2024年3月27日发(作者:公冶明哲)
• 2508 •中华中医药杂志(原中国医药学报)2021年5月第36卷第5期
CJTCMP,May
2021,
Vol
.36,
No
.5
•论著•
胡椒碱和荜茇宁对胰岛素抵抗大鼠糖脂代谢及
线粒体
DN
A
拷贝数的影响
杨艳敏,张克交,张彦栋,徐美玲,周建玲,庄馨瑛
(
云南中医药大学中药学院,昆明
650500)
摘要:
B
的:探讨荜茇宁
(GBN >
和胡椒碱
(PIP )
对胰岛素抵抗
(IR >
大鼠肝脏与肌肉线粒体
DNA
(r^UNA)
拷贝数和糖脂代谢的影响方法:采用高脂伺料喂养配合高脂乳剂灌胃,同时按每周
5mg/M
注射
STZ
的方法诱导
IR
大鼠模型、每
4
周检测各组空腹血糖(
FBG)
、血清甘油
•:
酯(
TG)
情况,连续给药
8
周后进行糖耐
量实验
(OGTT )
、检测血清胰岛素
(FINS )
含量并计算胰岛素抵抗指数(
HOMA-IR )
给药
8
周后,采用
Real-time
PCR
检测大鼠肌肉和肝脏
mtDNA
拷贝数和骨骼肌
PGC-
丨
a mRNA
表达水平的变化结果:
GBN
和
PIP
均能敁著降低
IR
模型大鼠血清
T(;
、
FBG
、
INFS
水平和
(PcO.05,
尸
<0.0
丨),》
.
箸改善葡萄糖
|ifit
异常情况(
P<0.01 )。m
模型大鼠肝脏与肌肉细胞
mtDNA
拷
W
数均减少,各药物组均能抵抗这种抑制作用;高剂
fit
的
(;BN
和
PIP
能增加肌肉
mtDNA
的拷贝数(
/V0.05, P<0.01),
并且增加肌肉
PGC-la niRNA
表达(
P<0.05) ; IMP
能增加肝脏
mlDNA
拷贝数
(P<0.05. /><0.01 )
结论:
GBN
和
PIP
能够明
©
改善
IR
模型大鼠的糖脂代谢异常状况;同时增加
IR
模型大鼠肌肉
mtDNA
拷贝数和
PGC-
丨
a mRNA
表达,改善线粒体功能
关键词:胡椒碱;荜茇宁;胰岛素抵抗;糖脂代谢;线粒体
DNA
拷贝数;
PfX-la
基金资助:国家然科学基金项
R
(
No
.81560672) ,
s
:南酋应用基础研究计划项
B
(
N
〇.2013
FZ
090),云南
省创新团队计划(
N
〇.20
I
7
HC
011),云南省教育厅科学研究基金项
B
(
No
.20
l
9
Y
03:
i
3),云南省科技厅-云南中
医学院应用基础研究联合专项资金项0 (
N
〇.20
I
9
FF
002-053 )
Effects of piperine and piperlonguminine on glucolipid metabolism and
mtDNA copy number in insulin resistance rats
YANG Yan-min, ZHANG Ke-jiao, ZHANG Yan-dong, XU Mei-ling,
ZHOU Jian-ling, ZHUANG Xin-ying
(College of Pharmaceutical Science, Yunnan University of Chinese Medicine. Kunming 650500, China )
Abstract!
Objective: To investigate the effects of Piperlonguminine (GBN) and piperine (PIP) on mitochondria DNA
(mtDNA) copy number and glucolipid metabolism in liver and muscle of rats with insulin resistance (IR). Methods: High-fat
diet was fed with intragastric administration of fat emulsion, and regular injection of STZ according to the amount of 5mg/kg per
week to induce IR rat model. The fasting blood glucose (FBG) and serum triglyceride (TG) were measured every 4 weeks, and
the glucose tolerance test (OGTT) was performed 8 weeks after continuous administration to evaluate the model and drug efficacy
by detecting serum insulin (FINS) content and calculating the insulin resistance index (HOMA-IR). After 8 weeks, changes in rat
muscle and liver mitochondrial DNA copy number and skeletal muscle PGC-1 a mRNA expression were measured by Real-time
PCR. Results: GBN and PIP significantly reduced serum TG, FBG, INFS and HOMA-IR levels in IR model rats
(P<0.05, P<0.0),
and significantly elevate the glucose tolerance (P<0.01). Meanwhile, the mtDNA copy number in muscle of IR rats was decreased;
high dose of GBN and PIP treatment enhanced the mtDNA copy number (, P<0.01) and skeletal muscle PGC-1 a mRNA
expression (P<0.05); PIP treatment enhanced the mtDNA copy number in liver (^, ^). Conclusion: GBN and PIP could
significantly ameliorate the abnormal metabolism of glucolipid in IR model rats. At the same time, increase the mtDNA copy
number and PGC-1 a mRNA expression of IR rats and improve mitochondrial function.
Key words!
Piperine; Piperlonguminine; Insulin resistance; Glucolipid metabolism: Mitochondrial DNA copy number;
PGC-1 a
通信作者:庄馨瑛,云南省昆明市呈贡区雨花路1076号云南中医药大学中药学院,邮编:650500,K-mail: ************************
中华中医药杂志(原中国医药学报)2021年5月第36卷第5期
CJTCMP,May
2021,
Vol
.36,
No
.5
• 2509 •
Funding: National Natural Science Foundation of China (No.81560672),Natural Science Foundation of Yunnan
Province (N
〇
.2013FZ090), Science and Technology Innovation Group of Yunnan Province (N
〇
.2017HC011), Science Research
Foundation of Yunnan Education Department (N
〇
.2019Y0333), Yunnan Provincial Science and Technology Department: Applied
Basic Research Joint Special Funds of Yunnan University of Traditional Chinese Medicine (N
〇
.2019FF002-053)
姨岛素抵抗(insulin resistance, IR)在肥胖和2型
糖尿病(type 2 diabetes mellitus,T2DM)等代谢综合征
的发病机制中起重要作用m。越来越多的研究证明,
摄人高热量饮食会导致糖代谢紊乱和胰岛素敏感性
受损,从而增加代谢异常的风险|21。目前治疗糖尿病
和IR的临床药物包括磺脲类、二甲双胍和噻唑烷二酮
类,都有一些不良反应,如体质量增加和低血糖1V51。
线粒体主要负责以二鱗酸腺昔(adenosine
triphosphate,ATP)的形式向细胞提供能量,并在许
多细胞过程中发挥重要作用。线粒体功能障碍与IR
的关系已在糖尿病患者和动物模型中观察到|fi|,且
线粒体含量降低通常与线粒体功能受损有关。线粒
体功能障碍会诱导活性氧生成增多及氧化应激,致
使细胞内游离脂肪酸、脂肪中间代谢产物堆积
m,
降低了脂肪细胞对胰岛素的敏感性,抑制胰岛素信
号转导' 最终导致T2DM的发生。由此推测,改善
线粒体功能和生物发生可能有助于治疗和预防IR和
T2DM〇
天然产物被认为是发现抗T2DM药物的重要来
源|91。许多天然化合物如黄烷醇111)1和花青素1111已被
报道通过不同的信号途径改善IR。白藜芦醇作为一
种氧化还原活性化合物可通过对抗活性氧来改善线
粒体功能和生物合成|121。革麦宁(piperlonguminine,
GBN)和胡椒喊(piperine,PIP)作为中、蒙医常用药
材荜茨尸批/" /cwgww L.的主要有效成分,同样具有抗
氧化的作用
|13|;
此外,P1P还具有抗惊厥、抗肿瘤|131、
降血脂|141、降血压|151、免疫调节1〜、促进药物吸收代
谢[1'降低IK大鼠血糖和增加胰岛素敏感性等作
用,而GBN由于其良好的降脂功效和低毒性已经成
为国家重大新药创制专项的候选药物|IIM91。本研究
基于现今治疗IR的现状,充分发挥中医学治疗慢性
疾病及代谢类疾病的优势,从中药荜茇中提取活性
成分P1P和GBN,用于高脂高糖高盐诱导的糖脂代谢
紊乱丨R大鼠,探讨GBN和PIP对IR大鼠糖脂代谢和肝
脏与肌肉线粒体DNA( mitochondrial DNA, mtDNA)
拷贝数的影响,挖掘荜茇生物碱在代谢类疾病方面
的应用价值。
材料
I
.动物
SPF
级健康雄性
SD
大鼠120只
,
8周龄,
体质量(180±20)
g
,由成都达硕实验动物公司提
供,生产许可证号:SCXK (川)2013-24,合格证号:
0014842,批号:0018170。词养温度为(23±1)^:,相
对湿度为40%〜60%,在光照和黑暗各12h交替条件
下进食和饮水。
2. 药物PIP购自西安天本生物工程有限公司,
批号:TBP130312,经分析鉴定,纯度为98%。GBN
由本课题组合成,经分析鉴定,纯度为98%。罗格
列酮片(R0G)购于成都恒瑞制药有限公司,规格:
4mg/片,批号:H20030569。临用前以0.9%氯化钠
溶液按照设定浓度稀释,置4T冰箱备用,灌胃前
放至室温并混匀。盐酸二甲双胍片(MET)购于中
美上海施贵宝制药有限公司,规格:〇.5g/片,批号:
H20023370,处理方式同R0G。链脲佐菌素(STZ)购
于广州康龙生物科技有限公司,规格:l〇〇mg/瓶,批
号:18883664,取STZ 100mg,溶于10mL柠檬酸钠缓
冲液,调其pH值为4.5。
3. 试剂0.9%氯化钠溶液(贵州天地药业有
限公司,批号:H13082809),75%乙醇溶液(昆明
力健消毒制品有限公司,批号:130810),吐温-80
(天津市化学试剂三厂批号:130720),甘油三酯
(triglyceride, TG)试齐IJ盒(中生北控生物科技股
份有限公司,批号:146530),胰岛素ELISA试剂盒
(上海沪峰生物科技有限公司,批号:20140401A);
DNA提取试剂盒(Biomiga生物技术有限公司,货号:
GD2211-02),Trizol(Amhion公司,批号:229010),
逆转录试剂盒(Promega北京生物技术有限公司,批
号:),Go Taq qPCR Master Mix (Promega
北京生物技术有限公司,批号:)。
4. 仪器SP-756型紫外可见分光光度仪(上海
光谱仪器有限公司),DNM-9062G型酶标仪(北京普
朗新技术有限公司),TGL-16B型台式离心机(上海
安亭科学仪器厂),移液枪(德国BRAND公司),三
诺安稳血糖仪/血糖试纸(长沙三诺生物传感技术股
份有限公司),PT124S型电子天平(梅特勒托利多仪
器上海有限公司),涡旋混合仪(江苏海门市其林贝
尔仪器制造有限公司),定量采血管(南通福利来医
疗器材有限公司),Real-time PCR仪(罗氏公司)。
方法
1.分组、造模及给药120只大鼠适应性喂养1
周后,分为2批,每批60只;各批又随机分为正常组
•2510.
中华中医药杂志(原中国医药学报)2021年5月第36卷第5期
CJTCMP
,
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10只,高脂饮食组50只,正常组给予普通饲料(购于
云南中医药大学动物房),高脂饮食组给予高脂词料
(高脂饲料的质量比为:基础饲料57%、糖25%、猪
油17%、盐1%,由本课题组实验室加工而成)。喂养
标准为每只60g/d,且每3天用高脂乳剂(高脂乳剂:
适量猪油在80T水浴加热,按猪油与胆固醇10 : 3的
比例充分搅拌溶解;加人适量吐温-80,搅拌至乳液
充分乳化;最后缓慢加人适量温水稀释,即成为稳
定的高脂乳剂;配制好的高脂乳剂保存于-20T冰箱
中备用,灌胃前于80丈水浴中加热融化,凉至不烫手
后按所需剂量给予大鼠灌胃)按10mL/kg灌胃1次,
每周按5mg/kg剂量给予STZ腹腔注射1次,注射STZ
后,大鼠给予20%蔗糖水饮用以防发生低血糖:,采取
自由饮水,定时定量喂词,每周称重1次。造模4周后
取血,检测空腹血糖是否异常升高,判断造模情况。
第一批造模成功的大鼠再随机分为5组:模型组,
ROG组(3mg/kg), PIP低、中、高剂量组(15、30、
60mg/kg),每组10只;第二批造模成功的大鼠也随机
分为5组:模型组,MET组(150mg/kg), GBN低、中、
高剂量组(5、10、20mg/kg),每组10只,各组持续给
予相应药物8周。
2. 样本收集末次给药结束后,大鼠禁食不
禁水12h,摘眼球取血并处死。血液3 000r/min离心
lOmin,分离血清。取肝脏、肌肉组织样本存于-80^
超低温保存箱备用。
3. 观察指标及其测定方法
3.1 空腹血糖(fasting blood glucose, FBG
检测每隔4周(0周、4周、给药4周、给药8周),各组
大鼠禁食不禁水12h,采用大鼠尾尖取血,血糖仪检
测 FBG。
3.2葡萄糖糖耐量(oral gl ucose tolerance test,
OGTT)的检测给药8周后,以FBG为基础,以浓度
为250g/L的葡萄糖溶液(2g/L)灌胃后,分别于0、
1、211测定血糖,计算2h餐后血糖(postprandial Wood
glucose, PG)下降率。2h PG下降率(%) = (lh BG-2h
BG)/lh BGxlOO%。
3.3 空腹胰岛素(fasting insulin, FINS)水平
检测和膜岛素抵抗指数(insulin resistance index,
HOMA-IR )的计算取已分离血清,采用酶联免疫
(ELISA)法测定FINS,并计算肋1^八-111〇1101入-
IR=FPG (mmol/L) x FINS (mIU/L) /22.5〇
3.4血清TG含量的检测取已分离血清,按照
TG试剂盒说明书操作步骤,测定TG。
3.5肌肉和肝脏mtDNA拷贝数和肌肉PGC-ict
mRNA表达的检测米用Keal-time PCR法,按照
Biomiga提取试剂盒说明书提取大鼠肝脏和肌肉
DNA,以线粒体编码基因细胞的拷贝数作为mtDNA
拷贝数,为减少不同组织DNA模板量的差异,以HBB
作为内参;采用Trizol法提取大鼠肌肉总RNA,按照
试剂盒操作进行反转录,转录后的产物进行PCK
扩增,以P-actin作为内参,米用SY'BR green I染料
法,PCR反应条件为(95^ 10min—95T; 15s—55丈
30s—72t 30s),所有PCR均采用3个复孔进行,采用
A ACT法计算各目的基因的相对表达M。反应引物
由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,基因引
物序列见表1。
表
1
引物序列
基因
基因序列
引物(5’^3’)
产物长度
(
bp)
mtDNANC_001665.2
F: TCT CGA TGG TAA CGG
100
GTCT
H
:
ACG GCT ATG TTG AGG
A AG G
HHB
NC_005100.4F: GCT GOT TGT CTA CCC 118
TTG GA
R : GGC GTT TAT CAC CTT
CTT GC
FGC-laNM_031347.1
F: ACT GAG CTA CCC TTG
112
GGA TG
R: TAA GAA TTT CGG TGG
TGACA
p-actinNM_031144.3
F: ACA GGA TGC AGA AGG
117
AGA TTA C
R: ACA GTG AGG CCA GGA
TAG A
4.统计学方法采用SPSS 15.0统计软件,各组
数据均以表示,组间比较用单因素方差分析,组
内治疗前后比较用配对比较的凇验。以P<〇.〇5为差
异有统计学意义。
结果
1. 大鼠一般情况正常组大鼠被毛光泽,精神
良好,食欲正常,对外界反应正常。模型组大鼠毛色
枯燥松散,无光泽,自发活动减少,对外界刺激的敏
感性下降,大便较正常组稀溏,明显出现三多(多
尿、多饮、多食)症状。各治疗组大鼠给药后三多症
状均有一定程度改善,毛色较模型组润泽,自发活动
增多,对外界的刺激较敏感。词养过程中各组大鼠无
死亡。
2. P1P、GBN对IR模型大鼠FBG的影响见表2-
表3。造模4周后,与正常组比较,其余各组大鼠FBG
均显著升高(户<〇.〇丨,P<〇.〇5);给药4、8周,与模型
)的
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• 2511 •
组比ROG组,MET组,PIP、GBN各剂量组FBG均
显著降低(P<〇.〇l,P<〇.〇5)。
表
2 PIP
对大鼠
FBG
的影响(
1±
夂
w=10, mmol/L)
组别
造模前
造模
4
周给药
4
周给药
8
周
正常组
4.36 ±0.66
4.22±0.18
4. 31 ±0.29 4. 07±0.39
模型组
4.64 ±0.61
6.04 ±0.45”
6.09 ±0.27“ 6.14±0.25“
ROG
组
4.57 ±0.44
5.04±0.31“
4.39±0.36
a
4.44±0.32
aa
PIP
低剂
4.64 ±0.50
5.06 ±0.42“
4.66±0.24
a
4.51±0.24
aa
量组
PIP
中剂
4.47±0.50 5.05±0.22 4.52±0.32A4.47±0.27
aa
量组
PIP
高剂
4.27±0.51 5.06±0.28” 4.58±0.34AA 4.35±0.25A
量组
注:与正常组同期比较,
^<0.05, AA/5<0.013-
><0.05, ”P<0.01
;与模型组同期比
较,。表表
5
同。
表
3 GBN
对大鼠
FBG
的影响《
=10, mmol/L)
组别
造模前
造模
4
周
给药
4
周给药
8
周
正常组
5.52 ±0.31
5.13 ±0.234.99 ±0.224.95 ±0.18
模型组
5.21 ±0.54
5.97 ±0.54“6.16 ±0.74"6.51
土
0.26"
MET
组
5.32 ±0.47
5.43±0.51’5.30
土
0.39^5.60
土
0.27^
G
酬氐
5.38 ±0.25
5.41 ±0.34.5.87±0.32
a
6.16 ±0.3#
剂量组
GBN
中
5.37 ±0.27
5.29
士
0.41_5.39±0.52
a
5.72±0.22
aa
剂量组
GBN
高
5.27±0.90
5.34 ±0.26’
5.39±0.35
aa
5.37±0_26
aa
剂量组
3. PIP、GBN对1R模型大鼠OGTT的影响见
4-表5,图1-图2。当给予外源性葡萄糖时,正常组
血糖迅速上升,lh达峰值,2h后血糖回落至正常水
平。而模型组lh血糖迅速上升,2h后仍处于高血糖
状态。在2h时,与正常组比较,模型组血糖显著升高
(/V0.01)。模型组、两阳性药组和HP、GBN组大鼠
血糖值在口服葡萄糖后lh达峰值,之后血糖值逐渐
降低,但不能降至空腹水平。两阳性药组和PIP、GBN
组2h PG下降率均显著高于模型组(P〈〇.〇l)。
表
4 PIP
对大鼠
OGTT
的影响
«=10, mmol/L)
组別
Ohlh2h
正常组
4.07 ±0.39
6.22±0.58
5.48 ±0.39
模型组
6.14±0.258.03±0_447.04 ±0.36*
ROG
组
4.44 ±0.326.49 ±0.76
5.68 ±0.33
IMP
低剂
fi
组
4.51 ±0.246.43 ±0.605.63 ±0.71
pip
中剂量组
4.47±0.27
6.76 ±0.675.74 ±0.41
pip
高剂
a
组
4_35±0.25
6.63 ±0.455.63 ±0.46
表
5 GBN
对大鼠
OGTT
的影响(
7±^
,《
=10, mmol/L)
组别
Oh lh 2h
正常组
4.95 ±0.186.71 ±0.33
5.41 ±0.10
模型组
6.51 ±0.26
7.32 ±0.40
7.05 ±0.34*
MET
组
5.60 ±0.276.24 ±0.405.60 ±0.09
GBN
低剂量组
6.17±0.306.74 ±0.21
5.89 ±0.23
CJBN
中剂量组
5.72 ±0.22
6.24 ±0.33
5.61 ±0.15
GBN
高剂量组
5.37±0.26
6.20 ±0.415.61±0.11
<
5-I
%
0-I
)
5H
讲
X
X
镗
H-
o
d
H
Z
图
1 PIP
对大鼠
2h PG
下降率的影响
U±5
,,《
=10)
注:与正常组比较,
><0.05, "P<0.01;
与模型组比较,
AP<0.05, AAP<0.01
。
下图同。
图
2 GBN
对大鼠
2h PG
下降率的影响(
i±5, w=10)
4. PIP、GBN对IR模型大鼠FINS和HOMA-IR
影响见表6-表7。与正常组比较,模型组大鼠的
FINS和HOMA-IR水平显著升高(P<0.05);与模型组
比较,两阳性药组,PIP、GBN各剂量组大鼠FINS和
HOMA-IR水平均显著下降(P<〇.〇5)。
表
6 PIP
对大鼠
FINS
和
H()MA-1R
的影响
(f ±s
,
w=10)
组别
FINS(mIU/L)
HOMA-IR
正常组
22.32±4.82
4.09 ±1.26
模型组
30.31 ±4.27*
6.96 ±1.27*
ROG
组
23.48 ±4.62
a
4.68±1.25
a
P1P
低剂量组
25.50 ±6.93
a
5.17±1.64
a
PIP
中剂量组
25.72 ±5.83
a
5.16±1.47
a
pip
高剂量组
25.48 ±4.37
a
4.96±1.13
a
注:与正常组比较,
><〇.〇5;
与模型组比较
,
AP<0.05
下表同
:
表
的
•2512-
中华中医药杂志(原中国医药学报)2021年5月第36卷第5期
CJTCMP,May
2021,
Vol
.36,
No
.5
表7 GBN对大鼠FINS和HOMA-1R的影响(i±i, «=10)
组別
FINS(mIU/L)
HOMA-IR
正常组
23.47±2.905.16±0.94
模型组
32.74 ±2.64'
9.53 ±0.75*
Mt:T 组
26.21 ±2.60
a
6.71±0.84
a
(;BN低剂tt组
27.68 ± 2.01A7.61±0.67
a
GBN中剂M组
25.74 ±4.83
a
6.65±1.31
a
GBN高剂U:组
24.86 ± 5.19
a
5.96±1.80
a
5. PIP、GBN对IR模型大鼠TG的影响见图
图4。与正常组比较,模型组大鼠的TG水平显著升高
(/MX05);与模型组比较,两阳性药组,P1P各剂量组和
(;BN中剂量组大鼠TC冰平显著下降(P<0.05, _P<0.01)
图3 PIP对1R模型大鼠TG的影响(J土i', n=10)
U
K
;
H
c
,.
c
»'
参
图4
GBN
对
IR
模型大鼠
TG
的影响(3
F
±
J
, «=10)
6. P1P、GBN对IR模型大鼠肌肉和肝脏mtDNA
拷贝数的影响见图5-图心在肌肉上,与正常组比
较,模型组
mtDNA含量有所下降,但差异无统计学
意义;与模型组比较,两阳性药组均有上升趋势,但
差异无统计学意义;PIP低、高剂量组和GBN高剂量
组mtDNA含量显著增加(P<0.01, /^)。在肝脏
上,与正常组比较,模型组m山NA含量有下降趋势,
其中PIP模型组差异有统计学意义(P<0.05);与模
型组比较,两阳性药组均有上升趋势,PIP各剂量组
mtDNA含量显著增加(P<0.01, P<〇.〇5),GBN各剂
量组有上升趋势:
CZD肌肉
_肝脏
丨冬15 PIP对IR模型大鼠肌肉和肝脏m丨DNA拷贝数的影响
L
.0-
.5
-
0.
图
6
(;BN对IR模型大鼠肌肉和肝脏m丨丨)NA拷W数的影响
7. PIP、GBN对IR模型大鼠肌肉PGC-lot mRNA
表达的影响见图7-图8。川模型大鼠肌肉PGC-la
mRNA较正常大鼠显著下降(P<0.05); PIP和GBN干
预后,PGC-la mRNA表达S著升高(P<0.05)。
-
-
-
-
-
-
-
咖
-
-
-
-
-
-
-
-
劫
-
-
-
-
-
-
-
-
-
碑
-
-
-
-
-
-
-
友
2
-
-
-
1
-
-
-
-
-
运
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
X
-
V
-
-
-
-
-
-
N
-
-
-
-
-
-
-
H
-
-
-
-
s
-
-
-
-
-
-
1
-
-
1
-
-
-
a
-
-
-
-
-
-
-
-
-
I
-
-
-
-
-
-
-
3
-
-
-
-
-
-
C
-
-
-
-
-
-
-
-
CL
-
-
-
-
,,,,
丨冬丨7 P1P对1R模型大鼠肌肉PGC-la mRNA表达的影响
(•▽
土
^1
,
w=10)
阁
8
GBN对IR模型大鼠肌肉PGC-la mRNA表达的影响
(■^±•5,《=10)
3-
中华中医药杂志(原中国医药学报)2〇21年5月第36卷第5期
CJTCMP
,
May
2021,
Vol
.36,
No
.
• 2513 •
讨论
高热量饮食习惯和低水平的体力活动是当今世
界代谢综合征的主要原因。
IR
是各种慢性疾病(包
括
T
2
DM
、慢性肾脏疾病和认知障碍等)发病的主要
危险因素|2°_22】。
IR
的状态下糖脂代谢会紊乱,在器
官组织水平主要表现为肝抵抗即肝糖产生和输出增
多,造成空腹高血糖症而
IR
还能够有效的使脂蛋
白脂肪酶合成活性下降,引起
TG
的水解速率下降,
使
TG
含量上升,使机体出现脂代谢紊乱本研究
因此,
IR
状态下
PGC
-
la
水平的降低,预计线粒体功
能会下降。本研究发现,
pip
和
r
,
BN
在增加
m
大鼠肌
肉相对
mtDNA
拷贝数的同时能够显著增加骨骼肌
PGC-lo
(表达。表明
P
(;
C-la
可能是介导
PIP
和增
力
Bm
〖
DNA
拷贝数、诱导肌肉线粒体生物发生、改善
IR
线粒体损伤的重要机制之一^因此以
mtDNA
拷贝数
为靶点,可以直观的反映荜茇生物碱改善丨丨彳的作用
机制,在以后的研究中,也可围绕
mtDNA
拷贝数,挖
结果显示,利用高脂饲料喂养和高脂乳剂灌胃配合
低剂量
STZ
腹腔注射可以构建稳定的
IR
模型,大鼠出
现了
FBG
升高、糖耐量异常、血清
TG
升高的特征。而
WP
、
GBN
各给药组均在各项糖脂代谢生理指标上有
着一定程度的改善,提示
PIP
和
GBN
对
IR
导致的糖脂
代谢紊乱都有着较好的改善作用。
国内外的研究表明,无论在体内还是体外
GBN
和
PIP
对
IR
糖脂代谢异常有潜在的预防和治疗作用,
但目前对
GBN
和
PIP
在
IR
线粒体损伤中的直接相关
性的研究尚不多见。线粒体是细胞进行生命活动的
主要能量供体,几乎所有的细胞活动都需要线粒体
功能|251,并且在疾病早期,线粒体功能的变化往往
先于临床症状出现,且越来越多研究表明线粒体功
能障碍与
IR
、2型糖尿病的发生发展密切相关
I
26-2'
因此,对于线粒体功能改变的检测有利于疾病的预
防和治疗。目前,有许多方法可以检测线粒体功能,
如呼吸控制率检测、线粒体
ATP
生成率的变化检测、
线粒体膜电位、离子通道开放状态、形态学检测等。
但大多数方法都受到仪器、技能、环境、成本、效率
等多方面的限制,而采用
Real-time
PCR
对
mtDNA
拷
贝数进行检测,相对来说更加方便可行。本研究结
果显示
,PIP
和
GBN
增加了
IR
大鼠肝脏和肌肉的相对
mt
DN
A
拷贝数,表明它们可以诱导肝脏和肌肉线粒
体生物发生,改善
IR
线粒体损伤的情况。
PGC-lct
是一种核转录辅激活因子,是线粒体生
物发生的主要调节因子,可促进线粒体
ATP
合成和
氧化代谢,如氧化磷酸化和脂肪酸
P
-氧化
I
3。-3'肥
胖会引起的肌肉线粒体改变包括减少肌肉线粒体数
量、肌肉氧化能力|32—341和减少负责脂氧化代谢的核
基因(
g
卩
PGC
-丨
a
和
PGC
-丨
a
激活基因)的表达丨35,。
近年来的研究1371表明,
PGC
-1
a
基因敲除可减少线粒
体拷贝数和线粒体脂肪酸氧化、生物发生和功能相
关基因的表达。此外
,PGC-la
在肌肉
IR
中的表达降
低,
PGC
-
l
〇
i
通过支持核呼吸因子的转录活性参与线
粒体生物发生,从而调节氧化代谢相关基因的转录。
掘荜茇生物碱改善
IR
的具体信号通路:
参考文献
[1] Bae C R,Hasegawa K,Akiedaasai S,et ile involvement of
food texture in insulin resistance and energy metabolism in male
rats J End
〇
crinol,2014,222( 1 ):61 -72
[2] Rawat A K,Korthikunta V,Gautam S,el al.4-Hydroxyisoleurine
improves insulin resistanc*e by j)iT)moting mitochonrhial biogenesis
and act through AMPK and Akt dependent rapia,
2014,99:307-317
[3] Henagan I M,Lenard N R,Gettys T W,et y quercetin
supplementation in mice increases skeletal muscle PGC1 a
es mittx-honrlrial function and attenuates insulin
resistance in a time-spec ific One,2014,9(2):e89365
|4] Dujic TXausevir A,B^g
〇
T,et c cation transporter 1
variants and gastrointestinal side effects of metfonnin in patients
with type 2 )et Med,2016,33(4):511-514
[5] Salzano A.D'Assante R,Heaney L M,et elter
syndrome,insulin resistance,metaholir syndrome,and
diahetes:Review of literature and clinical to
End
〇
crine,2018.61 (2): 194-203
[6] Martin S S role of mitochondria in the aetiology
of insulin resistance and type 2 General Subj,
2014? 1840(4
):
1303-1312
[7| Lipina C,Macrae K,Suhm T,et ondrial substrate
availability
and
its
role
in
lipid-indured
insulin
resistance
and proinflammatory signaling in skeletal es,
2013,62(10)
:
3426-3436
[8] Rao X,Zhong X,et se protects against diet-induced
insulin resistance through dovvnregnlation of protein kinase C P in
0ne,2013,8( 12):e81364
[9] Xu Y,Dai Y,et l proflurts for the treatment of type 2
dial>etes mellitus:Pharmarolog^ and rol Res,
2018,130:451-456
[10] Engin A kis A las D,et flavanols-rich
natural products relieve obesity-related insulin resistance?.Food
Chem Toxicol,2017,112:157-167
[11] Belwal T,Nahavi S F,Nahavi S M,et y anthorvanins and
•2514*
中华中医药杂志(原中国医药学报)2021年5月第36卷第5期
CITCMP,May
2021,
Vol
.36,
No
.5
insulin resistance:^ hen food becomes a nts,
2017,9(10):1111
[12] Cheng Z,Srhmelz E M,Liu D,el ing mitochondrial
alterations to prevent typ^ 2 diabetesiEvidence from studies
of dietary redox-artive Nutr Food Res,
2014.58(8)
:
1739-1749
[13] Sunila E S,Kuttan modulatory and antitumor activity
of Piper longum Linn, and piperine.J Ethno Pharmacol,2004,
90(2-3):339-346
[14] Bao L cological research of antlipidic
effect of pij>*rine.J Med Phann Chin Minoril.2004,10(l):22-23
[15] Taqvi S A J,Gilani A pressure lowering and effects
of piperinej Carrliovase Phannarol,2008,52(5):452-458
[16] Dorga R S,Shanker toxirologiral effects of
pi{x*rine in *olog .2(X)4.196(3):229-236
[17] Khajuria A,Thusu N,Zutshi ne modulates permeability
rhararteristirs of intestine by inducing alterations in membrane (ly-
namirs:Iiifluence on brush Ixuder membrane fluidity,ultra sturrture
and enzyme e(lic ine,2002,9(3):224-231
[18] Atal S,Agrawal R P,Vyas S,et tion of the effect of piperine
per se on blood glucose level in alloxan-induced dial)etir mic ta
Pol Phami,2012,69(5):%5-%9
[19] Jin an G^hao R,et perlipidemir compounds from
the fruit of piper longum L..Phytother Res,2009,23(8): 1194—1196
[20] Patel T P,Ravval A K,et n resistanre:An
additional risk factor in the pathogenesis of cardiovascular disease
in type 2 Fail Rev,2016,21(2):l 1-23
[21] Dave N,Wu J,Thomas c kidney disease-induced insulin
resistancerCurrent state of the es Hep,2018,18(7):44
[22] Kullmann hmid n resistance at the
rmssmads of metabolic and rf)gnitive disorrleis in
〇
l Rev.
2016,96(4): 1169-1209
[23] Turnbull J,Tiheria E,Pereira S,et ency of a glycogen
synthase-associated Protein,Epm2aip,causes decreased
glvrogen synthesis and hepatic insulin resistanre.J Biol Chem,
2013.288(48)
:
34627-34637
[24]
白艳香,刘馨.玉米油对
2
型糖尿病大鼠胰岛素抵抗的作用研究
.
中国生化药物杂志,
2014,34( 1 ):59-61
[25] Hernandez-Resendiz S,Buelna-Chontal M,Correa F,et al.
Targeting mitochondria for cardiac protect Dmg Targets,
2013,14{5)
:
586-600
[26] Bonnard C,Durand A,Peyrol onrlrial dysfunction results
fW>m oxidative stress in the skeletal muscle of diet-induced insulin-
resistant mic ej Clin Invest.2008,118(2):789-800
[27] Chow L,From A,Seaquist al muscle insulin resistance:The
interplay of local lipid excess and mitochondrial dysfunction.
Metah
〇
lism.2010,59( 1 ):70-85
[28] Franko A,von Kleist-Retzow J C,Neschen S,et al
丄
iver adapts
mitochondrial func tion to insulin resistant and diabetic states in
mirej Hepatol,2014,60(4):816—823
[29] Lipina C,Macrae T,et ondrial substrate
availability and its role in lipid-indured insulin resistance
and proinflammatory signaling in skeletal es,
2013,62(10):3426-3436
[30] Wu Z,Puigserver son U,et isms controlling
mitcx'hondrial biogenesis anfl respiration througli the thennogenic
coartivator PGC-1 .Cell, 1999,98( 1): 115-124
[31] Hiiimg T Zheng D,HoumaiTi J A,et pression of PGC1 a
inc reases peroxisomal activity aiwl mitochondrial fatty arid oxidation
in human primary J Physiol Endocrinol Metah,
2017.312(4):E253-E263
[32] Koves T R,Ussher J R,Nolaiul R C,et ondrial overload and
incomplete fatty acid oxidation contribute to skeletal muscle insulin
Metah,2008.7( 1 ):45-56
[33] Kim J r R C,C
〇
rtrighl R L,et oxidation is reducerl
in oiiese human skeletal J Physiol Endocrinol Metal),
2000,279(5):E 1039-E1044
[34] Befroy D en K P ,Dufour S,et ed mitochondrial
substrate oxidation in muscle of insulin-resistant offspring of type 2
dial^etir es,2007,56(5): 1376-1381
[35] Heilhronn L K,Gan S K,Tumer N,et s of mitorhondrial
biogenesis and metabolism are lower in overweight and
obese insulin-resislant subjects.J Clin Endocrinol Metah,
2007,92(4
):
1467-1473
[36] Mensink ink M K,Russell A ed skeletal
muscle oxidative enzyme activity and restoration of PGC-1 alpha
and PPAR lieta/delta gene expression uj)
〇
n msiglitazone treatment
in obese patients with type 2 diabetes J Ohes(Lonfl),
2007,31(8
):
1302-1310
[37] Nagai tsu S,Erion D role of peroxisome
proliferator-activated receptor gamma roactivator-1 beta in the
pathogenesis of frurtose-inrlured insulin Metah.
2009.9(3)
:
252-264
(收稿日期
:2019
年
10
月
29
日)
2024年3月27日发(作者:公冶明哲)
• 2508 •中华中医药杂志(原中国医药学报)2021年5月第36卷第5期
CJTCMP,May
2021,
Vol
.36,
No
.5
•论著•
胡椒碱和荜茇宁对胰岛素抵抗大鼠糖脂代谢及
线粒体
DN
A
拷贝数的影响
杨艳敏,张克交,张彦栋,徐美玲,周建玲,庄馨瑛
(
云南中医药大学中药学院,昆明
650500)
摘要:
B
的:探讨荜茇宁
(GBN >
和胡椒碱
(PIP )
对胰岛素抵抗
(IR >
大鼠肝脏与肌肉线粒体
DNA
(r^UNA)
拷贝数和糖脂代谢的影响方法:采用高脂伺料喂养配合高脂乳剂灌胃,同时按每周
5mg/M
注射
STZ
的方法诱导
IR
大鼠模型、每
4
周检测各组空腹血糖(
FBG)
、血清甘油
•:
酯(
TG)
情况,连续给药
8
周后进行糖耐
量实验
(OGTT )
、检测血清胰岛素
(FINS )
含量并计算胰岛素抵抗指数(
HOMA-IR )
给药
8
周后,采用
Real-time
PCR
检测大鼠肌肉和肝脏
mtDNA
拷贝数和骨骼肌
PGC-
丨
a mRNA
表达水平的变化结果:
GBN
和
PIP
均能敁著降低
IR
模型大鼠血清
T(;
、
FBG
、
INFS
水平和
(PcO.05,
尸
<0.0
丨),》
.
箸改善葡萄糖
|ifit
异常情况(
P<0.01 )。m
模型大鼠肝脏与肌肉细胞
mtDNA
拷
W
数均减少,各药物组均能抵抗这种抑制作用;高剂
fit
的
(;BN
和
PIP
能增加肌肉
mtDNA
的拷贝数(
/V0.05, P<0.01),
并且增加肌肉
PGC-la niRNA
表达(
P<0.05) ; IMP
能增加肝脏
mlDNA
拷贝数
(P<0.05. /><0.01 )
结论:
GBN
和
PIP
能够明
©
改善
IR
模型大鼠的糖脂代谢异常状况;同时增加
IR
模型大鼠肌肉
mtDNA
拷贝数和
PGC-
丨
a mRNA
表达,改善线粒体功能
关键词:胡椒碱;荜茇宁;胰岛素抵抗;糖脂代谢;线粒体
DNA
拷贝数;
PfX-la
基金资助:国家然科学基金项
R
(
No
.81560672) ,
s
:南酋应用基础研究计划项
B
(
N
〇.2013
FZ
090),云南
省创新团队计划(
N
〇.20
I
7
HC
011),云南省教育厅科学研究基金项
B
(
No
.20
l
9
Y
03:
i
3),云南省科技厅-云南中
医学院应用基础研究联合专项资金项0 (
N
〇.20
I
9
FF
002-053 )
Effects of piperine and piperlonguminine on glucolipid metabolism and
mtDNA copy number in insulin resistance rats
YANG Yan-min, ZHANG Ke-jiao, ZHANG Yan-dong, XU Mei-ling,
ZHOU Jian-ling, ZHUANG Xin-ying
(College of Pharmaceutical Science, Yunnan University of Chinese Medicine. Kunming 650500, China )
Abstract!
Objective: To investigate the effects of Piperlonguminine (GBN) and piperine (PIP) on mitochondria DNA
(mtDNA) copy number and glucolipid metabolism in liver and muscle of rats with insulin resistance (IR). Methods: High-fat
diet was fed with intragastric administration of fat emulsion, and regular injection of STZ according to the amount of 5mg/kg per
week to induce IR rat model. The fasting blood glucose (FBG) and serum triglyceride (TG) were measured every 4 weeks, and
the glucose tolerance test (OGTT) was performed 8 weeks after continuous administration to evaluate the model and drug efficacy
by detecting serum insulin (FINS) content and calculating the insulin resistance index (HOMA-IR). After 8 weeks, changes in rat
muscle and liver mitochondrial DNA copy number and skeletal muscle PGC-1 a mRNA expression were measured by Real-time
PCR. Results: GBN and PIP significantly reduced serum TG, FBG, INFS and HOMA-IR levels in IR model rats
(P<0.05, P<0.0),
and significantly elevate the glucose tolerance (P<0.01). Meanwhile, the mtDNA copy number in muscle of IR rats was decreased;
high dose of GBN and PIP treatment enhanced the mtDNA copy number (, P<0.01) and skeletal muscle PGC-1 a mRNA
expression (P<0.05); PIP treatment enhanced the mtDNA copy number in liver (^, ^). Conclusion: GBN and PIP could
significantly ameliorate the abnormal metabolism of glucolipid in IR model rats. At the same time, increase the mtDNA copy
number and PGC-1 a mRNA expression of IR rats and improve mitochondrial function.
Key words!
Piperine; Piperlonguminine; Insulin resistance; Glucolipid metabolism: Mitochondrial DNA copy number;
PGC-1 a
通信作者:庄馨瑛,云南省昆明市呈贡区雨花路1076号云南中医药大学中药学院,邮编:650500,K-mail: ************************
中华中医药杂志(原中国医药学报)2021年5月第36卷第5期
CJTCMP,May
2021,
Vol
.36,
No
.5
• 2509 •
Funding: National Natural Science Foundation of China (No.81560672),Natural Science Foundation of Yunnan
Province (N
〇
.2013FZ090), Science and Technology Innovation Group of Yunnan Province (N
〇
.2017HC011), Science Research
Foundation of Yunnan Education Department (N
〇
.2019Y0333), Yunnan Provincial Science and Technology Department: Applied
Basic Research Joint Special Funds of Yunnan University of Traditional Chinese Medicine (N
〇
.2019FF002-053)
姨岛素抵抗(insulin resistance, IR)在肥胖和2型
糖尿病(type 2 diabetes mellitus,T2DM)等代谢综合征
的发病机制中起重要作用m。越来越多的研究证明,
摄人高热量饮食会导致糖代谢紊乱和胰岛素敏感性
受损,从而增加代谢异常的风险|21。目前治疗糖尿病
和IR的临床药物包括磺脲类、二甲双胍和噻唑烷二酮
类,都有一些不良反应,如体质量增加和低血糖1V51。
线粒体主要负责以二鱗酸腺昔(adenosine
triphosphate,ATP)的形式向细胞提供能量,并在许
多细胞过程中发挥重要作用。线粒体功能障碍与IR
的关系已在糖尿病患者和动物模型中观察到|fi|,且
线粒体含量降低通常与线粒体功能受损有关。线粒
体功能障碍会诱导活性氧生成增多及氧化应激,致
使细胞内游离脂肪酸、脂肪中间代谢产物堆积
m,
降低了脂肪细胞对胰岛素的敏感性,抑制胰岛素信
号转导' 最终导致T2DM的发生。由此推测,改善
线粒体功能和生物发生可能有助于治疗和预防IR和
T2DM〇
天然产物被认为是发现抗T2DM药物的重要来
源|91。许多天然化合物如黄烷醇111)1和花青素1111已被
报道通过不同的信号途径改善IR。白藜芦醇作为一
种氧化还原活性化合物可通过对抗活性氧来改善线
粒体功能和生物合成|121。革麦宁(piperlonguminine,
GBN)和胡椒喊(piperine,PIP)作为中、蒙医常用药
材荜茨尸批/" /cwgww L.的主要有效成分,同样具有抗
氧化的作用
|13|;
此外,P1P还具有抗惊厥、抗肿瘤|131、
降血脂|141、降血压|151、免疫调节1〜、促进药物吸收代
谢[1'降低IK大鼠血糖和增加胰岛素敏感性等作
用,而GBN由于其良好的降脂功效和低毒性已经成
为国家重大新药创制专项的候选药物|IIM91。本研究
基于现今治疗IR的现状,充分发挥中医学治疗慢性
疾病及代谢类疾病的优势,从中药荜茇中提取活性
成分P1P和GBN,用于高脂高糖高盐诱导的糖脂代谢
紊乱丨R大鼠,探讨GBN和PIP对IR大鼠糖脂代谢和肝
脏与肌肉线粒体DNA( mitochondrial DNA, mtDNA)
拷贝数的影响,挖掘荜茇生物碱在代谢类疾病方面
的应用价值。
材料
I
.动物
SPF
级健康雄性
SD
大鼠120只
,
8周龄,
体质量(180±20)
g
,由成都达硕实验动物公司提
供,生产许可证号:SCXK (川)2013-24,合格证号:
0014842,批号:0018170。词养温度为(23±1)^:,相
对湿度为40%〜60%,在光照和黑暗各12h交替条件
下进食和饮水。
2. 药物PIP购自西安天本生物工程有限公司,
批号:TBP130312,经分析鉴定,纯度为98%。GBN
由本课题组合成,经分析鉴定,纯度为98%。罗格
列酮片(R0G)购于成都恒瑞制药有限公司,规格:
4mg/片,批号:H20030569。临用前以0.9%氯化钠
溶液按照设定浓度稀释,置4T冰箱备用,灌胃前
放至室温并混匀。盐酸二甲双胍片(MET)购于中
美上海施贵宝制药有限公司,规格:〇.5g/片,批号:
H20023370,处理方式同R0G。链脲佐菌素(STZ)购
于广州康龙生物科技有限公司,规格:l〇〇mg/瓶,批
号:18883664,取STZ 100mg,溶于10mL柠檬酸钠缓
冲液,调其pH值为4.5。
3. 试剂0.9%氯化钠溶液(贵州天地药业有
限公司,批号:H13082809),75%乙醇溶液(昆明
力健消毒制品有限公司,批号:130810),吐温-80
(天津市化学试剂三厂批号:130720),甘油三酯
(triglyceride, TG)试齐IJ盒(中生北控生物科技股
份有限公司,批号:146530),胰岛素ELISA试剂盒
(上海沪峰生物科技有限公司,批号:20140401A);
DNA提取试剂盒(Biomiga生物技术有限公司,货号:
GD2211-02),Trizol(Amhion公司,批号:229010),
逆转录试剂盒(Promega北京生物技术有限公司,批
号:),Go Taq qPCR Master Mix (Promega
北京生物技术有限公司,批号:)。
4. 仪器SP-756型紫外可见分光光度仪(上海
光谱仪器有限公司),DNM-9062G型酶标仪(北京普
朗新技术有限公司),TGL-16B型台式离心机(上海
安亭科学仪器厂),移液枪(德国BRAND公司),三
诺安稳血糖仪/血糖试纸(长沙三诺生物传感技术股
份有限公司),PT124S型电子天平(梅特勒托利多仪
器上海有限公司),涡旋混合仪(江苏海门市其林贝
尔仪器制造有限公司),定量采血管(南通福利来医
疗器材有限公司),Real-time PCR仪(罗氏公司)。
方法
1.分组、造模及给药120只大鼠适应性喂养1
周后,分为2批,每批60只;各批又随机分为正常组
•2510.
中华中医药杂志(原中国医药学报)2021年5月第36卷第5期
CJTCMP
,
May
2021,
Vol
.36,
No
.5
10只,高脂饮食组50只,正常组给予普通饲料(购于
云南中医药大学动物房),高脂饮食组给予高脂词料
(高脂饲料的质量比为:基础饲料57%、糖25%、猪
油17%、盐1%,由本课题组实验室加工而成)。喂养
标准为每只60g/d,且每3天用高脂乳剂(高脂乳剂:
适量猪油在80T水浴加热,按猪油与胆固醇10 : 3的
比例充分搅拌溶解;加人适量吐温-80,搅拌至乳液
充分乳化;最后缓慢加人适量温水稀释,即成为稳
定的高脂乳剂;配制好的高脂乳剂保存于-20T冰箱
中备用,灌胃前于80丈水浴中加热融化,凉至不烫手
后按所需剂量给予大鼠灌胃)按10mL/kg灌胃1次,
每周按5mg/kg剂量给予STZ腹腔注射1次,注射STZ
后,大鼠给予20%蔗糖水饮用以防发生低血糖:,采取
自由饮水,定时定量喂词,每周称重1次。造模4周后
取血,检测空腹血糖是否异常升高,判断造模情况。
第一批造模成功的大鼠再随机分为5组:模型组,
ROG组(3mg/kg), PIP低、中、高剂量组(15、30、
60mg/kg),每组10只;第二批造模成功的大鼠也随机
分为5组:模型组,MET组(150mg/kg), GBN低、中、
高剂量组(5、10、20mg/kg),每组10只,各组持续给
予相应药物8周。
2. 样本收集末次给药结束后,大鼠禁食不
禁水12h,摘眼球取血并处死。血液3 000r/min离心
lOmin,分离血清。取肝脏、肌肉组织样本存于-80^
超低温保存箱备用。
3. 观察指标及其测定方法
3.1 空腹血糖(fasting blood glucose, FBG
检测每隔4周(0周、4周、给药4周、给药8周),各组
大鼠禁食不禁水12h,采用大鼠尾尖取血,血糖仪检
测 FBG。
3.2葡萄糖糖耐量(oral gl ucose tolerance test,
OGTT)的检测给药8周后,以FBG为基础,以浓度
为250g/L的葡萄糖溶液(2g/L)灌胃后,分别于0、
1、211测定血糖,计算2h餐后血糖(postprandial Wood
glucose, PG)下降率。2h PG下降率(%) = (lh BG-2h
BG)/lh BGxlOO%。
3.3 空腹胰岛素(fasting insulin, FINS)水平
检测和膜岛素抵抗指数(insulin resistance index,
HOMA-IR )的计算取已分离血清,采用酶联免疫
(ELISA)法测定FINS,并计算肋1^八-111〇1101入-
IR=FPG (mmol/L) x FINS (mIU/L) /22.5〇
3.4血清TG含量的检测取已分离血清,按照
TG试剂盒说明书操作步骤,测定TG。
3.5肌肉和肝脏mtDNA拷贝数和肌肉PGC-ict
mRNA表达的检测米用Keal-time PCR法,按照
Biomiga提取试剂盒说明书提取大鼠肝脏和肌肉
DNA,以线粒体编码基因细胞的拷贝数作为mtDNA
拷贝数,为减少不同组织DNA模板量的差异,以HBB
作为内参;采用Trizol法提取大鼠肌肉总RNA,按照
试剂盒操作进行反转录,转录后的产物进行PCK
扩增,以P-actin作为内参,米用SY'BR green I染料
法,PCR反应条件为(95^ 10min—95T; 15s—55丈
30s—72t 30s),所有PCR均采用3个复孔进行,采用
A ACT法计算各目的基因的相对表达M。反应引物
由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,基因引
物序列见表1。
表
1
引物序列
基因
基因序列
引物(5’^3’)
产物长度
(
bp)
mtDNANC_001665.2
F: TCT CGA TGG TAA CGG
100
GTCT
H
:
ACG GCT ATG TTG AGG
A AG G
HHB
NC_005100.4F: GCT GOT TGT CTA CCC 118
TTG GA
R : GGC GTT TAT CAC CTT
CTT GC
FGC-laNM_031347.1
F: ACT GAG CTA CCC TTG
112
GGA TG
R: TAA GAA TTT CGG TGG
TGACA
p-actinNM_031144.3
F: ACA GGA TGC AGA AGG
117
AGA TTA C
R: ACA GTG AGG CCA GGA
TAG A
4.统计学方法采用SPSS 15.0统计软件,各组
数据均以表示,组间比较用单因素方差分析,组
内治疗前后比较用配对比较的凇验。以P<〇.〇5为差
异有统计学意义。
结果
1. 大鼠一般情况正常组大鼠被毛光泽,精神
良好,食欲正常,对外界反应正常。模型组大鼠毛色
枯燥松散,无光泽,自发活动减少,对外界刺激的敏
感性下降,大便较正常组稀溏,明显出现三多(多
尿、多饮、多食)症状。各治疗组大鼠给药后三多症
状均有一定程度改善,毛色较模型组润泽,自发活动
增多,对外界的刺激较敏感。词养过程中各组大鼠无
死亡。
2. P1P、GBN对IR模型大鼠FBG的影响见表2-
表3。造模4周后,与正常组比较,其余各组大鼠FBG
均显著升高(户<〇.〇丨,P<〇.〇5);给药4、8周,与模型
)的
中华中医药杂志(原中国医药学报)2021年5月第36卷第5期
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No
.5
• 2511 •
组比ROG组,MET组,PIP、GBN各剂量组FBG均
显著降低(P<〇.〇l,P<〇.〇5)。
表
2 PIP
对大鼠
FBG
的影响(
1±
夂
w=10, mmol/L)
组别
造模前
造模
4
周给药
4
周给药
8
周
正常组
4.36 ±0.66
4.22±0.18
4. 31 ±0.29 4. 07±0.39
模型组
4.64 ±0.61
6.04 ±0.45”
6.09 ±0.27“ 6.14±0.25“
ROG
组
4.57 ±0.44
5.04±0.31“
4.39±0.36
a
4.44±0.32
aa
PIP
低剂
4.64 ±0.50
5.06 ±0.42“
4.66±0.24
a
4.51±0.24
aa
量组
PIP
中剂
4.47±0.50 5.05±0.22 4.52±0.32A4.47±0.27
aa
量组
PIP
高剂
4.27±0.51 5.06±0.28” 4.58±0.34AA 4.35±0.25A
量组
注:与正常组同期比较,
^<0.05, AA/5<0.013-
><0.05, ”P<0.01
;与模型组同期比
较,。表表
5
同。
表
3 GBN
对大鼠
FBG
的影响《
=10, mmol/L)
组别
造模前
造模
4
周
给药
4
周给药
8
周
正常组
5.52 ±0.31
5.13 ±0.234.99 ±0.224.95 ±0.18
模型组
5.21 ±0.54
5.97 ±0.54“6.16 ±0.74"6.51
土
0.26"
MET
组
5.32 ±0.47
5.43±0.51’5.30
土
0.39^5.60
土
0.27^
G
酬氐
5.38 ±0.25
5.41 ±0.34.5.87±0.32
a
6.16 ±0.3#
剂量组
GBN
中
5.37 ±0.27
5.29
士
0.41_5.39±0.52
a
5.72±0.22
aa
剂量组
GBN
高
5.27±0.90
5.34 ±0.26’
5.39±0.35
aa
5.37±0_26
aa
剂量组
3. PIP、GBN对1R模型大鼠OGTT的影响见
4-表5,图1-图2。当给予外源性葡萄糖时,正常组
血糖迅速上升,lh达峰值,2h后血糖回落至正常水
平。而模型组lh血糖迅速上升,2h后仍处于高血糖
状态。在2h时,与正常组比较,模型组血糖显著升高
(/V0.01)。模型组、两阳性药组和HP、GBN组大鼠
血糖值在口服葡萄糖后lh达峰值,之后血糖值逐渐
降低,但不能降至空腹水平。两阳性药组和PIP、GBN
组2h PG下降率均显著高于模型组(P〈〇.〇l)。
表
4 PIP
对大鼠
OGTT
的影响
«=10, mmol/L)
组別
Ohlh2h
正常组
4.07 ±0.39
6.22±0.58
5.48 ±0.39
模型组
6.14±0.258.03±0_447.04 ±0.36*
ROG
组
4.44 ±0.326.49 ±0.76
5.68 ±0.33
IMP
低剂
fi
组
4.51 ±0.246.43 ±0.605.63 ±0.71
pip
中剂量组
4.47±0.27
6.76 ±0.675.74 ±0.41
pip
高剂
a
组
4_35±0.25
6.63 ±0.455.63 ±0.46
表
5 GBN
对大鼠
OGTT
的影响(
7±^
,《
=10, mmol/L)
组别
Oh lh 2h
正常组
4.95 ±0.186.71 ±0.33
5.41 ±0.10
模型组
6.51 ±0.26
7.32 ±0.40
7.05 ±0.34*
MET
组
5.60 ±0.276.24 ±0.405.60 ±0.09
GBN
低剂量组
6.17±0.306.74 ±0.21
5.89 ±0.23
CJBN
中剂量组
5.72 ±0.22
6.24 ±0.33
5.61 ±0.15
GBN
高剂量组
5.37±0.26
6.20 ±0.415.61±0.11
<
5-I
%
0-I
)
5H
讲
X
X
镗
H-
o
d
H
Z
图
1 PIP
对大鼠
2h PG
下降率的影响
U±5
,,《
=10)
注:与正常组比较,
><0.05, "P<0.01;
与模型组比较,
AP<0.05, AAP<0.01
。
下图同。
图
2 GBN
对大鼠
2h PG
下降率的影响(
i±5, w=10)
4. PIP、GBN对IR模型大鼠FINS和HOMA-IR
影响见表6-表7。与正常组比较,模型组大鼠的
FINS和HOMA-IR水平显著升高(P<0.05);与模型组
比较,两阳性药组,PIP、GBN各剂量组大鼠FINS和
HOMA-IR水平均显著下降(P<〇.〇5)。
表
6 PIP
对大鼠
FINS
和
H()MA-1R
的影响
(f ±s
,
w=10)
组别
FINS(mIU/L)
HOMA-IR
正常组
22.32±4.82
4.09 ±1.26
模型组
30.31 ±4.27*
6.96 ±1.27*
ROG
组
23.48 ±4.62
a
4.68±1.25
a
P1P
低剂量组
25.50 ±6.93
a
5.17±1.64
a
PIP
中剂量组
25.72 ±5.83
a
5.16±1.47
a
pip
高剂量组
25.48 ±4.37
a
4.96±1.13
a
注:与正常组比较,
><〇.〇5;
与模型组比较
,
AP<0.05
下表同
:
表
的
•2512-
中华中医药杂志(原中国医药学报)2021年5月第36卷第5期
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2021,
Vol
.36,
No
.5
表7 GBN对大鼠FINS和HOMA-1R的影响(i±i, «=10)
组別
FINS(mIU/L)
HOMA-IR
正常组
23.47±2.905.16±0.94
模型组
32.74 ±2.64'
9.53 ±0.75*
Mt:T 组
26.21 ±2.60
a
6.71±0.84
a
(;BN低剂tt组
27.68 ± 2.01A7.61±0.67
a
GBN中剂M组
25.74 ±4.83
a
6.65±1.31
a
GBN高剂U:组
24.86 ± 5.19
a
5.96±1.80
a
5. PIP、GBN对IR模型大鼠TG的影响见图
图4。与正常组比较,模型组大鼠的TG水平显著升高
(/MX05);与模型组比较,两阳性药组,P1P各剂量组和
(;BN中剂量组大鼠TC冰平显著下降(P<0.05, _P<0.01)
图3 PIP对1R模型大鼠TG的影响(J土i', n=10)
U
K
;
H
c
,.
c
»'
参
图4
GBN
对
IR
模型大鼠
TG
的影响(3
F
±
J
, «=10)
6. P1P、GBN对IR模型大鼠肌肉和肝脏mtDNA
拷贝数的影响见图5-图心在肌肉上,与正常组比
较,模型组
mtDNA含量有所下降,但差异无统计学
意义;与模型组比较,两阳性药组均有上升趋势,但
差异无统计学意义;PIP低、高剂量组和GBN高剂量
组mtDNA含量显著增加(P<0.01, /^)。在肝脏
上,与正常组比较,模型组m山NA含量有下降趋势,
其中PIP模型组差异有统计学意义(P<0.05);与模
型组比较,两阳性药组均有上升趋势,PIP各剂量组
mtDNA含量显著增加(P<0.01, P<〇.〇5),GBN各剂
量组有上升趋势:
CZD肌肉
_肝脏
丨冬15 PIP对IR模型大鼠肌肉和肝脏m丨DNA拷贝数的影响
L
.0-
.5
-
0.
图
6
(;BN对IR模型大鼠肌肉和肝脏m丨丨)NA拷W数的影响
7. PIP、GBN对IR模型大鼠肌肉PGC-lot mRNA
表达的影响见图7-图8。川模型大鼠肌肉PGC-la
mRNA较正常大鼠显著下降(P<0.05); PIP和GBN干
预后,PGC-la mRNA表达S著升高(P<0.05)。
-
-
-
-
-
-
-
咖
-
-
-
-
-
-
-
-
劫
-
-
-
-
-
-
-
-
-
碑
-
-
-
-
-
-
-
友
2
-
-
-
1
-
-
-
-
-
运
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
X
-
V
-
-
-
-
-
-
N
-
-
-
-
-
-
-
H
-
-
-
-
s
-
-
-
-
-
-
1
-
-
1
-
-
-
a
-
-
-
-
-
-
-
-
-
I
-
-
-
-
-
-
-
3
-
-
-
-
-
-
C
-
-
-
-
-
-
-
-
CL
-
-
-
-
,,,,
丨冬丨7 P1P对1R模型大鼠肌肉PGC-la mRNA表达的影响
(•▽
土
^1
,
w=10)
阁
8
GBN对IR模型大鼠肌肉PGC-la mRNA表达的影响
(■^±•5,《=10)
3-
中华中医药杂志(原中国医药学报)2〇21年5月第36卷第5期
CJTCMP
,
May
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.36,
No
.
• 2513 •
讨论
高热量饮食习惯和低水平的体力活动是当今世
界代谢综合征的主要原因。
IR
是各种慢性疾病(包
括
T
2
DM
、慢性肾脏疾病和认知障碍等)发病的主要
危险因素|2°_22】。
IR
的状态下糖脂代谢会紊乱,在器
官组织水平主要表现为肝抵抗即肝糖产生和输出增
多,造成空腹高血糖症而
IR
还能够有效的使脂蛋
白脂肪酶合成活性下降,引起
TG
的水解速率下降,
使
TG
含量上升,使机体出现脂代谢紊乱本研究
因此,
IR
状态下
PGC
-
la
水平的降低,预计线粒体功
能会下降。本研究发现,
pip
和
r
,
BN
在增加
m
大鼠肌
肉相对
mtDNA
拷贝数的同时能够显著增加骨骼肌
PGC-lo
(表达。表明
P
(;
C-la
可能是介导
PIP
和增
力
Bm
〖
DNA
拷贝数、诱导肌肉线粒体生物发生、改善
IR
线粒体损伤的重要机制之一^因此以
mtDNA
拷贝数
为靶点,可以直观的反映荜茇生物碱改善丨丨彳的作用
机制,在以后的研究中,也可围绕
mtDNA
拷贝数,挖
结果显示,利用高脂饲料喂养和高脂乳剂灌胃配合
低剂量
STZ
腹腔注射可以构建稳定的
IR
模型,大鼠出
现了
FBG
升高、糖耐量异常、血清
TG
升高的特征。而
WP
、
GBN
各给药组均在各项糖脂代谢生理指标上有
着一定程度的改善,提示
PIP
和
GBN
对
IR
导致的糖脂
代谢紊乱都有着较好的改善作用。
国内外的研究表明,无论在体内还是体外
GBN
和
PIP
对
IR
糖脂代谢异常有潜在的预防和治疗作用,
但目前对
GBN
和
PIP
在
IR
线粒体损伤中的直接相关
性的研究尚不多见。线粒体是细胞进行生命活动的
主要能量供体,几乎所有的细胞活动都需要线粒体
功能|251,并且在疾病早期,线粒体功能的变化往往
先于临床症状出现,且越来越多研究表明线粒体功
能障碍与
IR
、2型糖尿病的发生发展密切相关
I
26-2'
因此,对于线粒体功能改变的检测有利于疾病的预
防和治疗。目前,有许多方法可以检测线粒体功能,
如呼吸控制率检测、线粒体
ATP
生成率的变化检测、
线粒体膜电位、离子通道开放状态、形态学检测等。
但大多数方法都受到仪器、技能、环境、成本、效率
等多方面的限制,而采用
Real-time
PCR
对
mtDNA
拷
贝数进行检测,相对来说更加方便可行。本研究结
果显示
,PIP
和
GBN
增加了
IR
大鼠肝脏和肌肉的相对
mt
DN
A
拷贝数,表明它们可以诱导肝脏和肌肉线粒
体生物发生,改善
IR
线粒体损伤的情况。
PGC-lct
是一种核转录辅激活因子,是线粒体生
物发生的主要调节因子,可促进线粒体
ATP
合成和
氧化代谢,如氧化磷酸化和脂肪酸
P
-氧化
I
3。-3'肥
胖会引起的肌肉线粒体改变包括减少肌肉线粒体数
量、肌肉氧化能力|32—341和减少负责脂氧化代谢的核
基因(
g
卩
PGC
-丨
a
和
PGC
-丨
a
激活基因)的表达丨35,。
近年来的研究1371表明,
PGC
-1
a
基因敲除可减少线粒
体拷贝数和线粒体脂肪酸氧化、生物发生和功能相
关基因的表达。此外
,PGC-la
在肌肉
IR
中的表达降
低,
PGC
-
l
〇
i
通过支持核呼吸因子的转录活性参与线
粒体生物发生,从而调节氧化代谢相关基因的转录。
掘荜茇生物碱改善
IR
的具体信号通路:
参考文献
[1] Bae C R,Hasegawa K,Akiedaasai S,et ile involvement of
food texture in insulin resistance and energy metabolism in male
rats J End
〇
crinol,2014,222( 1 ):61 -72
[2] Rawat A K,Korthikunta V,Gautam S,el al.4-Hydroxyisoleurine
improves insulin resistanc*e by j)iT)moting mitochonrhial biogenesis
and act through AMPK and Akt dependent rapia,
2014,99:307-317
[3] Henagan I M,Lenard N R,Gettys T W,et y quercetin
supplementation in mice increases skeletal muscle PGC1 a
es mittx-honrlrial function and attenuates insulin
resistance in a time-spec ific One,2014,9(2):e89365
|4] Dujic TXausevir A,B^g
〇
T,et c cation transporter 1
variants and gastrointestinal side effects of metfonnin in patients
with type 2 )et Med,2016,33(4):511-514
[5] Salzano A.D'Assante R,Heaney L M,et elter
syndrome,insulin resistance,metaholir syndrome,and
diahetes:Review of literature and clinical to
End
〇
crine,2018.61 (2): 194-203
[6] Martin S S role of mitochondria in the aetiology
of insulin resistance and type 2 General Subj,
2014? 1840(4
):
1303-1312
[7| Lipina C,Macrae K,Suhm T,et ondrial substrate
availability
and
its
role
in
lipid-indured
insulin
resistance
and proinflammatory signaling in skeletal es,
2013,62(10)
:
3426-3436
[8] Rao X,Zhong X,et se protects against diet-induced
insulin resistance through dovvnregnlation of protein kinase C P in
0ne,2013,8( 12):e81364
[9] Xu Y,Dai Y,et l proflurts for the treatment of type 2
dial>etes mellitus:Pharmarolog^ and rol Res,
2018,130:451-456
[10] Engin A kis A las D,et flavanols-rich
natural products relieve obesity-related insulin resistance?.Food
Chem Toxicol,2017,112:157-167
[11] Belwal T,Nahavi S F,Nahavi S M,et y anthorvanins and
•2514*
中华中医药杂志(原中国医药学报)2021年5月第36卷第5期
CITCMP,May
2021,
Vol
.36,
No
.5
insulin resistance:^ hen food becomes a nts,
2017,9(10):1111
[12] Cheng Z,Srhmelz E M,Liu D,el ing mitochondrial
alterations to prevent typ^ 2 diabetesiEvidence from studies
of dietary redox-artive Nutr Food Res,
2014.58(8)
:
1739-1749
[13] Sunila E S,Kuttan modulatory and antitumor activity
of Piper longum Linn, and piperine.J Ethno Pharmacol,2004,
90(2-3):339-346
[14] Bao L cological research of antlipidic
effect of pij>*rine.J Med Phann Chin Minoril.2004,10(l):22-23
[15] Taqvi S A J,Gilani A pressure lowering and effects
of piperinej Carrliovase Phannarol,2008,52(5):452-458
[16] Dorga R S,Shanker toxirologiral effects of
pi{x*rine in *olog .2(X)4.196(3):229-236
[17] Khajuria A,Thusu N,Zutshi ne modulates permeability
rhararteristirs of intestine by inducing alterations in membrane (ly-
namirs:Iiifluence on brush Ixuder membrane fluidity,ultra sturrture
and enzyme e(lic ine,2002,9(3):224-231
[18] Atal S,Agrawal R P,Vyas S,et tion of the effect of piperine
per se on blood glucose level in alloxan-induced dial)etir mic ta
Pol Phami,2012,69(5):%5-%9
[19] Jin an G^hao R,et perlipidemir compounds from
the fruit of piper longum L..Phytother Res,2009,23(8): 1194—1196
[20] Patel T P,Ravval A K,et n resistanre:An
additional risk factor in the pathogenesis of cardiovascular disease
in type 2 Fail Rev,2016,21(2):l 1-23
[21] Dave N,Wu J,Thomas c kidney disease-induced insulin
resistancerCurrent state of the es Hep,2018,18(7):44
[22] Kullmann hmid n resistance at the
rmssmads of metabolic and rf)gnitive disorrleis in
〇
l Rev.
2016,96(4): 1169-1209
[23] Turnbull J,Tiheria E,Pereira S,et ency of a glycogen
synthase-associated Protein,Epm2aip,causes decreased
glvrogen synthesis and hepatic insulin resistanre.J Biol Chem,
2013.288(48)
:
34627-34637
[24]
白艳香,刘馨.玉米油对
2
型糖尿病大鼠胰岛素抵抗的作用研究
.
中国生化药物杂志,
2014,34( 1 ):59-61
[25] Hernandez-Resendiz S,Buelna-Chontal M,Correa F,et al.
Targeting mitochondria for cardiac protect Dmg Targets,
2013,14{5)
:
586-600
[26] Bonnard C,Durand A,Peyrol onrlrial dysfunction results
fW>m oxidative stress in the skeletal muscle of diet-induced insulin-
resistant mic ej Clin Invest.2008,118(2):789-800
[27] Chow L,From A,Seaquist al muscle insulin resistance:The
interplay of local lipid excess and mitochondrial dysfunction.
Metah
〇
lism.2010,59( 1 ):70-85
[28] Franko A,von Kleist-Retzow J C,Neschen S,et al
丄
iver adapts
mitochondrial func tion to insulin resistant and diabetic states in
mirej Hepatol,2014,60(4):816—823
[29] Lipina C,Macrae T,et ondrial substrate
availability and its role in lipid-indured insulin resistance
and proinflammatory signaling in skeletal es,
2013,62(10):3426-3436
[30] Wu Z,Puigserver son U,et isms controlling
mitcx'hondrial biogenesis anfl respiration througli the thennogenic
coartivator PGC-1 .Cell, 1999,98( 1): 115-124
[31] Hiiimg T Zheng D,HoumaiTi J A,et pression of PGC1 a
inc reases peroxisomal activity aiwl mitochondrial fatty arid oxidation
in human primary J Physiol Endocrinol Metah,
2017.312(4):E253-E263
[32] Koves T R,Ussher J R,Nolaiul R C,et ondrial overload and
incomplete fatty acid oxidation contribute to skeletal muscle insulin
Metah,2008.7( 1 ):45-56
[33] Kim J r R C,C
〇
rtrighl R L,et oxidation is reducerl
in oiiese human skeletal J Physiol Endocrinol Metal),
2000,279(5):E 1039-E1044
[34] Befroy D en K P ,Dufour S,et ed mitochondrial
substrate oxidation in muscle of insulin-resistant offspring of type 2
dial^etir es,2007,56(5): 1376-1381
[35] Heilhronn L K,Gan S K,Tumer N,et s of mitorhondrial
biogenesis and metabolism are lower in overweight and
obese insulin-resislant subjects.J Clin Endocrinol Metah,
2007,92(4
):
1467-1473
[36] Mensink ink M K,Russell A ed skeletal
muscle oxidative enzyme activity and restoration of PGC-1 alpha
and PPAR lieta/delta gene expression uj)
〇
n msiglitazone treatment
in obese patients with type 2 diabetes J Ohes(Lonfl),
2007,31(8
):
1302-1310
[37] Nagai tsu S,Erion D role of peroxisome
proliferator-activated receptor gamma roactivator-1 beta in the
pathogenesis of frurtose-inrlured insulin Metah.
2009.9(3)
:
252-264
(收稿日期
:2019
年
10
月
29
日)