基将菌体浓度稀释至

OD

=1.0

,约有

500ml

左右。将稀释后的发酵液 分别

加入到

1L

的药瓶中,每个摇瓶

150ml

发酵液(绝不能超过

200ml

)。

0

3

) 将摇瓶置于温控摇床上,温度调至

30C

,转速为

250-300rpm/min

,使酵 母

表达脂肪酶,每

24

小时加入一次

5%

的甲醇,使甲醇的终浓度为

0.5%

。 连续

诱导表达

48

小时。

4

) 将发酵液进行

12000rpm/min

离心

5min

,取上清(若上清仍混浊,可反复 离

心);进行酶活分析和蛋白含量分析。

BMG

培养基的配制(

1000ml

):

20g

蛋白胨(

peptone

,10g

酵母提取物(

Yeast

Extract

,

加水至

700ml

;

121

°

C

高温灭菌

20min

。然后分别在无菌条件下加入

10X

YNB 100ml, 10X

磷酸钾缓冲液(

PH6.0

100ml

10X

甘油

100ml

BMM

培养基的配制方法(

1000ml

):

20g

蛋白胨(

peptone

,10g

酵母提取物

加 水

0

700ml

121C

高温灭菌

20min

。然后分别在无菌条件下加入

10XYNB100ml

,

10X

酸钾缓冲液(

PH6.0

100ml

10X

甲醇

100ml

10X

的甲醇的配制:取甲醇(

AR

上海医药集团有限公司)

5ml

,加入无菌水

95ml

, 配

置成

5%

勺甲醇溶液,用

0.22

M

的微孔滤膜(

millipore

公司)过滤除菌,该 溶液

在常温下的保质期为两个月。

10X

YNE

配制方法

(1000ml)

:称取

YNB(

生化试剂,上海生物工程公司,不含

硫酸铵)

34g,

加入

100g

硫酸铵,待完全溶解后,用

0.22

M

的微孔滤膜

millipore

公司)过滤除菌。该溶液在常温下的保质期可以达

1

年。

10X

的磷酸缓冲液的配制方法:分别配制

1M

&HPO

KHPQ

,然后将

132ml

0

K

2

HPQ

868ml

KHPQ

混合,调节

PH

6.0

;调

PH

用磷酸或者

KQH

然后

121C

温灭菌

20min

。该溶液在常温下的保质期可以达

1

年以上。

0

10X

的甘油的配制方法(

1000ml

):取

100ml

的甘油加水至

1000ml

,然后

121C

高温

灭菌

20min

。该溶液在常温下的保质期可以达

1

年以上。

5

.问:在下是初学者,关于毕赤酵母的诱导表达有些问题:

24h

向培养基中添加

100

%甲醇至终浓度为

制?

还有,关于

BMMY

的甲醇浓度有些材料里的是

0.5%

,有的是

1 .0%

,应该是哪个? “每

0.5

1.0%”

这里的甲醇浓度如何控

24h

向培养基中添加

100

%甲醇至终浓度为

0.5

1.0%

”这里的甲醇浓度和

BMMY

中的甲 醇浓度是

要一致的吗?

另外一个小问题,配

参考见解

1

10%

甘油时,移入量筒的

1 00%

甘油一部分会粘在管壁上,难免

最后配成的

10%

甘油会有所偏差,这样要不要紧?操作上是否有问题?

k4N*vx1 ~

“每

24h

向培养基中添加

100

%甲醇至终浓度为

0.5

1.0%

” 我可以给你解释一下:

#qbk! 40Vh5o*UF

1

、它的意思是每隔

24

小时,不断的添加 纯甲醇(指的是甲醇试剂含有

100

%甲醇,

不含有其他的成分) 至终浓度为

0.5

1.0%

,指的是添加的甲醇占总体积的

0.5

1.0%

(即

100

升培养基含有甲醇

0.5

1.0

升,如果是质量体积比则是每

100

毫升培养基含有甲醇

0.5

1.0

克)

2

、只要你添加的量在以上的这个范围就可以,

当然可以根据实验的实际情况进行调整,

但是一般要在此范围内。

&m9~5k&&b@* 8w

3

、 配

10%

甘油时,注意先加入部分水后在称取甘油加入,然后在定容到所需要的体 积,这样

就可以避免甘油粘在管壁上, 甘油易溶于水, 配好后, 再粘在管壁上就不会影响了。

4

、 建议你对实验的基础知识多多学习,你会又很大进步的!

参考见解

2

5 44LbP9

&Gh*1AM8

1

、如何确保加入后甲醇浓度在此范围内?你可以进行检测啊! 只要检测你的培养基中 剩余的

甲醇含量即可,可以计算出你应该加多少甲醇,

24

小时可以检测一次。

wM7Eq&W&6RM7 0Q8M

2

、至于为什么

24

小时加一次,具体原因我不是很清楚,但是我觉得应该是发酵中

尤 其是

发酵瓶)培养基的体积太小,不能太多的取样,取样太多会影响体积、蒸发量、无菌等 指标的。而且

在这个时间内酵母在甲醇终浓度为

0.5

1.0%

中生长在其许可范围内,其甲 醇消耗不会超过这个范

围的,时间安排也比较合理,所以可能是个经验值吧! !其实不需要

考虑甲醇的消耗, 只要检测它的剩余即可, 根据剩余可以计算出你需要加入的甲醇体积或者

3

、 另外你不一定一次就加入,可以连续的在

发酵罐还可以,摇瓶怎么办呢! !

2w“

24

小时加入,不过操作就非常麻烦了,

4

、 至于一定时间从中取出

1ml

,这个变化应该不需要要计算进去的吧,你取样的浓度 和你培

养基里面的是一样的, 如果这考虑进去的话, 那么蒸发量、 两种液体混合的体积变化、 湿度等等你

也要考虑,就太繁了,他们的影响很小的,没有必要计算在内。

2024年5月7日发(作者:李衍)

毕赤酵母的摇瓶发酵方法:

一、 摇瓶发酵方法

:

毕赤酵母摇瓶发酵方法分为两个阶段,

1

、酵母菌株生长阶段;

2

、 脂肪酶 诱导表达阶段。

1

、 酵母生长阶段。

准备试剂:

1000ml BMGY

培养基,

1000ml BMM

培养基,

10X

的甲醇,摇瓶

1L

(灭

菌),温控摇床,

50ml

离心管(灭菌)。紫外分光光度计,石英比色皿。 以下所有

操作均在超净台内或者无菌条件下完成。

1

) 往灭好菌的

IL

摇瓶中加入

100mlBMG

培养基,然后加入约

1ml

脂肪酶菌 株

(培养基:菌液

=100

1

),用透气膜封口(透气,但是细菌不能透过) 。

0

置于温控摇床上,温度调至

30C

,转速为

250-300rpm/min

,使酵母生长,

OD

600

=2.0-6.0

,时间约为

15-24

小时。

2

) 将发酵液转入

50ml

离心管,

1500g-3000g

离心

5min

。去掉上清,用

BMMY

养基将菌体浓度稀释至

OD

=1.0

,约有

500ml

左右。将稀释后的发酵液 分别

加入到

1L

的药瓶中,每个摇瓶

150ml

发酵液(绝不能超过

200ml

)。

0

3

) 将摇瓶置于温控摇床上,温度调至

30C

,转速为

250-300rpm/min

,使酵 母

表达脂肪酶,每

24

小时加入一次

5%

的甲醇,使甲醇的终浓度为

0.5%

。 连续

诱导表达

48

小时。

4

) 将发酵液进行

12000rpm/min

离心

5min

,取上清(若上清仍混浊,可反复 离

心);进行酶活分析和蛋白含量分析。

BMG

培养基的配制(

1000ml

):

20g

蛋白胨(

peptone

,10g

酵母提取物(

Yeast

Extract

,

加水至

700ml

;

121

°

C

高温灭菌

20min

。然后分别在无菌条件下加入

10X

YNB 100ml, 10X

磷酸钾缓冲液(

PH6.0

100ml

10X

甘油

100ml

BMM

培养基的配制方法(

1000ml

):

20g

蛋白胨(

peptone

,10g

酵母提取物

加 水

0

700ml

121C

高温灭菌

20min

。然后分别在无菌条件下加入

10XYNB100ml

,

10X

酸钾缓冲液(

PH6.0

100ml

10X

甲醇

100ml

10X

的甲醇的配制:取甲醇(

AR

上海医药集团有限公司)

5ml

,加入无菌水

95ml

, 配

置成

5%

勺甲醇溶液,用

0.22

M

的微孔滤膜(

millipore

公司)过滤除菌,该 溶液

在常温下的保质期为两个月。

10X

YNE

配制方法

(1000ml)

:称取

YNB(

生化试剂,上海生物工程公司,不含

硫酸铵)

34g,

加入

100g

硫酸铵,待完全溶解后,用

0.22

M

的微孔滤膜

millipore

公司)过滤除菌。该溶液在常温下的保质期可以达

1

年。

10X

的磷酸缓冲液的配制方法:分别配制

1M

&HPO

KHPQ

,然后将

132ml

0

K

2

HPQ

868ml

KHPQ

混合,调节

PH

6.0

;调

PH

用磷酸或者

KQH

然后

121C

温灭菌

20min

。该溶液在常温下的保质期可以达

1

年以上。

0

10X

的甘油的配制方法(

1000ml

):取

100ml

的甘油加水至

1000ml

,然后

121C

高温

灭菌

20min

。该溶液在常温下的保质期可以达

1

年以上。

5

.问:在下是初学者,关于毕赤酵母的诱导表达有些问题:

24h

向培养基中添加

100

%甲醇至终浓度为

制?

还有,关于

BMMY

的甲醇浓度有些材料里的是

0.5%

,有的是

1 .0%

,应该是哪个? “每

0.5

1.0%”

这里的甲醇浓度如何控

24h

向培养基中添加

100

%甲醇至终浓度为

0.5

1.0%

”这里的甲醇浓度和

BMMY

中的甲 醇浓度是

要一致的吗?

另外一个小问题,配

参考见解

1

10%

甘油时,移入量筒的

1 00%

甘油一部分会粘在管壁上,难免

最后配成的

10%

甘油会有所偏差,这样要不要紧?操作上是否有问题?

k4N*vx1 ~

“每

24h

向培养基中添加

100

%甲醇至终浓度为

0.5

1.0%

” 我可以给你解释一下:

#qbk! 40Vh5o*UF

1

、它的意思是每隔

24

小时,不断的添加 纯甲醇(指的是甲醇试剂含有

100

%甲醇,

不含有其他的成分) 至终浓度为

0.5

1.0%

,指的是添加的甲醇占总体积的

0.5

1.0%

(即

100

升培养基含有甲醇

0.5

1.0

升,如果是质量体积比则是每

100

毫升培养基含有甲醇

0.5

1.0

克)

2

、只要你添加的量在以上的这个范围就可以,

当然可以根据实验的实际情况进行调整,

但是一般要在此范围内。

&m9~5k&&b@* 8w

3

、 配

10%

甘油时,注意先加入部分水后在称取甘油加入,然后在定容到所需要的体 积,这样

就可以避免甘油粘在管壁上, 甘油易溶于水, 配好后, 再粘在管壁上就不会影响了。

4

、 建议你对实验的基础知识多多学习,你会又很大进步的!

参考见解

2

5 44LbP9

&Gh*1AM8

1

、如何确保加入后甲醇浓度在此范围内?你可以进行检测啊! 只要检测你的培养基中 剩余的

甲醇含量即可,可以计算出你应该加多少甲醇,

24

小时可以检测一次。

wM7Eq&W&6RM7 0Q8M

2

、至于为什么

24

小时加一次,具体原因我不是很清楚,但是我觉得应该是发酵中

尤 其是

发酵瓶)培养基的体积太小,不能太多的取样,取样太多会影响体积、蒸发量、无菌等 指标的。而且

在这个时间内酵母在甲醇终浓度为

0.5

1.0%

中生长在其许可范围内,其甲 醇消耗不会超过这个范

围的,时间安排也比较合理,所以可能是个经验值吧! !其实不需要

考虑甲醇的消耗, 只要检测它的剩余即可, 根据剩余可以计算出你需要加入的甲醇体积或者

3

、 另外你不一定一次就加入,可以连续的在

发酵罐还可以,摇瓶怎么办呢! !

2w“

24

小时加入,不过操作就非常麻烦了,

4

、 至于一定时间从中取出

1ml

,这个变化应该不需要要计算进去的吧,你取样的浓度 和你培

养基里面的是一样的, 如果这考虑进去的话, 那么蒸发量、 两种液体混合的体积变化、 湿度等等你

也要考虑,就太繁了,他们的影响很小的,没有必要计算在内。

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