最新消息: USBMI致力于为网友们分享Windows、安卓、IOS等主流手机系统相关的资讯以及评测、同时提供相关教程、应用、软件下载等服务。

含生物质炭城市污泥堆肥中溶解性有机质的光谱特征

IT圈 admin 33浏览 0评论

2024年4月23日发(作者:丹乐心)

含生物质炭城市污泥堆肥中溶解性有机质的光谱特征

闫金龙;江韬;赵秀兰;魏世强;王定勇;李璐璐;郭念;孙文彬

【摘 要】以外源添加生物质炭的城市污泥堆肥过程中溶解性有机质(DOM)为研究

对象,讨论了其紫外-可见和荧光光谱特征变化.结果表明:与对照组相比,外源添加生

物质炭的处理其堆肥DOM的芳香性和腐殖化程度更高,有利于提高堆肥的腐熟度,

且外源添加花生壳炭的处理较添加小麦秸秆炭的处理更有利于堆肥腐熟度的提高.

外源添加花生壳炭的处理在堆肥21d后,其堆肥腐熟度可能达到峰值,而外源添加小

麦秸秆炭的处理其堆肥腐熟度则随着堆肥时间的进行而增加.对照组和处理组堆肥

DOM的FI>0.7,BIX>0.8,表明其来源为自生源,可能与微生物对有机物的降解有关.

因此,通过对城市污泥堆肥过程中DOM的光谱特征分析,能较好地评估城市污泥堆

肥腐熟度的情况.

【期刊名称】《中国环境科学》

【年(卷),期】2014(034)002

【总页数】7页(P459-465)

【关键词】生物质炭;堆肥;溶解性有机质(DOM);紫外光谱;荧光光谱

【作 者】闫金龙;江韬;赵秀兰;魏世强;王定勇;李璐璐;郭念;孙文彬

【作者单位】西南大学资源环境学院,重庆400716;西南大学资源环境学院,重庆

400716;重庆市农业资源与环境研究重点实验室,重庆400716;西南大学资源环境

学院,重庆400716;重庆市农业资源与环境研究重点实验室,重庆400716;西南大学

资源环境学院,重庆400716;重庆市农业资源与环境研究重点实验室,重庆400716;

西南大学资源环境学院,重庆400716;重庆市农业资源与环境研究重点实验室,重庆

400716;西南大学资源环境学院,重庆400716;西南大学资源环境学院,重庆

400716;西南大学资源环境学院,重庆400716

【正文语种】中 文

【中图分类】X705

随着我国城市经济的高速发展,城市污水处理带来的城市污泥产量急剧增加[1].城市

污泥是潜在的有机肥原料,同时污泥中还含有病原微生物、重金属等污染物,极易造

成二次污染,因此,对污泥的处置一直是研究的热点[2-3].其中,堆肥是污泥处置及实

现无害化、资源化利用的重要方法之一[4-5].近年来,为提高堆肥效率,常采用外源添

加生物质炭的方式改善堆体条件(例如C/N比,含水率,孔隙度,堆肥养分等),提升堆

体有机质稳定性和腐殖化程度[6-7].

堆肥中有机质转化是评估堆肥腐熟程度和环境安全性的重要基础.堆肥过程中溶解

性有机质(DOM)的变化被认为是能灵敏反映堆肥腐熟状况的重要指标,且较堆肥的

固相组分更具代表性[8-9].

目前,针对DOM定性研究,应用较多的是紫外-可见光谱和同步荧光技术,因其灵敏

度高和分析便捷,被广泛应用于自然有机质(NOM)研究中,尤其是水体DOM归趋

[10].相比之下,针对堆肥DOM 性质的研究较少[11-12].目前,已有报道表明添加外

源生物质炭有利于堆肥固炭,而高C/N比下堆肥腐熟度也相应提高[13-14],而在该

过程中对DOM 的探讨还相对不足,且以前研究的结论也并不一致[15-16],尤其是

对不同调理剂处理方式下堆肥 DOM 的性质光谱表征缺少关注[17-18].基于此,本

研究采用紫外-可见光谱及三维荧光光谱对添加不同生物质炭的城市污泥堆肥过程

中DOM 的光谱特征进行表征,并通过特征参数的计算,进一步了解不同处理堆肥在

堆肥过程中的差异,为进一步提高堆肥效率、正确评估堆肥腐熟程度和环境安全性

提供一定的理论依据.

1.1 不同堆肥处理及样品采集

以污水处理厂污泥和小麦秸秆作为堆肥基质,以生物质炭(完全炭化)为调理剂.污泥

取自重庆市某污水处理厂的脱水车间,小麦秸秆取自学校农场,破碎至 2~3cm,生物

质炭购于商丘市三利新能源有限公司.将污泥与小麦秸秆按一定量混合,使混合堆肥

物料的C/N比达到18,然后向堆体添加生物质炭.以未加生物质炭的污泥为对照(以

下简称“CK”).生物质炭的类型为小麦秸秆炭(以下简称“+麦”)、花生壳炭(以下

简称“+花”),添加量为堆肥基质的 6%(按堆体的重量记).将各堆体分别放入容积为

26.4L (80cm× 55cm×60cm)的泡沫箱中,箱的底部打一个小孔,接入通气泵,采用强

制通风与人工翻堆相结合的方式进行高温好氧堆肥(图 1).堆肥过程中每周翻堆1次,

堆体的水分保持在60%~70%,根据堆肥期间温度变化情况,分别于堆肥初始(第

0d)、堆肥21d、42d后取样进行分析.不同堆肥处理的初始物料基本性质见表1.

1.2 堆肥DOM提取

采用去离子水提取堆肥 DOM[19].将所采集的堆肥样品自然风干后,磨细,过2mm

筛.按土:水=1:6(W/V),采用去离子水与堆肥固体混合后, 25℃下200r/min振荡

16h,然后400r/min下离心20min,上清液过 0.45μm滤膜后,滤液即为堆肥DOM

样品.DOM测定TOC和TON(德国,Yena Multi N/C 3000)后,浓度以DOC(mg/L)

计.所有样品在进行光谱测定前,均稀释相同倍数(0.6mLDOM定容到100mL棕色

容量瓶).

1.3 光谱测定

紫外-可见光谱在 Hitachi U-1800紫外-可见分光光度计上进行测定.扫描波长为

200~800nm,程序自动绘制扫描曲线.根据光谱数据,计算特征紫外吸光系数

SUVA254nm[SUVA254nm= A254/(b·c)]、

SUVA280nm[SUVA280nm=A280/(b·c)],单位:L/(mg C·m); A254为波长

254nm时吸光度;b为石英吸收池厚度(0.01m);c为DOM浓度(mg/L).同时计算

E2/E3(250nm及365nm时吸光度比值)和E4/E6(465nm和665nm时吸光度比

值).

采用Hitachi F-7000荧光光谱仪对DOM样品进行三维荧光扫描.激光光源 150W

氙弧灯, PMT电压为700V,信噪比>110;狭缝宽度Ex=5nm, Em=2nm;响应时间为

自动.扫描范围:Ex=200~450nm,Em=200~600nm,扫描速度1200nm/min.测定

前,保持样品温度恒定,以去离子水做荧光测定空白.Origin 8.0绘制三维荧光光谱图.

同时提取相关荧光特征,并计算荧光指数(FI)、自生源指数(BIX)及腐殖化指数(HIX),

具体计算方法为:FI为Ex=370nm时,Em波长分别为450和500nm时的荧光强度

比值[20-21];BIX为Ex=310nm时,Em波长分别为 380和 430nm 时的荧光强度

比值[22-23]; HIX=ΣI434→480/(ΣI300→344+ΣI434→480),式中 ΣIx→y表示在

Ex=255nm时,连续发射波长范围荧光强度的积分面积[21,23-24].

2.1 不同处理堆肥过程中DOM的紫外-可见光谱特征变化

2.1.1 不同处理堆肥过程中DOM的紫外-可见光谱 紫外-可见吸收光谱是由于分子

中的价电子,特别是有机质中不饱和键和芳香性结构中π-π*电子跃迁而产生的.实际

上,堆肥作为有机质的一种特殊形式,其结构和功能基团较为复杂,不同生色团较多,并

不具有明显的易被鉴定的光谱特征.从不同处理堆肥过程中 DOM的紫外可见光谱

图(图2)可知,在200~800nm全波长范围内,并未发现有任何特征吸收峰,在可见光

长波段,几乎无任何吸收.这和很多自然有机质(NOM)的紫外-可见光谱特征是一致

的[25].但随着堆肥过程的进行,处理组污泥堆肥其 DOM的紫外可见光谱发生了明

显的红移现象,且随着堆肥时间的进行其红移现象越来越明显.造成这种现象的原因

可能是在堆肥过程中,处理组堆肥的腐熟度较对照组有大幅度的提高,DOM 共轭结

构和芳香结构增多,腐殖化程度增强.其次,表明添加小麦秸秆和花生壳外源生物有机

质炭后,有利于提高城市污泥堆肥的腐熟度.

2.1.2 堆肥过程中 DOM 的紫外特征参数 SUVA254nm是研究天然有机质的重要

特征参数,其大小可间接表征有机质的芳香性程度, SUVA254nm越高,有机质芳香

度越高[26-27].从表 2可知,对照组和添加小麦秸秆炭的处理组随堆肥时间进行,其

SUVA254nm值不断增加,表明随着堆肥的进行,污泥堆肥的腐熟度不断增加,芳香性

结构不断增多.而添加花生壳炭的处理组在 42d后其值小于堆肥21d后的

SUVA254nm值,可能是由于添加花生壳炭的污泥在堆肥 21d达到了腐熟的峰值,

之后有机质在微生物的作用下开始分解.另外,各堆肥过程中对照组的 SUVA254nm

值总体上小于处理组的值,进一步说明了添加小麦秸秆和花生壳的外源有机质炭有

利于提高城市污泥堆肥的腐熟度.此外,DOM在280nm摩尔吸光系数

(SUVA280nm)与相对分子质量存在显著正相关

[26,28].由表2可知,处理组和对照组的SUVA280和 SUVA254的变化趋势基本一

致,反映了不同处理堆肥过程中 DOM 芳香性增强可能与大分子物质的增加有关.

Dorado等[29]研究表明E2/E3与E4/E6和有机质的腐殖化程度、芳香性及相对

分子质量成负相关,其值越高,腐殖化程度越低.本试验中,堆肥过程中对照组DOM

的E2/E3与SUVA254nm呈负相关 (r=0.89),而E4/E6与SUVA254nm未呈现负

相关关系,添加小麦秸秆炭的堆肥DOM的SUVA254nm与 E2/E3,E4/E6均未呈现

负相关关系,但添加花生壳炭的堆肥DOM的SUVA254nm与E2/E3,E4/E6均呈现

负相关关系(r=0.93和0.95),结果表明E2/E3可能较适合用于堆肥过程中腐殖化程

度的表征.

2.2 不同处理堆肥过程中DOM荧光光谱特征变化

2.2.1 不同处理堆肥过程中 DOM 三维荧光光谱 目前,针对三维荧光光谱荧光峰的

辨析大多还集中在淡水及海洋DOM的研究,事实上,土壤及堆肥中DOM的荧光特

征和自然水体的DOM并没有本质区别,因此,可采用水体DOM的荧光峰鉴别范围

对堆肥 DOM 进行划分[30-32],具体为紫外区类腐殖酸峰 A(230~250nm/426~

466nm);可见光区类腐殖酸峰C(300~305nm/408~456nm);类蛋白荧光峰

B(270~280/326~348nm)及类蛋白质荧光峰D(225~230/320~360nm).

从不同处理堆肥过程 DOM 的荧光光谱图(图3)中可得,除添加小麦秸秆炭的处理组

在堆肥开始时仅有D峰外,对照组和添加花生壳炭的处理组在堆肥开始都有B峰和

D峰,且堆肥开始均未发现C峰,除对照组外,两个处理组也未发现A峰.但随着堆肥

的进行,对照组和处理组的B峰均消失,C峰强度随堆肥时间增加而增强,D峰强度则

表现出总体上随堆肥时间增强而减小,而A峰强度的变化则为:对照组随堆肥时间增

加先减小后增加,而处理组则刚好相反,先增加后减小.结果表明,堆肥开始时,堆肥腐

殖化程度不高,主要以类蛋白峰为主,但随着堆肥过程的进行,堆肥腐殖化程度逐渐提

高,类腐殖酸峰逐渐增强,而类蛋白峰逐渐减弱.且处理组和对照组相比,A峰强度的变

化相反,说明添加外源有机质有利于提高堆肥的腐殖化程度.

2.2.2 不同处理堆肥过程中 DOM 荧光特征参数 荧光A峰和荧光C峰强度的比值

r(A,C)是一个与有机质结构和腐殖化程度相关的指标.由表3可知,堆肥21d后,对照

组和添加小麦秸秆炭的处理组均随着堆肥过程的进行,r(A,C)值逐渐减小,而添加花

生壳炭的处理组r(A,C)值逐渐增大,说明在堆肥 21d左右添加花生壳炭的堆肥腐熟

度可能达到了峰值,且处理组在堆肥过程中 r(A,C)值基本上小于对照组.而有研究报

道,大分子量、相对稳定的芳香性结构是C峰的主要贡献者,而A峰的主要来源是低

分子量但荧光效率高的物质[33],本研究荧光图谱也发现随着堆肥时间的进行,C峰

强度逐渐增大,r(A,C)值减小.说明随着堆肥时间的进行,堆肥腐殖化程度增加,添加外

源有机质炭有利于堆肥的腐殖化提高,进一步形成稳定的腐殖质.

腐殖化指数(HIX)是评价DOM腐殖化程度的重要指标[34-35].由于有机质芳香性

越强,荧光发射出现红移(向长波方向转移),因此HIX值范围在0~1之间,HIX越高

意味着DOM中碳氢化合物组分越少,腐殖化程度越高.间接水提取或直接抽滤的土

壤间隙水 DOM 的 HIX在0.6~0.9[21,36];而自然水体中 DOM 的 HIX一般

为:<0.6(海水)和>0.7(淡水).不同处理堆肥过程中DOM的HIX和海水DOM的值

更为接近,这可能和两种来源的 DOM都有着明显的自生源特征有关.研究认为BIX

在0.6~0.7之间时,DOM主要为陆源输入,外源输入特征明显[22],而本研究中 BIX

均>0.8,进一步证明了堆肥过程中DOM主要来源为自生源[23].

进一步,FI是评价 DOM 来源的依据:FI= 1.7~2.0时来自于微生物分解,芳香度不

高;FI<1.4来源于陆地输入,具有较高芳香度[21,37].对照组和处理组FI均大于

1.7(表3),和以自生源(微生物活动产生)为主的DOM荧光指数相近,表明微生物和

堆肥中DOM的形成有密切相关,同时也证明微生物对有机物的降解也是堆肥形成

的主要原因[38-39].

由于有机质的腐殖化程度提高,具有荧光特性的分子结构增多,发射光谱出现红移

[34,40].在EX=240nm时,发射光谱中后1/4波段荧光强度积分面积与前 1/4波段

荧光强度积分面积比值(A4/A1)可以用来作为有机质腐殖化的表征指标,比值增加意

味有机质芳香结果增加,腐殖化程度提高[34,41].本研究也得到类似结论,随着堆肥过

程的进行,处理组和对照组的 A4/A1值均增加,且前者大于后者,其中添加花生壳炭

的处理组的A4/A1值最大,结果说明随着堆肥过程的进行,堆肥DOM 的芳香程度

不断提高,添加外源有机质炭后,能提高堆肥的芳香度,且添加花生壳炭的处理对堆肥

腐殖化程度的提高效果更好.

3.1 对照组和外源添加生物质炭的处理组城市污泥堆肥中DOM的HIX与海水

DOM值接近,FI均>1.7,同时BIX均>0.8,表明其来源以自生源为主,可能与微生物

对有机物的降解有关.

3.2 外源添加小麦秸秆炭的处理随堆肥时间的进行,堆肥DOM的SUVA254nm、

SUVA280nm以及r(A,C)值等不断增加,表明堆肥腐熟度不断提高,而外源添加花生

壳炭的处理在堆肥 21d,其对应值均达到最大值,表明其堆肥腐熟度可能达到峰值,继

续堆肥其腐熟度减小.

3.3 外源添加花生壳和小麦秸秆炭的处理组堆肥DOM的E2/E3、r(A,C)值等指标

总体上均大于对照组,表明外源添加生物质炭有利于提高堆肥腐熟度,且外源添加花

生壳炭的处理堆肥DOM的A4/A1值最大,说明其对堆肥腐熟度的提高效果更好.

【相关文献】

[1] 陈同斌,郑国砥,高 定,等.城市污泥堆肥处理及其产业化发展中的几个关键问题 [J]. 中国给水排水,

2009,25(9):104-108.

[2] Chaney R L, Ryan J A, Oconnor G A. Organic contaminants in municipal biosolids: risk

assessment, quantitative pathways analysis, and current research priorities [J]. Sci. Total

Environ., 1996,185:187-216.

[3] Huang G F, Wu Q T, Wong J W C, et al. Transformation of organic matter during co-

composting of pig manure with sawdust [J]. Bioresourse Technology, 2006,97:1834-1842.

[4] Nasr F. Treatment and reuse of sewage sludge [J]. The Environmentalist, 1997,17:109-

113.

[5] 郑国砥,高 定,陈同斌,等.通过分层堆肥提高城市污泥堆肥处理效果的研究 [J]. 中国给水排水,

2009,25(11):114-116,120.

[6] 张 军,雷 梅,高 定,等.堆肥调理剂研究进展 [J]. 生态环境, 2007,16:239-247.

[7] Bruno O D, Carlos A S, Fabio S H, et al. Use of biochar as bulking agent for the

composting of poultry manure: Effect on organic matter degradation and humification [J].

Bioresource Technology, 2010,101:1293-1246.

[8] Shao Z H, He P J, Zhang D Q, et al. Characterization of water-extractable organic

matter during the biostabilization of municipal solid waste [J]. Journal of Hazardous

Materials, 2009,164(2/3):1191-1197.

[9] 张雪英,张宇峰.污泥堆肥前后水溶性有机物的性质变化研究[J]. 农业环境科学学报,

2008,27(4):1667-1671.

[10] Fu P, Wu F, Liu C, et al. Spectroscopic characterization and molecular weight

distribution of dissolved organic matter in sediment porewaters from Lake Erhai,

Southwest, China [J]. Biogeochemistry, 2006,81:179-189.

[11] Wang L, Lv D, Yan B, et al. Fluorescence characteristics of dissolved organic matter

during composting at low carbon/nitrogen ratios [J]. Waste Management and Research,

2013,31(2):203-211.

[12] 占新华,周立祥,黄焕忠.城市污泥堆肥中水溶性有机物的理化特性变化 [J]. 中国环境科学,

2003,23(4):390-394.

[13] Bolan N S, Kunhikrishnan A, Choppala G K, et al. Stabilization of carbon in composts

and biochars in relation to carbon sequestration and soil fertility [J]. Sci. Total Environ.,

2012,424:264-270.

[14] 秦 莉,沈玉君,李国学,等.不同 C/N比对堆肥腐熟度和含氮气体排放变化的影响 [J]. 农业环境科

学学报, 2009,28(12): 2668-2673.

[15] 赵 越,何小松,席北斗,等.鸡粪堆肥有机质转化的荧光定量化表征 [J]. 光谱学与光谱分析,

2010,30:1555-1560.

[16] Spaccini R, Piccolo A. Spectroscopic characterization of compost at different maturity

stages [J]. Clean Soil Air Water, 2008,36:152-157. [17] Chen W, Westerhoff P, Leenheer J A,

et al. Fluorescence excitation-emission matrix regional integration to quantify spectra for

dissolved organic matter [J]. Environ. Sci. Technol., 2003,37:5701-5710.

[18] Smidt E, Meissl K. The applicability of fourier transforms infrared(FT-IR) spectroscopy

in waste management [J]. Waste Management, 2007,27(2):268-276.

[19] Nierop K G, Jansen B, Verstraten J M. Dissolved organic matter, aluminum and iron

interactions: Precipitation induced by metal/carbon ratio, pH and competition [J]. Sci.

Total Environ., 2002,300:201-211.

[20] Mcknight D M, Boyer E W, Westerhoff P K, et al. Spectrofluorometric characterization

of dissolved organic matter for indication of precursor organic material and aromaticity [J].

Limnology and Oceanography, 2001,46(1):38-48.

[21] Wickland K P, Neff J C, Aiken G R. Dissolved organic carbon in Alaskan boreal forest:

Sources, chemical characteristics, and biodegradability [J]. Ecosystems, 2007,10:1323-1340.

[22] Huguet A, Vacher L, Relexans S, et al. Properties of fluorescent dissolved organic

matter in the Gironde Estuary [J]. Organic Geochemistry, 2009,40:706-719.

[23] Birdwell J E, Engel A S. Characterization of dissolved organic matter in cave and

spring waters using UV-Vis absorbance and fluorescence spectroscopy [J]. Organic

Geochemistry, 2010,41:270-280.

[24] Chen H, Zheng B, Song Y, et al. Correlation between molecular absorption spectral

slope ratios and fluorescence humification indices in characterizing CDOM [J]. Aquatic

Science, 2011,73:103-112.

[25] 吴丰昌.天然有机质及其与污染物的相互作用 [M]. 北京:科学出版社, 2010.

[26] Chin Y P, Aiken G R, O‘Loughlin E. Molecular weight, polydispersity and

spectroscopic properties of aquatic humic substances [J]. Environ. Sci. Technol.,

1994,28:1853-1858.

[27] Weishaar J L, Aiken G R, Berganmaschi B A, et al. Evaluation of specific ultraviolet

absorbance as an indicator of the chemical composition and reactivity of dissolved

organic carbon [J]. Environ. Sci. Technol., 2003,37:4702-4708.

[28] Peuravuori J, Pihlaja K. Molecular size distribution and spectroscopic properties of

aquatic humic substances [J]. Analytica Chimica Acta, 1997,337(2):133-149.

[29] Dorado J, Gonzlez-Vila F J, Zancada M C. Pryolytic descriptors responsive to changes

in humic acid characteristics after long-term sustainable management of dryland farming

systems in Central Spain [J]. Journal of Analytical and Applied Pyrolysis, 2003,28:89-97.

[30] Ohno T, Cronan C S. Comparative effects of ionic- and nonionic-resin purification

treatments on the chemistry of dissolved organic matter [J]. International Journal of

Environmental Analytical Chemistry, 1997,66(2):119-136.

[31] Ohno T, First R. Assessment of the Folin and Ciocalteu's method for determining soil

phenolic carbon [J]. Journal of Environmental Quality, 1998,27(4):776-782.

[32] Merritt K A, Erich M S. Influence of organic matter decomposition on soluble carbon

and its copper-binding capacity [J]. Journal of Environmental Quality, 2003,32(6):2122-

2131.

[33] Bakera A, Spencer R G M. Characterization of dissolved organic matter from source to

sea using fluorescence and absorbance spectroscopy [J]. Sci. Total Environ., 2004, 333(1-

3):217-232.

[34] Zsolnay A, Baigar E, Jimenez M, et al. Differentiating with fluorescence spectroscopy

the sources of dissolved organic matter in soils subjected to drying [J]. Chemosphere,

1999,38(1):45-50.

[35] Ohno T, Bro R. Dissolved organic matter characterization using multiway spectral

decomposition of fluorescence landscapes [J]. Soil Science Society of America Journal,

2006,70(6):2028-2037.

[36] Kalbitz K, Schmerwitz J, Schwesig D, et al. Biodegradation of soil-derived dissolved

organic matter as related to its properties [J]. Geoderma, 2003,113:273-291.

[37] McKnight D M, Boyer E W, Westerhoff P K, et al. Spectrofluorometric characterization

of dissolved organic matter for identification of precursor material and aromaticity [J].

Limnology and Oceanography, 2001,46:38-48.

[38] Nam S N, Amy G. Differentiation of wastewater effluent organic matter (EfOM) from

natural organic matter (NOM) using multiple analytical techniques [J]. Water Science and

Technology, 2008,57:1009-1015.

[39] Yu G H, Wu M J, Luo Y H, et al. Fluorescence excitationemission spectroscopy with

regional integration analysis for assessment of compost maturity [J]. Waste Management,

2011,31: 1729-1736.

[40] Kumke M U, Löhmannsröben H G, Roch T. Fluorescence spectroscopy of polynuclear

aromatic compounds in environmental monitoring [J]. J. Fluorescence, 1995,5(2):139-152.

[41] Milori D M B P, Martin-Neto L, Bayer C, et al. Humification degree of soil humic acids

determined by fluorescence spectroscopy [J]. Soil Science, 2002,167,11:739-749.

2024年4月23日发(作者:丹乐心)

含生物质炭城市污泥堆肥中溶解性有机质的光谱特征

闫金龙;江韬;赵秀兰;魏世强;王定勇;李璐璐;郭念;孙文彬

【摘 要】以外源添加生物质炭的城市污泥堆肥过程中溶解性有机质(DOM)为研究

对象,讨论了其紫外-可见和荧光光谱特征变化.结果表明:与对照组相比,外源添加生

物质炭的处理其堆肥DOM的芳香性和腐殖化程度更高,有利于提高堆肥的腐熟度,

且外源添加花生壳炭的处理较添加小麦秸秆炭的处理更有利于堆肥腐熟度的提高.

外源添加花生壳炭的处理在堆肥21d后,其堆肥腐熟度可能达到峰值,而外源添加小

麦秸秆炭的处理其堆肥腐熟度则随着堆肥时间的进行而增加.对照组和处理组堆肥

DOM的FI>0.7,BIX>0.8,表明其来源为自生源,可能与微生物对有机物的降解有关.

因此,通过对城市污泥堆肥过程中DOM的光谱特征分析,能较好地评估城市污泥堆

肥腐熟度的情况.

【期刊名称】《中国环境科学》

【年(卷),期】2014(034)002

【总页数】7页(P459-465)

【关键词】生物质炭;堆肥;溶解性有机质(DOM);紫外光谱;荧光光谱

【作 者】闫金龙;江韬;赵秀兰;魏世强;王定勇;李璐璐;郭念;孙文彬

【作者单位】西南大学资源环境学院,重庆400716;西南大学资源环境学院,重庆

400716;重庆市农业资源与环境研究重点实验室,重庆400716;西南大学资源环境

学院,重庆400716;重庆市农业资源与环境研究重点实验室,重庆400716;西南大学

资源环境学院,重庆400716;重庆市农业资源与环境研究重点实验室,重庆400716;

西南大学资源环境学院,重庆400716;重庆市农业资源与环境研究重点实验室,重庆

400716;西南大学资源环境学院,重庆400716;西南大学资源环境学院,重庆

400716;西南大学资源环境学院,重庆400716

【正文语种】中 文

【中图分类】X705

随着我国城市经济的高速发展,城市污水处理带来的城市污泥产量急剧增加[1].城市

污泥是潜在的有机肥原料,同时污泥中还含有病原微生物、重金属等污染物,极易造

成二次污染,因此,对污泥的处置一直是研究的热点[2-3].其中,堆肥是污泥处置及实

现无害化、资源化利用的重要方法之一[4-5].近年来,为提高堆肥效率,常采用外源添

加生物质炭的方式改善堆体条件(例如C/N比,含水率,孔隙度,堆肥养分等),提升堆

体有机质稳定性和腐殖化程度[6-7].

堆肥中有机质转化是评估堆肥腐熟程度和环境安全性的重要基础.堆肥过程中溶解

性有机质(DOM)的变化被认为是能灵敏反映堆肥腐熟状况的重要指标,且较堆肥的

固相组分更具代表性[8-9].

目前,针对DOM定性研究,应用较多的是紫外-可见光谱和同步荧光技术,因其灵敏

度高和分析便捷,被广泛应用于自然有机质(NOM)研究中,尤其是水体DOM归趋

[10].相比之下,针对堆肥DOM 性质的研究较少[11-12].目前,已有报道表明添加外

源生物质炭有利于堆肥固炭,而高C/N比下堆肥腐熟度也相应提高[13-14],而在该

过程中对DOM 的探讨还相对不足,且以前研究的结论也并不一致[15-16],尤其是

对不同调理剂处理方式下堆肥 DOM 的性质光谱表征缺少关注[17-18].基于此,本

研究采用紫外-可见光谱及三维荧光光谱对添加不同生物质炭的城市污泥堆肥过程

中DOM 的光谱特征进行表征,并通过特征参数的计算,进一步了解不同处理堆肥在

堆肥过程中的差异,为进一步提高堆肥效率、正确评估堆肥腐熟程度和环境安全性

提供一定的理论依据.

1.1 不同堆肥处理及样品采集

以污水处理厂污泥和小麦秸秆作为堆肥基质,以生物质炭(完全炭化)为调理剂.污泥

取自重庆市某污水处理厂的脱水车间,小麦秸秆取自学校农场,破碎至 2~3cm,生物

质炭购于商丘市三利新能源有限公司.将污泥与小麦秸秆按一定量混合,使混合堆肥

物料的C/N比达到18,然后向堆体添加生物质炭.以未加生物质炭的污泥为对照(以

下简称“CK”).生物质炭的类型为小麦秸秆炭(以下简称“+麦”)、花生壳炭(以下

简称“+花”),添加量为堆肥基质的 6%(按堆体的重量记).将各堆体分别放入容积为

26.4L (80cm× 55cm×60cm)的泡沫箱中,箱的底部打一个小孔,接入通气泵,采用强

制通风与人工翻堆相结合的方式进行高温好氧堆肥(图 1).堆肥过程中每周翻堆1次,

堆体的水分保持在60%~70%,根据堆肥期间温度变化情况,分别于堆肥初始(第

0d)、堆肥21d、42d后取样进行分析.不同堆肥处理的初始物料基本性质见表1.

1.2 堆肥DOM提取

采用去离子水提取堆肥 DOM[19].将所采集的堆肥样品自然风干后,磨细,过2mm

筛.按土:水=1:6(W/V),采用去离子水与堆肥固体混合后, 25℃下200r/min振荡

16h,然后400r/min下离心20min,上清液过 0.45μm滤膜后,滤液即为堆肥DOM

样品.DOM测定TOC和TON(德国,Yena Multi N/C 3000)后,浓度以DOC(mg/L)

计.所有样品在进行光谱测定前,均稀释相同倍数(0.6mLDOM定容到100mL棕色

容量瓶).

1.3 光谱测定

紫外-可见光谱在 Hitachi U-1800紫外-可见分光光度计上进行测定.扫描波长为

200~800nm,程序自动绘制扫描曲线.根据光谱数据,计算特征紫外吸光系数

SUVA254nm[SUVA254nm= A254/(b·c)]、

SUVA280nm[SUVA280nm=A280/(b·c)],单位:L/(mg C·m); A254为波长

254nm时吸光度;b为石英吸收池厚度(0.01m);c为DOM浓度(mg/L).同时计算

E2/E3(250nm及365nm时吸光度比值)和E4/E6(465nm和665nm时吸光度比

值).

采用Hitachi F-7000荧光光谱仪对DOM样品进行三维荧光扫描.激光光源 150W

氙弧灯, PMT电压为700V,信噪比>110;狭缝宽度Ex=5nm, Em=2nm;响应时间为

自动.扫描范围:Ex=200~450nm,Em=200~600nm,扫描速度1200nm/min.测定

前,保持样品温度恒定,以去离子水做荧光测定空白.Origin 8.0绘制三维荧光光谱图.

同时提取相关荧光特征,并计算荧光指数(FI)、自生源指数(BIX)及腐殖化指数(HIX),

具体计算方法为:FI为Ex=370nm时,Em波长分别为450和500nm时的荧光强度

比值[20-21];BIX为Ex=310nm时,Em波长分别为 380和 430nm 时的荧光强度

比值[22-23]; HIX=ΣI434→480/(ΣI300→344+ΣI434→480),式中 ΣIx→y表示在

Ex=255nm时,连续发射波长范围荧光强度的积分面积[21,23-24].

2.1 不同处理堆肥过程中DOM的紫外-可见光谱特征变化

2.1.1 不同处理堆肥过程中DOM的紫外-可见光谱 紫外-可见吸收光谱是由于分子

中的价电子,特别是有机质中不饱和键和芳香性结构中π-π*电子跃迁而产生的.实际

上,堆肥作为有机质的一种特殊形式,其结构和功能基团较为复杂,不同生色团较多,并

不具有明显的易被鉴定的光谱特征.从不同处理堆肥过程中 DOM的紫外可见光谱

图(图2)可知,在200~800nm全波长范围内,并未发现有任何特征吸收峰,在可见光

长波段,几乎无任何吸收.这和很多自然有机质(NOM)的紫外-可见光谱特征是一致

的[25].但随着堆肥过程的进行,处理组污泥堆肥其 DOM的紫外可见光谱发生了明

显的红移现象,且随着堆肥时间的进行其红移现象越来越明显.造成这种现象的原因

可能是在堆肥过程中,处理组堆肥的腐熟度较对照组有大幅度的提高,DOM 共轭结

构和芳香结构增多,腐殖化程度增强.其次,表明添加小麦秸秆和花生壳外源生物有机

质炭后,有利于提高城市污泥堆肥的腐熟度.

2.1.2 堆肥过程中 DOM 的紫外特征参数 SUVA254nm是研究天然有机质的重要

特征参数,其大小可间接表征有机质的芳香性程度, SUVA254nm越高,有机质芳香

度越高[26-27].从表 2可知,对照组和添加小麦秸秆炭的处理组随堆肥时间进行,其

SUVA254nm值不断增加,表明随着堆肥的进行,污泥堆肥的腐熟度不断增加,芳香性

结构不断增多.而添加花生壳炭的处理组在 42d后其值小于堆肥21d后的

SUVA254nm值,可能是由于添加花生壳炭的污泥在堆肥 21d达到了腐熟的峰值,

之后有机质在微生物的作用下开始分解.另外,各堆肥过程中对照组的 SUVA254nm

值总体上小于处理组的值,进一步说明了添加小麦秸秆和花生壳的外源有机质炭有

利于提高城市污泥堆肥的腐熟度.此外,DOM在280nm摩尔吸光系数

(SUVA280nm)与相对分子质量存在显著正相关

[26,28].由表2可知,处理组和对照组的SUVA280和 SUVA254的变化趋势基本一

致,反映了不同处理堆肥过程中 DOM 芳香性增强可能与大分子物质的增加有关.

Dorado等[29]研究表明E2/E3与E4/E6和有机质的腐殖化程度、芳香性及相对

分子质量成负相关,其值越高,腐殖化程度越低.本试验中,堆肥过程中对照组DOM

的E2/E3与SUVA254nm呈负相关 (r=0.89),而E4/E6与SUVA254nm未呈现负

相关关系,添加小麦秸秆炭的堆肥DOM的SUVA254nm与 E2/E3,E4/E6均未呈现

负相关关系,但添加花生壳炭的堆肥DOM的SUVA254nm与E2/E3,E4/E6均呈现

负相关关系(r=0.93和0.95),结果表明E2/E3可能较适合用于堆肥过程中腐殖化程

度的表征.

2.2 不同处理堆肥过程中DOM荧光光谱特征变化

2.2.1 不同处理堆肥过程中 DOM 三维荧光光谱 目前,针对三维荧光光谱荧光峰的

辨析大多还集中在淡水及海洋DOM的研究,事实上,土壤及堆肥中DOM的荧光特

征和自然水体的DOM并没有本质区别,因此,可采用水体DOM的荧光峰鉴别范围

对堆肥 DOM 进行划分[30-32],具体为紫外区类腐殖酸峰 A(230~250nm/426~

466nm);可见光区类腐殖酸峰C(300~305nm/408~456nm);类蛋白荧光峰

B(270~280/326~348nm)及类蛋白质荧光峰D(225~230/320~360nm).

从不同处理堆肥过程 DOM 的荧光光谱图(图3)中可得,除添加小麦秸秆炭的处理组

在堆肥开始时仅有D峰外,对照组和添加花生壳炭的处理组在堆肥开始都有B峰和

D峰,且堆肥开始均未发现C峰,除对照组外,两个处理组也未发现A峰.但随着堆肥

的进行,对照组和处理组的B峰均消失,C峰强度随堆肥时间增加而增强,D峰强度则

表现出总体上随堆肥时间增强而减小,而A峰强度的变化则为:对照组随堆肥时间增

加先减小后增加,而处理组则刚好相反,先增加后减小.结果表明,堆肥开始时,堆肥腐

殖化程度不高,主要以类蛋白峰为主,但随着堆肥过程的进行,堆肥腐殖化程度逐渐提

高,类腐殖酸峰逐渐增强,而类蛋白峰逐渐减弱.且处理组和对照组相比,A峰强度的变

化相反,说明添加外源有机质有利于提高堆肥的腐殖化程度.

2.2.2 不同处理堆肥过程中 DOM 荧光特征参数 荧光A峰和荧光C峰强度的比值

r(A,C)是一个与有机质结构和腐殖化程度相关的指标.由表3可知,堆肥21d后,对照

组和添加小麦秸秆炭的处理组均随着堆肥过程的进行,r(A,C)值逐渐减小,而添加花

生壳炭的处理组r(A,C)值逐渐增大,说明在堆肥 21d左右添加花生壳炭的堆肥腐熟

度可能达到了峰值,且处理组在堆肥过程中 r(A,C)值基本上小于对照组.而有研究报

道,大分子量、相对稳定的芳香性结构是C峰的主要贡献者,而A峰的主要来源是低

分子量但荧光效率高的物质[33],本研究荧光图谱也发现随着堆肥时间的进行,C峰

强度逐渐增大,r(A,C)值减小.说明随着堆肥时间的进行,堆肥腐殖化程度增加,添加外

源有机质炭有利于堆肥的腐殖化提高,进一步形成稳定的腐殖质.

腐殖化指数(HIX)是评价DOM腐殖化程度的重要指标[34-35].由于有机质芳香性

越强,荧光发射出现红移(向长波方向转移),因此HIX值范围在0~1之间,HIX越高

意味着DOM中碳氢化合物组分越少,腐殖化程度越高.间接水提取或直接抽滤的土

壤间隙水 DOM 的 HIX在0.6~0.9[21,36];而自然水体中 DOM 的 HIX一般

为:<0.6(海水)和>0.7(淡水).不同处理堆肥过程中DOM的HIX和海水DOM的值

更为接近,这可能和两种来源的 DOM都有着明显的自生源特征有关.研究认为BIX

在0.6~0.7之间时,DOM主要为陆源输入,外源输入特征明显[22],而本研究中 BIX

均>0.8,进一步证明了堆肥过程中DOM主要来源为自生源[23].

进一步,FI是评价 DOM 来源的依据:FI= 1.7~2.0时来自于微生物分解,芳香度不

高;FI<1.4来源于陆地输入,具有较高芳香度[21,37].对照组和处理组FI均大于

1.7(表3),和以自生源(微生物活动产生)为主的DOM荧光指数相近,表明微生物和

堆肥中DOM的形成有密切相关,同时也证明微生物对有机物的降解也是堆肥形成

的主要原因[38-39].

由于有机质的腐殖化程度提高,具有荧光特性的分子结构增多,发射光谱出现红移

[34,40].在EX=240nm时,发射光谱中后1/4波段荧光强度积分面积与前 1/4波段

荧光强度积分面积比值(A4/A1)可以用来作为有机质腐殖化的表征指标,比值增加意

味有机质芳香结果增加,腐殖化程度提高[34,41].本研究也得到类似结论,随着堆肥过

程的进行,处理组和对照组的 A4/A1值均增加,且前者大于后者,其中添加花生壳炭

的处理组的A4/A1值最大,结果说明随着堆肥过程的进行,堆肥DOM 的芳香程度

不断提高,添加外源有机质炭后,能提高堆肥的芳香度,且添加花生壳炭的处理对堆肥

腐殖化程度的提高效果更好.

3.1 对照组和外源添加生物质炭的处理组城市污泥堆肥中DOM的HIX与海水

DOM值接近,FI均>1.7,同时BIX均>0.8,表明其来源以自生源为主,可能与微生物

对有机物的降解有关.

3.2 外源添加小麦秸秆炭的处理随堆肥时间的进行,堆肥DOM的SUVA254nm、

SUVA280nm以及r(A,C)值等不断增加,表明堆肥腐熟度不断提高,而外源添加花生

壳炭的处理在堆肥 21d,其对应值均达到最大值,表明其堆肥腐熟度可能达到峰值,继

续堆肥其腐熟度减小.

3.3 外源添加花生壳和小麦秸秆炭的处理组堆肥DOM的E2/E3、r(A,C)值等指标

总体上均大于对照组,表明外源添加生物质炭有利于提高堆肥腐熟度,且外源添加花

生壳炭的处理堆肥DOM的A4/A1值最大,说明其对堆肥腐熟度的提高效果更好.

【相关文献】

[1] 陈同斌,郑国砥,高 定,等.城市污泥堆肥处理及其产业化发展中的几个关键问题 [J]. 中国给水排水,

2009,25(9):104-108.

[2] Chaney R L, Ryan J A, Oconnor G A. Organic contaminants in municipal biosolids: risk

assessment, quantitative pathways analysis, and current research priorities [J]. Sci. Total

Environ., 1996,185:187-216.

[3] Huang G F, Wu Q T, Wong J W C, et al. Transformation of organic matter during co-

composting of pig manure with sawdust [J]. Bioresourse Technology, 2006,97:1834-1842.

[4] Nasr F. Treatment and reuse of sewage sludge [J]. The Environmentalist, 1997,17:109-

113.

[5] 郑国砥,高 定,陈同斌,等.通过分层堆肥提高城市污泥堆肥处理效果的研究 [J]. 中国给水排水,

2009,25(11):114-116,120.

[6] 张 军,雷 梅,高 定,等.堆肥调理剂研究进展 [J]. 生态环境, 2007,16:239-247.

[7] Bruno O D, Carlos A S, Fabio S H, et al. Use of biochar as bulking agent for the

composting of poultry manure: Effect on organic matter degradation and humification [J].

Bioresource Technology, 2010,101:1293-1246.

[8] Shao Z H, He P J, Zhang D Q, et al. Characterization of water-extractable organic

matter during the biostabilization of municipal solid waste [J]. Journal of Hazardous

Materials, 2009,164(2/3):1191-1197.

[9] 张雪英,张宇峰.污泥堆肥前后水溶性有机物的性质变化研究[J]. 农业环境科学学报,

2008,27(4):1667-1671.

[10] Fu P, Wu F, Liu C, et al. Spectroscopic characterization and molecular weight

distribution of dissolved organic matter in sediment porewaters from Lake Erhai,

Southwest, China [J]. Biogeochemistry, 2006,81:179-189.

[11] Wang L, Lv D, Yan B, et al. Fluorescence characteristics of dissolved organic matter

during composting at low carbon/nitrogen ratios [J]. Waste Management and Research,

2013,31(2):203-211.

[12] 占新华,周立祥,黄焕忠.城市污泥堆肥中水溶性有机物的理化特性变化 [J]. 中国环境科学,

2003,23(4):390-394.

[13] Bolan N S, Kunhikrishnan A, Choppala G K, et al. Stabilization of carbon in composts

and biochars in relation to carbon sequestration and soil fertility [J]. Sci. Total Environ.,

2012,424:264-270.

[14] 秦 莉,沈玉君,李国学,等.不同 C/N比对堆肥腐熟度和含氮气体排放变化的影响 [J]. 农业环境科

学学报, 2009,28(12): 2668-2673.

[15] 赵 越,何小松,席北斗,等.鸡粪堆肥有机质转化的荧光定量化表征 [J]. 光谱学与光谱分析,

2010,30:1555-1560.

[16] Spaccini R, Piccolo A. Spectroscopic characterization of compost at different maturity

stages [J]. Clean Soil Air Water, 2008,36:152-157. [17] Chen W, Westerhoff P, Leenheer J A,

et al. Fluorescence excitation-emission matrix regional integration to quantify spectra for

dissolved organic matter [J]. Environ. Sci. Technol., 2003,37:5701-5710.

[18] Smidt E, Meissl K. The applicability of fourier transforms infrared(FT-IR) spectroscopy

in waste management [J]. Waste Management, 2007,27(2):268-276.

[19] Nierop K G, Jansen B, Verstraten J M. Dissolved organic matter, aluminum and iron

interactions: Precipitation induced by metal/carbon ratio, pH and competition [J]. Sci.

Total Environ., 2002,300:201-211.

[20] Mcknight D M, Boyer E W, Westerhoff P K, et al. Spectrofluorometric characterization

of dissolved organic matter for indication of precursor organic material and aromaticity [J].

Limnology and Oceanography, 2001,46(1):38-48.

[21] Wickland K P, Neff J C, Aiken G R. Dissolved organic carbon in Alaskan boreal forest:

Sources, chemical characteristics, and biodegradability [J]. Ecosystems, 2007,10:1323-1340.

[22] Huguet A, Vacher L, Relexans S, et al. Properties of fluorescent dissolved organic

matter in the Gironde Estuary [J]. Organic Geochemistry, 2009,40:706-719.

[23] Birdwell J E, Engel A S. Characterization of dissolved organic matter in cave and

spring waters using UV-Vis absorbance and fluorescence spectroscopy [J]. Organic

Geochemistry, 2010,41:270-280.

[24] Chen H, Zheng B, Song Y, et al. Correlation between molecular absorption spectral

slope ratios and fluorescence humification indices in characterizing CDOM [J]. Aquatic

Science, 2011,73:103-112.

[25] 吴丰昌.天然有机质及其与污染物的相互作用 [M]. 北京:科学出版社, 2010.

[26] Chin Y P, Aiken G R, O‘Loughlin E. Molecular weight, polydispersity and

spectroscopic properties of aquatic humic substances [J]. Environ. Sci. Technol.,

1994,28:1853-1858.

[27] Weishaar J L, Aiken G R, Berganmaschi B A, et al. Evaluation of specific ultraviolet

absorbance as an indicator of the chemical composition and reactivity of dissolved

organic carbon [J]. Environ. Sci. Technol., 2003,37:4702-4708.

[28] Peuravuori J, Pihlaja K. Molecular size distribution and spectroscopic properties of

aquatic humic substances [J]. Analytica Chimica Acta, 1997,337(2):133-149.

[29] Dorado J, Gonzlez-Vila F J, Zancada M C. Pryolytic descriptors responsive to changes

in humic acid characteristics after long-term sustainable management of dryland farming

systems in Central Spain [J]. Journal of Analytical and Applied Pyrolysis, 2003,28:89-97.

[30] Ohno T, Cronan C S. Comparative effects of ionic- and nonionic-resin purification

treatments on the chemistry of dissolved organic matter [J]. International Journal of

Environmental Analytical Chemistry, 1997,66(2):119-136.

[31] Ohno T, First R. Assessment of the Folin and Ciocalteu's method for determining soil

phenolic carbon [J]. Journal of Environmental Quality, 1998,27(4):776-782.

[32] Merritt K A, Erich M S. Influence of organic matter decomposition on soluble carbon

and its copper-binding capacity [J]. Journal of Environmental Quality, 2003,32(6):2122-

2131.

[33] Bakera A, Spencer R G M. Characterization of dissolved organic matter from source to

sea using fluorescence and absorbance spectroscopy [J]. Sci. Total Environ., 2004, 333(1-

3):217-232.

[34] Zsolnay A, Baigar E, Jimenez M, et al. Differentiating with fluorescence spectroscopy

the sources of dissolved organic matter in soils subjected to drying [J]. Chemosphere,

1999,38(1):45-50.

[35] Ohno T, Bro R. Dissolved organic matter characterization using multiway spectral

decomposition of fluorescence landscapes [J]. Soil Science Society of America Journal,

2006,70(6):2028-2037.

[36] Kalbitz K, Schmerwitz J, Schwesig D, et al. Biodegradation of soil-derived dissolved

organic matter as related to its properties [J]. Geoderma, 2003,113:273-291.

[37] McKnight D M, Boyer E W, Westerhoff P K, et al. Spectrofluorometric characterization

of dissolved organic matter for identification of precursor material and aromaticity [J].

Limnology and Oceanography, 2001,46:38-48.

[38] Nam S N, Amy G. Differentiation of wastewater effluent organic matter (EfOM) from

natural organic matter (NOM) using multiple analytical techniques [J]. Water Science and

Technology, 2008,57:1009-1015.

[39] Yu G H, Wu M J, Luo Y H, et al. Fluorescence excitationemission spectroscopy with

regional integration analysis for assessment of compost maturity [J]. Waste Management,

2011,31: 1729-1736.

[40] Kumke M U, Löhmannsröben H G, Roch T. Fluorescence spectroscopy of polynuclear

aromatic compounds in environmental monitoring [J]. J. Fluorescence, 1995,5(2):139-152.

[41] Milori D M B P, Martin-Neto L, Bayer C, et al. Humification degree of soil humic acids

determined by fluorescence spectroscopy [J]. Soil Science, 2002,167,11:739-749.

发布评论

评论列表 (0)

  1. 暂无评论