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益生菌固体饮料对小鼠肠道调节作用的初步研究

IT圈 admin 30浏览 0评论

2024年6月10日发(作者:安莎莉)

分析检测

益生菌固体饮料对小鼠肠道调节作用的初步研究

李 英

1

,岳林涛

2

,张永杰

2

,李 纳

2

,王怡凡

1

,关慧敏

1

(1.山西振东五和医养堂股份有限公司,山西长治 046000;2.药食同源功能食品山西省重点实验室,山西长治 046000)

摘 要:目的:研究益生菌固体饮料对小鼠的肠道调节作用。方法:小鼠按不同剂量(1 g·kg

-1

、2 g·kg

-1

3 g·kg

-1

)灌胃28 d,建立大黄水煎液致脾虚模型,检测血清D-木糖含量、淀粉酶活性、肠胃实验肠推进率、

胃残留率、肠道内容物pH值及2,4-二硝基氟苯(2,4-Dinitrofluorobenzene,DNFB)耳肿胀度。结果:灌胃益

生菌固体饮料可提高小鼠D-木糖含量和淀粉酶活性(

P

<0.05);调节胃肠道异常蠕动,降低肠推进率、提

高胃残留率(

P

<0.05);恢复肠道pH值(

P

<0.05);降低小鼠耳肿胀度(

P

<0.05)。结论:益生菌固体

饮料具有肠道调节作用,并可增强免疫力。

关键词:益生菌;脾虚模型;肠道调节

A Preliminary Study of the Effect of Probiotic Solid Drinks on

Intestinal Regulation in Mice

LI Ying

1

, YUE Lintao

2

, ZHANG Yongjie

2

, LI Na

2

, WANG Yifan

1

, GUAN Huimin

1

( Zhendong Wuhe Medical Care Hall Co., Ltd., Changzhi 046000, China; Laboratory of Medicinal

and Food Homologous Functional Foods, Changzhi 046000, China)

Abstract:

Objective: To study the intestinal regulatory effect of probiotic solid beverage on mice. Method: Mice

were given different doses (1 g·kg

-1

, 2 g·kg

-1

, 3 g·kg

-1

) by gavage for 28 days to establish a spleen deficiency model

induced by decoction of Dahuang. Serum D-xylose content, amylase activity, intestinal propulsion rate, gastric residue

rate, pH value of intestinal contents, and ear swelling degree of 2,4-dinitrofluorobenzene (DNFB) were measured.

Result: Oral administration of probiotic solid beverage can increase the D-xylose content and amylase activity in

mice (

P

<0.05); regulating abnormal peristalsis of the gastrointestinal tract, reducing intestinal propulsion rate,

and increasing gastric residual rate (

P

<0.05); restore intestinal pH value(

P

<0.05); reduce mouse ear swelling (

P

<0.05). Conclusion: Probiotic solid drinks have intestinal regulatory effects and can enhance immunity.

Keywords:

probiotics; spleen deficiency model; intestinal regulation

益生菌是发挥有益作用的活性有益微生物的总

[1]

,其无致病性,高度耐受胃酸和胆汁,能黏附

于肠黏膜而阻止病原微生物的依附,有利于提高人

体免疫力

[2]

。目前研究的益生菌以双歧杆菌、乳酸

杆菌为主,还包括一些其他共生的细菌。其主要

生理功能包括调节肠道微生物平衡、改善肠上皮细

胞屏障功能、调节免疫应答、促进消化吸收等

[1]

本文对制备的益生菌固体饮料复合粉的肠道调节作

用进行功效验证,为后期产品调整提供实验依据。

[2]

17~20 g,购自河南省实验动物中心,许可证编号

为SCXK(豫)2017-0001,批号为20211126,质量

合格证编号为NO.418024。领取后于

动物房适应性饲养1周,在此期间可自由饮水、进

食,保持充足的日照和透风。环境保持清洁恒温,

饲养环境平均温度、湿度分别为25

、37%,15~

20次/h全新风。饲料(批号:21093213)、垫料(批号:

21089813),北京科澳协力饲料有限公司。

1.2 仪器与试剂

益生菌固体饮料(山西振东五和医养堂股份有限

公司);大黄(安国市兴华中药材有限公司);2,4-

二硝基氟苯、蓖麻油(麦克林);丙酮(天津市风船

化学);D-木糖(阿拉丁);D-木糖测定试剂盒(索

1 材料与方法

1.1 实验动物

选用KM小鼠150只,SPF级,雌性,体重

作者简介:李英(1974—),女,山西长治人,硕士,工程师。研究方向:功能食品研究与开发。

42

食品安全导刊 2023年9月(上)

Copyright©博看网. All Rights Reserved.

分析检测

莱宝);a-淀粉酶试剂盒(南京建成)。糊推进的距离占幽门至回盲部距离的百分率为小肠

推进率。剪去黑色半固体糊部分5 cm,放入5mL EP

管中保存,待测pH值。取小鼠的胃,用滤纸擦干后

称其全重,再沿胃大弯剪开胃,洗去胃内容物,称

胃净重。胃全重与胃净重的差值为胃内残留物重量,

以胃内残留黑色半固体糊占所灌胃黑色半固体糊的

质量百分比为胃内残留率。将小鼠血液在3 500 r·min

-1

下离心10 min得血清,依照淀粉酶测试盒说明方法

测定淀粉酶活性。

(3)益生菌固体饮料对免疫耳肿胀的影响。

各组剩余小鼠10只,用剃毛器清理小鼠腹部皮

毛(面积为3 cm

×

3 cm),将2,4-二硝基氟苯

酶标仪(伯腾,EPOCH);耳肿胀打孔器(原阳

县振华教学仪器、YLS-Q4);电子pH计(赛多利斯

科学仪器,PB-10);高速离心机(安徽中科中佳科

学仪器,HC-2518);电热恒温水浴锅(北京中兴伟

业仪器,DZKW);单人双面垂直送风净化台(上海

天恒医疗器械,JHT-315AB)。

1.3 实验方法

1.3.1 实验分组及剂量

将150只小鼠随机为5组,每组30只,5个组

别分别为空白组、模型组和3个剂量组。3个剂量组

小鼠益生菌固体饮料灌胃剂量分别设置为人体使用

剂量的10倍、20倍、30倍,分别记为低(1 g·kg

-1

)、(2,4-Dinitrofluorobenzene,DNCB)溶液涂抹于小鼠

中(2 g·kg

-1

)、高(3 g·kg

-1

)剂量组。小鼠按剂量每天腹部(50

μ

L/只),继续给药4 d后,将20

μ

L DNCB

灌胃1次(灌胃量为0.3 mL/10 g bw,空白组灌胃等

体积蒸馏水),连续灌胃28 d后对动物各项指标进

行测定。

1.3.2 建立脾虚模型

制作100%大黄水煎液:取大黄药材适量,加

10倍蒸馏水,煮沸后煎煮9 min,过滤,旋转蒸发浓

缩至相当于生药材浓度1 g·mL

-1

,即得100%大黄水

煎液,备用。

实验第4周建立脾虚小鼠模型,空白组给予等

体积蒸馏水;模型组及剂量组小鼠灌胃给予100%大

黄水煎液(0.1 mL/10 g bw),小鼠按剂量每天灌胃

1次。造模组小鼠出现饮食减少、体重减轻、精神不

振、畏惧光、喜欢抱团、皮毛杂乱无光泽和大便黏

腻等情况,表示小鼠造模成功。造模成功后开始检

测相关数据。

1.3.3 实验操作

(1)D-木糖含量检测。各组小鼠随机选取10只,

末次给药1 h后,灌胃5% D-木糖溶液4 mL·kg

-1

溶液涂抹于小鼠左耳两面进行致敏攻击,攻击24 h

后颈椎脱臼处死小鼠,用直径8 mm打孔器打下左右

两侧同部位的耳片,精密称重,以左右耳片质量之

差为肿胀度。

1.3.4 数据处理

实验数据采用(

x

±s

)表示,使用SPSS 22.0统计

软件分析,用单因素方差分析及

T

检验,

P

<0.05

代表有统计学差异。

2 结果与分析

由表1可知,模型组与空白组比较,模型组D-

木糖含量、淀粉酶活性显著降低,耳肿胀度显著上升,

差异有统计学意义(

P

<0.05)。剂量组与模型组比较,

各剂量组D-木糖含量、高剂量淀粉酶活性显著升高,

各剂量组耳肿胀度均显著降低,差异有统计学意义

P

<0.05)。

大黄水煎液可致小鼠腹泻,表现为胃部固摄能

力减弱、肠道蠕动加快,导致肠道水分吸收减少,

40 min后眼球取血,3 500 r·min

-1

离心10 min得血清,

胃液下流,肠道pH降低。由表1可知,模型组与空

白组比较,模型组肠推进率显著升高、胃残留率显

依照D-木糖测试盒说明方法测定。

(2)小鼠肠胃实验及淀粉酶活性检测。各组小鼠

随机选取10只,末次灌胃后禁食不禁水,24 h后,

给小鼠灌服营养性半固体糊(羧甲基纤维素钠10 g、

奶粉16 g、淀粉8 g、糖8 g、活性炭3 g和蒸馏水

100 mL)0.8 mL,于灌胃后30 min摘眼球取血后立

即开腹,结扎胃贲门和幽门,取出小肠,剥离后直

铺于白纸上,用直尺测量幽门到回盲肠的距离及幽

门至黑色半固体糊推进前沿的距离,以黑色半固体

著降低、小肠内容物pH值显著下降,差异有统计学

意义(

P

<0.05)。剂量组与模型组比较,中、高剂量

组肠推进率显著降低,中剂量组胃残留率显著升高,

中、高剂量组小肠内容物pH值显著升高,差异有统

计学意义(

P

<0.05)。

3 结论与讨论

木糖是一种常见的五碳糖,不会存在于血液中,

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Sep.2023

CHINA FOOD SAFETY

43

分析检测

表1 小鼠D-木糖、淀粉酶活性、耳肿胀及肠胃检测结果

组别

空白组

模型组

低剂量

中剂量

高剂量

剂量

(/g·kg

-1

/

/

1

2

3

D-木糖含量

(/mg·g

-1

0.789

±

0.041 6

0.597

±

0.067 6

#

0.761

±

0.081 1

*

0.747

±

0.043 3

*

0.775

±

0.037 4

*

淀粉酶活性

(/U·dL

-1

2 139.07

±

259.18

1 959.39

±

41.77

1 929.85

±

13.93

2 237.54

±

50.44

*

耳肿胀度/g

0.011 9

±

0.000 99

0.012 2

±

0.001 22

*

0.014 1

±

0.002 07

*

0.009 6

±

0.002 07

*

肠推进率/%

0.71

±

0.140

0.90

±

0.021

#

0.85

±

0.049

0.77

±

0.082

*

0.77

±

0.085

*

胃残留率/%小肠内容物pH值

0.99

±

0.153

0.86

±

0.132

#

0.91

±

0.087

0.94

±

0.102

*

0.93

±

0.075

7.78

±

0.282

6.66

±

0.240

#

7.16

±

0.280

7.45

±

0.340

*

7.59

±

0.749

*

1 883.08

±

105.55

#

0.016 6

±

0.002 19

#

  注:#表示与空白比较

P

<0.05;*表示与模型比较

P

<0.05。

服用后由小肠吸收,肝脏不代谢,由肾脏排出,因

此口服D-木糖可反映小肠吸收功能状况

[3-4]

α

-淀

粉酶是肠液中的主要消化酶,由胰腺分泌,在小肠

中保持较高的浓度

[5]

。徐复霖等

[6]

研究了两种不同

发现大黄致虚可使淀粉酶活性降低。淀粉酶是一种

机体的消化功能就会受到影响

[3]

。小肠是消化管中最

长的部分,是消化、吸收的主要部位,D-木糖和淀

粉酶活性可反映小肠的消化吸收能力。

肠道菌群是一个相对比较复杂且非常活跃的微

生态系统,数量和种类很庞大,与大多数疾病的发生、

发展、转归等联系非常紧密,又被称为控制人体健

康的“第二基因组”。肠道的微环境稳态是保证肠

道菌群稳定的外在表现,当肠道菌群平衡被打破,

其环境也会出现变化。测定肠道内容物pH值,可间

接观测肠道菌群稳态。

[7]

木糖含量和淀粉酶活性;可调节小鼠胃肠道蠕动能

力,降低由大黄刺激性泻下作用导致的胃肠道异常

蠕动;并可恢复肠道pH值,调节由于大黄作用有益

菌属排出导致的肠道菌群失衡,恢复肠道菌群微生

上所述,益生菌固体饮料具有肠道调节作用,并可

脾虚造模方法对小鼠肠液分泌及淀粉酶活性的影响,态平衡;并可降低小鼠耳肿胀度,提高免疫力。综

非常重要的消化酶,淀粉酶如果分泌不足、活性降低,增强免疫力。

参考文献

[1]郑少君,王志仁,王永前,等.益生菌防治抑郁症

的研究进展[J].国际精神病学杂志,2019,46(1):24-26.

[2]沈通一,秦环龙.益生菌对肠微生物生态学影响的

研究进展[J].肠外与肠内营养,2004(4):242-246.

[3]雷英,贺志有,刘丽莎,等.参苓白术散对脾虚证

小鼠血清淀粉酶、D-木糖、胃泌素及小肠组织学变化的研

究[J].中药药理与临床,2012,28(2):6-9.

[4]张明,吴晶,彭真,等.荷泽颗粒对脾虚大鼠血清

胃泌素、D-木糖浓度、磷酸肌酸激酶的影响[J].中国中医

中医的脾是涉及消化吸收、水盐代谢、能量转化、

急症,2020,29(2):267-269.

血液、免疫及神经内分泌等多系统的综合功能单位,

[5]DAVENPORT H W.消化道生理学[M].北京:科学

脾虚证即是这些系统功能降低的综合表现

[8]

。故脾虚

证是以消化吸收功能低下为主的多器官和多系统功

能减弱的综合病理变化。过量或长期服用苦寒药

(如大黄)会损伤脾胃、耗伤正气,而产生脾虚。大

黄性寒、味苦,主要功效是攻下积滞等;主要药效

活性成分为蒽醌类、蒽酮类等;现代临床研究表明,

大黄泻下作用是由于蒽醌代谢产生蒽酮,其泻下作

用使得肠道菌群紊乱,大量有益菌属被排出,肠道

内微生态平衡被打破,短时间内调节肠道正常蠕动

的菌群难以恢复平衡所导致

[10]

。常见的肠推进及胃

残留实验,可直观地观测肠胃功能变化。

实验结果表明,益生菌固体饮料可减缓由大黄

水煎液灌胃导致的肠胃消化吸收能力下降,提高D-

[9]

[9]

出版社,1976.

[6]徐复霖,唐铁军,陈育尧,等.两种不同脾虚造模

方法对小鼠肠液分泌及淀粉酶活性的影响[J].北京实验动

物科学与管理,1994(3):17-18.

[7]李明丹,黄立建,贾林,等.复方薏苡仁方对小

鼠肠道菌群及微环境的调节作用[J].中国微生态学杂

志,2018,30(1):14-18.

[8]徐涛.中医脾虚证的现代研究进展[J].时珍国医国

药,2002(4):243-245.

[9]杨旭东,张杰,王崴.参苓白术散对脾虚小鼠肠保护

作用及其机制的研究[J].牡丹江医学院学报,2009,30(5):9-11.

[10]阮兴秋,严晶,孙志广.肠道微生态与大黄毒副反应

相关性及干预策略研究[J].西部中医药,2021,34(12):159-163.

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食品安全导刊 2023年9月(上)

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2024年6月10日发(作者:安莎莉)

分析检测

益生菌固体饮料对小鼠肠道调节作用的初步研究

李 英

1

,岳林涛

2

,张永杰

2

,李 纳

2

,王怡凡

1

,关慧敏

1

(1.山西振东五和医养堂股份有限公司,山西长治 046000;2.药食同源功能食品山西省重点实验室,山西长治 046000)

摘 要:目的:研究益生菌固体饮料对小鼠的肠道调节作用。方法:小鼠按不同剂量(1 g·kg

-1

、2 g·kg

-1

3 g·kg

-1

)灌胃28 d,建立大黄水煎液致脾虚模型,检测血清D-木糖含量、淀粉酶活性、肠胃实验肠推进率、

胃残留率、肠道内容物pH值及2,4-二硝基氟苯(2,4-Dinitrofluorobenzene,DNFB)耳肿胀度。结果:灌胃益

生菌固体饮料可提高小鼠D-木糖含量和淀粉酶活性(

P

<0.05);调节胃肠道异常蠕动,降低肠推进率、提

高胃残留率(

P

<0.05);恢复肠道pH值(

P

<0.05);降低小鼠耳肿胀度(

P

<0.05)。结论:益生菌固体

饮料具有肠道调节作用,并可增强免疫力。

关键词:益生菌;脾虚模型;肠道调节

A Preliminary Study of the Effect of Probiotic Solid Drinks on

Intestinal Regulation in Mice

LI Ying

1

, YUE Lintao

2

, ZHANG Yongjie

2

, LI Na

2

, WANG Yifan

1

, GUAN Huimin

1

( Zhendong Wuhe Medical Care Hall Co., Ltd., Changzhi 046000, China; Laboratory of Medicinal

and Food Homologous Functional Foods, Changzhi 046000, China)

Abstract:

Objective: To study the intestinal regulatory effect of probiotic solid beverage on mice. Method: Mice

were given different doses (1 g·kg

-1

, 2 g·kg

-1

, 3 g·kg

-1

) by gavage for 28 days to establish a spleen deficiency model

induced by decoction of Dahuang. Serum D-xylose content, amylase activity, intestinal propulsion rate, gastric residue

rate, pH value of intestinal contents, and ear swelling degree of 2,4-dinitrofluorobenzene (DNFB) were measured.

Result: Oral administration of probiotic solid beverage can increase the D-xylose content and amylase activity in

mice (

P

<0.05); regulating abnormal peristalsis of the gastrointestinal tract, reducing intestinal propulsion rate,

and increasing gastric residual rate (

P

<0.05); restore intestinal pH value(

P

<0.05); reduce mouse ear swelling (

P

<0.05). Conclusion: Probiotic solid drinks have intestinal regulatory effects and can enhance immunity.

Keywords:

probiotics; spleen deficiency model; intestinal regulation

益生菌是发挥有益作用的活性有益微生物的总

[1]

,其无致病性,高度耐受胃酸和胆汁,能黏附

于肠黏膜而阻止病原微生物的依附,有利于提高人

体免疫力

[2]

。目前研究的益生菌以双歧杆菌、乳酸

杆菌为主,还包括一些其他共生的细菌。其主要

生理功能包括调节肠道微生物平衡、改善肠上皮细

胞屏障功能、调节免疫应答、促进消化吸收等

[1]

本文对制备的益生菌固体饮料复合粉的肠道调节作

用进行功效验证,为后期产品调整提供实验依据。

[2]

17~20 g,购自河南省实验动物中心,许可证编号

为SCXK(豫)2017-0001,批号为20211126,质量

合格证编号为NO.418024。领取后于

动物房适应性饲养1周,在此期间可自由饮水、进

食,保持充足的日照和透风。环境保持清洁恒温,

饲养环境平均温度、湿度分别为25

、37%,15~

20次/h全新风。饲料(批号:21093213)、垫料(批号:

21089813),北京科澳协力饲料有限公司。

1.2 仪器与试剂

益生菌固体饮料(山西振东五和医养堂股份有限

公司);大黄(安国市兴华中药材有限公司);2,4-

二硝基氟苯、蓖麻油(麦克林);丙酮(天津市风船

化学);D-木糖(阿拉丁);D-木糖测定试剂盒(索

1 材料与方法

1.1 实验动物

选用KM小鼠150只,SPF级,雌性,体重

作者简介:李英(1974—),女,山西长治人,硕士,工程师。研究方向:功能食品研究与开发。

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食品安全导刊 2023年9月(上)

Copyright©博看网. All Rights Reserved.

分析检测

莱宝);a-淀粉酶试剂盒(南京建成)。糊推进的距离占幽门至回盲部距离的百分率为小肠

推进率。剪去黑色半固体糊部分5 cm,放入5mL EP

管中保存,待测pH值。取小鼠的胃,用滤纸擦干后

称其全重,再沿胃大弯剪开胃,洗去胃内容物,称

胃净重。胃全重与胃净重的差值为胃内残留物重量,

以胃内残留黑色半固体糊占所灌胃黑色半固体糊的

质量百分比为胃内残留率。将小鼠血液在3 500 r·min

-1

下离心10 min得血清,依照淀粉酶测试盒说明方法

测定淀粉酶活性。

(3)益生菌固体饮料对免疫耳肿胀的影响。

各组剩余小鼠10只,用剃毛器清理小鼠腹部皮

毛(面积为3 cm

×

3 cm),将2,4-二硝基氟苯

酶标仪(伯腾,EPOCH);耳肿胀打孔器(原阳

县振华教学仪器、YLS-Q4);电子pH计(赛多利斯

科学仪器,PB-10);高速离心机(安徽中科中佳科

学仪器,HC-2518);电热恒温水浴锅(北京中兴伟

业仪器,DZKW);单人双面垂直送风净化台(上海

天恒医疗器械,JHT-315AB)。

1.3 实验方法

1.3.1 实验分组及剂量

将150只小鼠随机为5组,每组30只,5个组

别分别为空白组、模型组和3个剂量组。3个剂量组

小鼠益生菌固体饮料灌胃剂量分别设置为人体使用

剂量的10倍、20倍、30倍,分别记为低(1 g·kg

-1

)、(2,4-Dinitrofluorobenzene,DNCB)溶液涂抹于小鼠

中(2 g·kg

-1

)、高(3 g·kg

-1

)剂量组。小鼠按剂量每天腹部(50

μ

L/只),继续给药4 d后,将20

μ

L DNCB

灌胃1次(灌胃量为0.3 mL/10 g bw,空白组灌胃等

体积蒸馏水),连续灌胃28 d后对动物各项指标进

行测定。

1.3.2 建立脾虚模型

制作100%大黄水煎液:取大黄药材适量,加

10倍蒸馏水,煮沸后煎煮9 min,过滤,旋转蒸发浓

缩至相当于生药材浓度1 g·mL

-1

,即得100%大黄水

煎液,备用。

实验第4周建立脾虚小鼠模型,空白组给予等

体积蒸馏水;模型组及剂量组小鼠灌胃给予100%大

黄水煎液(0.1 mL/10 g bw),小鼠按剂量每天灌胃

1次。造模组小鼠出现饮食减少、体重减轻、精神不

振、畏惧光、喜欢抱团、皮毛杂乱无光泽和大便黏

腻等情况,表示小鼠造模成功。造模成功后开始检

测相关数据。

1.3.3 实验操作

(1)D-木糖含量检测。各组小鼠随机选取10只,

末次给药1 h后,灌胃5% D-木糖溶液4 mL·kg

-1

溶液涂抹于小鼠左耳两面进行致敏攻击,攻击24 h

后颈椎脱臼处死小鼠,用直径8 mm打孔器打下左右

两侧同部位的耳片,精密称重,以左右耳片质量之

差为肿胀度。

1.3.4 数据处理

实验数据采用(

x

±s

)表示,使用SPSS 22.0统计

软件分析,用单因素方差分析及

T

检验,

P

<0.05

代表有统计学差异。

2 结果与分析

由表1可知,模型组与空白组比较,模型组D-

木糖含量、淀粉酶活性显著降低,耳肿胀度显著上升,

差异有统计学意义(

P

<0.05)。剂量组与模型组比较,

各剂量组D-木糖含量、高剂量淀粉酶活性显著升高,

各剂量组耳肿胀度均显著降低,差异有统计学意义

P

<0.05)。

大黄水煎液可致小鼠腹泻,表现为胃部固摄能

力减弱、肠道蠕动加快,导致肠道水分吸收减少,

40 min后眼球取血,3 500 r·min

-1

离心10 min得血清,

胃液下流,肠道pH降低。由表1可知,模型组与空

白组比较,模型组肠推进率显著升高、胃残留率显

依照D-木糖测试盒说明方法测定。

(2)小鼠肠胃实验及淀粉酶活性检测。各组小鼠

随机选取10只,末次灌胃后禁食不禁水,24 h后,

给小鼠灌服营养性半固体糊(羧甲基纤维素钠10 g、

奶粉16 g、淀粉8 g、糖8 g、活性炭3 g和蒸馏水

100 mL)0.8 mL,于灌胃后30 min摘眼球取血后立

即开腹,结扎胃贲门和幽门,取出小肠,剥离后直

铺于白纸上,用直尺测量幽门到回盲肠的距离及幽

门至黑色半固体糊推进前沿的距离,以黑色半固体

著降低、小肠内容物pH值显著下降,差异有统计学

意义(

P

<0.05)。剂量组与模型组比较,中、高剂量

组肠推进率显著降低,中剂量组胃残留率显著升高,

中、高剂量组小肠内容物pH值显著升高,差异有统

计学意义(

P

<0.05)。

3 结论与讨论

木糖是一种常见的五碳糖,不会存在于血液中,

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Sep.2023

CHINA FOOD SAFETY

43

分析检测

表1 小鼠D-木糖、淀粉酶活性、耳肿胀及肠胃检测结果

组别

空白组

模型组

低剂量

中剂量

高剂量

剂量

(/g·kg

-1

/

/

1

2

3

D-木糖含量

(/mg·g

-1

0.789

±

0.041 6

0.597

±

0.067 6

#

0.761

±

0.081 1

*

0.747

±

0.043 3

*

0.775

±

0.037 4

*

淀粉酶活性

(/U·dL

-1

2 139.07

±

259.18

1 959.39

±

41.77

1 929.85

±

13.93

2 237.54

±

50.44

*

耳肿胀度/g

0.011 9

±

0.000 99

0.012 2

±

0.001 22

*

0.014 1

±

0.002 07

*

0.009 6

±

0.002 07

*

肠推进率/%

0.71

±

0.140

0.90

±

0.021

#

0.85

±

0.049

0.77

±

0.082

*

0.77

±

0.085

*

胃残留率/%小肠内容物pH值

0.99

±

0.153

0.86

±

0.132

#

0.91

±

0.087

0.94

±

0.102

*

0.93

±

0.075

7.78

±

0.282

6.66

±

0.240

#

7.16

±

0.280

7.45

±

0.340

*

7.59

±

0.749

*

1 883.08

±

105.55

#

0.016 6

±

0.002 19

#

  注:#表示与空白比较

P

<0.05;*表示与模型比较

P

<0.05。

服用后由小肠吸收,肝脏不代谢,由肾脏排出,因

此口服D-木糖可反映小肠吸收功能状况

[3-4]

α

-淀

粉酶是肠液中的主要消化酶,由胰腺分泌,在小肠

中保持较高的浓度

[5]

。徐复霖等

[6]

研究了两种不同

发现大黄致虚可使淀粉酶活性降低。淀粉酶是一种

机体的消化功能就会受到影响

[3]

。小肠是消化管中最

长的部分,是消化、吸收的主要部位,D-木糖和淀

粉酶活性可反映小肠的消化吸收能力。

肠道菌群是一个相对比较复杂且非常活跃的微

生态系统,数量和种类很庞大,与大多数疾病的发生、

发展、转归等联系非常紧密,又被称为控制人体健

康的“第二基因组”。肠道的微环境稳态是保证肠

道菌群稳定的外在表现,当肠道菌群平衡被打破,

其环境也会出现变化。测定肠道内容物pH值,可间

接观测肠道菌群稳态。

[7]

木糖含量和淀粉酶活性;可调节小鼠胃肠道蠕动能

力,降低由大黄刺激性泻下作用导致的胃肠道异常

蠕动;并可恢复肠道pH值,调节由于大黄作用有益

菌属排出导致的肠道菌群失衡,恢复肠道菌群微生

上所述,益生菌固体饮料具有肠道调节作用,并可

脾虚造模方法对小鼠肠液分泌及淀粉酶活性的影响,态平衡;并可降低小鼠耳肿胀度,提高免疫力。综

非常重要的消化酶,淀粉酶如果分泌不足、活性降低,增强免疫力。

参考文献

[1]郑少君,王志仁,王永前,等.益生菌防治抑郁症

的研究进展[J].国际精神病学杂志,2019,46(1):24-26.

[2]沈通一,秦环龙.益生菌对肠微生物生态学影响的

研究进展[J].肠外与肠内营养,2004(4):242-246.

[3]雷英,贺志有,刘丽莎,等.参苓白术散对脾虚证

小鼠血清淀粉酶、D-木糖、胃泌素及小肠组织学变化的研

究[J].中药药理与临床,2012,28(2):6-9.

[4]张明,吴晶,彭真,等.荷泽颗粒对脾虚大鼠血清

胃泌素、D-木糖浓度、磷酸肌酸激酶的影响[J].中国中医

中医的脾是涉及消化吸收、水盐代谢、能量转化、

急症,2020,29(2):267-269.

血液、免疫及神经内分泌等多系统的综合功能单位,

[5]DAVENPORT H W.消化道生理学[M].北京:科学

脾虚证即是这些系统功能降低的综合表现

[8]

。故脾虚

证是以消化吸收功能低下为主的多器官和多系统功

能减弱的综合病理变化。过量或长期服用苦寒药

(如大黄)会损伤脾胃、耗伤正气,而产生脾虚。大

黄性寒、味苦,主要功效是攻下积滞等;主要药效

活性成分为蒽醌类、蒽酮类等;现代临床研究表明,

大黄泻下作用是由于蒽醌代谢产生蒽酮,其泻下作

用使得肠道菌群紊乱,大量有益菌属被排出,肠道

内微生态平衡被打破,短时间内调节肠道正常蠕动

的菌群难以恢复平衡所导致

[10]

。常见的肠推进及胃

残留实验,可直观地观测肠胃功能变化。

实验结果表明,益生菌固体饮料可减缓由大黄

水煎液灌胃导致的肠胃消化吸收能力下降,提高D-

[9]

[9]

出版社,1976.

[6]徐复霖,唐铁军,陈育尧,等.两种不同脾虚造模

方法对小鼠肠液分泌及淀粉酶活性的影响[J].北京实验动

物科学与管理,1994(3):17-18.

[7]李明丹,黄立建,贾林,等.复方薏苡仁方对小

鼠肠道菌群及微环境的调节作用[J].中国微生态学杂

志,2018,30(1):14-18.

[8]徐涛.中医脾虚证的现代研究进展[J].时珍国医国

药,2002(4):243-245.

[9]杨旭东,张杰,王崴.参苓白术散对脾虚小鼠肠保护

作用及其机制的研究[J].牡丹江医学院学报,2009,30(5):9-11.

[10]阮兴秋,严晶,孙志广.肠道微生态与大黄毒副反应

相关性及干预策略研究[J].西部中医药,2021,34(12):159-163.

44

食品安全导刊 2023年9月(上)

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