2024年6月6日发(作者：勾清妍)
CEUS观察兔肝VX2肿瘤坏死演变
杨艳秋;阮骊韬;商静;党莹;宋艳;孙健
【摘 要】目的 应用CEUS技术观察兔肝VX2肿瘤坏死过程,探讨VX2肿瘤生长坏
死规律及其对实验产生的影响.方法 应用超声引导下经皮穿刺种植法成功建立24
只兔VX2肝肿瘤模型,并通过CEUS技术分别在肿瘤种植后10、14、21、28天动
态观察肝肿瘤演变过程,测量肿瘤体积及坏死体积,计算瘤内坏死率.结果 在肿瘤种
植后10、14、21、28天兔肝VX2肿瘤体积、坏死灶体积和坏死率比较,差异均有
统计学意义(P均＜0.05);肿瘤种植后10、14、21、28天的CEUS表现能反映出
肿瘤的病理学特征.实验依据CEUS和病理特点将肿瘤生长过程细分为5个时
期,0～10天为肿瘤实质前期;11～14天为肿瘤实质后期;15～21天为肿瘤坏死初
期;22～28天为加速坏死期;28天后为肿瘤囊变期.结论 CEUS可准确判断肝肿瘤实
质及坏死范围;VX2肿瘤的生长演变及肿瘤坏死具有规律性,可根据不同实验要求选
择适宜的研究时间段.
【期刊名称】《中国介入影像与治疗学》
【年(卷),期】2015(012)004
【总页数】4页(P238-241)
【关键词】超声检查;肝肿瘤;兔;坏死
【作 者】杨艳秋;阮骊韬;商静;党莹;宋艳;孙健
【作者单位】西安交通大学第一附属医院超声科,陕西西安710061;西安市第一医
院超声科,陕西西安710002;西安交通大学第一附属医院超声科,陕西西安710061;
西安交通大学第一附属医院超声科,陕西西安710061;西安交通大学第一附属医院
超声科,陕西西安710061;西安交通大学第一附属医院超声科,陕西西安710061;西
安交通大学第一附属医院超声科,陕西西安710061
【正文语种】中 文
【中图分类】R-332;R445.1
兔肝VX2瘤模型的病理表现及进展过程与人原发性肝癌类似，其特点为富血供、
快速生长、较早发生坏死转移等。兔肝VX2瘤作为公认的经典动物实验模型已被
广泛用于肝肿瘤影像诊断及治疗的临床前研究［1－2］。目前应用该肿瘤模型在
诊断与治疗等方面的研究已经相当深入［3－4］，而关于研究VX2肿瘤坏死规律
的研究鲜见报道。本实验通过CEUS技术动态观察兔肝VX2肿瘤的生长演变过程，
探讨肿瘤液化坏死规律及其对实验研究产生的影响。
1 材料与方法
1.1 研究对象 健康新西兰白兔28只，体质量（2.5±0.5）kg，雌雄不限，由西安
交大医学院动物中心提供。VX2荷瘤兔购于同济大学医学院。实验动物均按照3R
原则给予人道关怀。
1.2 建模 手术剥离荷瘤兔肝脏VX2实体瘤，选取生长旺盛的肿瘤组织，剪成大小
约1mm的瘤块备用。在超声引导下将瘤块直接注射接种于28只新西兰白兔肝左
叶，术后正常饲养，预防感染，每天肌注青霉素20万U，共3天，24只成功建
模。
1.3 CEUS检查 采用GE Logiq E9超声诊断仪，ML6-15高频探头，探头频率
10MHz。将荷瘤兔麻醉固定，常规扫查兔肝；采用SonoVue（意大利Bracco公
司）干粉造影剂，5ml生理盐水稀释混匀，经兔耳缘静脉团注1ml微泡混悬液，
尾随快速注射5ml生理盐水冲管，团注同时启动内置计时器，实时、动态观察选
定的肝肿瘤显影情况，所有影像资料存盘。
1.4 观察指标 在VX2瘤种植后10、14、21、28天随机选取6只应用CEUS观察
肝肿瘤生长演变情况。造影选定同一部位肿瘤进行连续观察，测量该肿瘤中心切面
最大径a、最小径b，瘤内坏死灶最大径c、最小径d，计算瘤体体积（V1）、坏
死区体积（V2），计算公式［5］：V1＝（a×b）2／2，V2＝（c×d）2／2，再
计算瘤内坏死率（X）：X＝V2／V1×100%。
1.5 病理学检查 每次CEUS后立即处死荷瘤兔，取肝脏大体标本，观察肿瘤坏死
及转移情况，切取CEUS部位的肿瘤，以10%甲醛溶液固定，石蜡包埋，切片后
进行常规HE染色，镜下观察肿瘤细胞的分化程度、坏死情况及瘤内血管丰富程度。
1.6 统计学分析 采用SPSS 18.0统计学软件。计量资料用¯x±s表示，采用LSD检
验，P＜0.05为差异有统计学意义。
2 结果
本研究建模成功24只，成功率85.71%（24／28）。
2.1 不同时间VX2观察指标比较 在VX2肿瘤种植后10、14、21、28天，肿瘤
体积、坏死灶体积和瘤内坏死率差异均有统计学意义（P＜0.05，表1）。
2.2 CEUS及病理学特点 CEUS示肿瘤呈类圆形稍强回声结节，边界清晰，均呈
“快进快出”表现；大体标本示VX2肿瘤呈类圆形结节状，灰白色鱼肉样组织，
质地较硬，与正常肝组织分界清楚；中心坏死灶亦大致呈类圆形，白色乳糜样性状。
种植后10天CEUS动脉期主要表现为整体显著增强（图1A、1B），病理示VX2
瘤实质细胞呈团块状，与周围组织分界清晰，其内部及周边均有丰富血管（图
1C）。种植后14、21天CEUS示瘤内坏死灶明显，动脉期呈不均匀增强或环状
增强，坏死灶无增强（图2A、2B、3A、3B）；病理示肿瘤中心坏死较多，周边
肿瘤组织血管较丰富（图2C、3C）。种植后28天CEUS示瘤体呈大囊腔，仅表
现为瘤周边环状增强，且动脉期增强程度明显降低（图4A、4B）；病理示肿瘤呈
大片状坏死，瘤内以纤维包裹坏死为主，周边少见甚至无肿瘤组织，血管不丰富
（图4C）。
2.3 VX2肿瘤的生长演变 根据CEUS和病理学特征，将肿瘤生长过程再细分为5
个时期，0～10天为肿瘤实质前期；11～14天为肿瘤实质后期；15～21天为肿
瘤坏死初期；22～28天为加速坏死期；28天后为肿瘤囊变期。
3 讨论
VX2瘤株是一种由shope病毒诱发的兔皮肤鳞癌，肿瘤植入兔肝脏后，短期内即
能长出巨块型实体瘤［6］。兔肝VX2肿瘤模型的可靠稳定性已被大量文献证实
［7－8］。前期预实验本课题组对21只荷瘤兔进行观察，发现肿瘤植入后7天时
肿瘤直径约3～5mm，肿瘤实质呈丰富的毛细血管团，瘤内均未发现坏死组织
［9］，故本实验从10天开始观察肿瘤坏死过程。
CEUS可动态观察到兔肝VX2瘤在动脉早期呈快速弥漫性增强，门静脉期和延迟
期显示为等回声或略低回声，表现为典型的“快进快出”型增强模式。根据肿瘤微
血管分布情况可判断出肿瘤实质与坏死范围，本研究病理学检查与CEUS表现一
致，在客观上证实了CEUS的准确性，认为应用CEUS能及时了解肿瘤生长变化
及瘤内坏死情况。
表1 种植后10、14、21、28天兔肝VX2肿瘤生长情况（¯x±s，n＝6）时间
（天） a（mm） b（mm） V1（mm3） c（mm） d（mm） V2（mm3）
X（×100%）10 5.81±0.67 4.61±0.42 75.42±20.61 1.43±0.43 1.11±0.31
3.59±2.34 0.05±0.02 14 10.55±1.40 8.38±0.81 426.12±128.61 5.72±1.34
4.00±0.86 74.72±33.19 0.14±0.03 21 16.07±1.37 12.10±0.98
1290.51±283.98 12.09±1.11 7.86±1.03 504.31±144.43 0.36±0.05 28
22.40±2.35 15.96±2.47 3959.51±1920.13 18.05±1.98 12.62±2.49
2380.77±1394.51 0.50±0.04
图1 肿瘤种植后10天CEUS和病理图 A、示动脉期肿瘤呈整体增强；C.
病理示VX2肿瘤实质细胞呈团块状分布，与正常组织分界清晰，核大深染，异型
性明显（HE，×400） 图2 肿瘤种植后14天的CEUS和病理图 A、示动
脉期不均匀增强，肿瘤内可见少量坏死灶（M）；2肿瘤中心坏死，周围肿
瘤实质内可见条索状纤维组织（HE，×100）图3 肿瘤种植后21天CEUS和病理
图 A、示动脉期肿瘤呈环状增强；2肿瘤坏死灶内可见大量凋亡细胞
核固缩、碎裂或崩解（HE，×400） 图4 肿瘤种植28天的CEUS和病理图 A、
示肿瘤周边环状增强，动脉期增强程度明显降低；2肿瘤大片状坏死，
周边见纤维组织包裹，肿瘤组织少见（HE，×100）
以往研究将兔肝VX2肿瘤生长过程大致分为3个阶段，种植后2～3周为实质期、
4～5周为坏死期、6～7周为囊变期［10］。本研究通过CEUS对肿瘤坏死过程
的观察发现，种植后10、14、21、28天VX2肿瘤体积、坏死灶体积和瘤内坏死
率有差异，根据以上各时间节点的CEUS和病理学特征表现认为，可以将肿瘤生
长过程再细分为5个时期。0～10天为肿瘤实质前期，此期为肿瘤血管形成期，
肿瘤细胞释放大量血管生成因子，肿瘤体积较小，肿瘤新生血管生长旺盛，毛细血
管网包绕肿瘤；11～14天为肿瘤实质后期，是肿瘤血管稳定期，由于肿瘤血供丰
富，肿瘤体积迅速增大，但个别肿瘤内因血供不均衡可出现少量坏死；15～21天
为肿瘤坏死初期，瘤体增长快于血管增生，肿瘤中央因缺血逐渐形成坏死灶；
22～28天肿瘤进入加速坏死期，肿瘤血管增生减慢，肿瘤进一步增大，瘤内变性
坏死灶增多，且逐渐出现远处转移；28天后肿瘤进入囊变期，此时期肿瘤血供匮
乏，瘤体大片液化坏死，形成囊腔，仅存瘤周少量环状血管，并出现腹腔积液、广
泛转移、恶病质等衰竭症状。可见，VX2肿瘤在0～10天体积较小，尚处于肿瘤
血管生成期，可作为早期肝癌模型；11～21天生长最旺盛，肿瘤血管丰富，可作
为稳定的肝癌研究模型，适合进行肿瘤传代、模型制作及肿瘤治疗学等实验研究；
22～28天肿瘤体积较大，瘤内坏死组织较多，适宜作为进展期肝癌模型；28天
后瘤体大部分坏死囊变，动物模型亦呈晚期肝癌状态，适于作为晚期肝癌治疗和观
察模型。
［参考文献］
［1］ Kuszyk BS，Boitnott JK，Choti MA，et tumor recurrence
following hepatic cryoablation：Radiologic-histopathologic correlation in a
rabbit ogy，2000，217（2）：477-486.
［2］ Seong NJ，Yoon CJ，Kang SG，et s of arsenic trioxide on
radiofrequency ablation of VX2liver tumor：Intraarterial versus intravenous
J Radiol，2012，13（2）：195-201.
［3］ Sun H，Xu L，Fan T，et ed hyperthermia after selective
embolization with ferromagnetic nanoparticles in a VX2rabbit liver tumor
J Nanomedicine，2013，8：3795-3804.
［4］ Gao L，Song JR，Zhang JW，et quine promotes the
anticancer effect of TACE in a rabbit VX2liver tumor J Biol Sci，
2013，9（4）：322-330.
［5］ Yoon CJ，Chung JW，Park JH，et atheter arterial chemo-
embolization with paclitaxe-lipiodol solution in rabbit VX2 liver
ogy，2003，229（1）：126-131.
［6］ 曹炜，彭建明，张洪新，等.种植性兔VX2肝肿瘤血供的研究.实用放射学杂
志，2008，24（11）：1543-1546.
［7］ 曹成，刘利平，张炎晶，等.超声造影评价兔肝VX2移植瘤血流灌注及其与
血管生成的相关性.中国医学影像技术，2013，29（2）：177-180.
［8］ Rhee TK，Young JY，Larson AC，et of transcatheterart-erial
embolization on levels of hypoxia-inducible factor-lalpha in rabbit VX2liver
tumors.J Vasc Interv Radiol，2007，18（5）：639-6451.
［9］ Wu H，Exner AA，Shi H，et c evolutionary changes in
blood flow measured by MDCT in a hepatic VX2tumor implant over an
extended 28-day growth period：Time-density curve Radiol，
2009，16（12）：1483-1492.
［10］ 周鹏，周平，何炜，等.超声造影定量评估实质期兔肝VX2瘤血供程度的
演变过程.中国医学影像技术，2010，26（4）：616-619.
2024年6月6日发(作者：勾清妍)
CEUS观察兔肝VX2肿瘤坏死演变
杨艳秋;阮骊韬;商静;党莹;宋艳;孙健
【摘 要】目的 应用CEUS技术观察兔肝VX2肿瘤坏死过程,探讨VX2肿瘤生长坏
死规律及其对实验产生的影响.方法 应用超声引导下经皮穿刺种植法成功建立24
只兔VX2肝肿瘤模型,并通过CEUS技术分别在肿瘤种植后10、14、21、28天动
态观察肝肿瘤演变过程,测量肿瘤体积及坏死体积,计算瘤内坏死率.结果 在肿瘤种
植后10、14、21、28天兔肝VX2肿瘤体积、坏死灶体积和坏死率比较,差异均有
统计学意义(P均＜0.05);肿瘤种植后10、14、21、28天的CEUS表现能反映出
肿瘤的病理学特征.实验依据CEUS和病理特点将肿瘤生长过程细分为5个时
期,0～10天为肿瘤实质前期;11～14天为肿瘤实质后期;15～21天为肿瘤坏死初
期;22～28天为加速坏死期;28天后为肿瘤囊变期.结论 CEUS可准确判断肝肿瘤实
质及坏死范围;VX2肿瘤的生长演变及肿瘤坏死具有规律性,可根据不同实验要求选
择适宜的研究时间段.
【期刊名称】《中国介入影像与治疗学》
【年(卷),期】2015(012)004
【总页数】4页(P238-241)
【关键词】超声检查;肝肿瘤;兔;坏死
【作 者】杨艳秋;阮骊韬;商静;党莹;宋艳;孙健
【作者单位】西安交通大学第一附属医院超声科,陕西西安710061;西安市第一医
院超声科,陕西西安710002;西安交通大学第一附属医院超声科,陕西西安710061;
西安交通大学第一附属医院超声科,陕西西安710061;西安交通大学第一附属医院
超声科,陕西西安710061;西安交通大学第一附属医院超声科,陕西西安710061;西
安交通大学第一附属医院超声科,陕西西安710061
【正文语种】中 文
【中图分类】R-332;R445.1
兔肝VX2瘤模型的病理表现及进展过程与人原发性肝癌类似，其特点为富血供、
快速生长、较早发生坏死转移等。兔肝VX2瘤作为公认的经典动物实验模型已被
广泛用于肝肿瘤影像诊断及治疗的临床前研究［1－2］。目前应用该肿瘤模型在
诊断与治疗等方面的研究已经相当深入［3－4］，而关于研究VX2肿瘤坏死规律
的研究鲜见报道。本实验通过CEUS技术动态观察兔肝VX2肿瘤的生长演变过程，
探讨肿瘤液化坏死规律及其对实验研究产生的影响。
1 材料与方法
1.1 研究对象 健康新西兰白兔28只，体质量（2.5±0.5）kg，雌雄不限，由西安
交大医学院动物中心提供。VX2荷瘤兔购于同济大学医学院。实验动物均按照3R
原则给予人道关怀。
1.2 建模 手术剥离荷瘤兔肝脏VX2实体瘤，选取生长旺盛的肿瘤组织，剪成大小
约1mm的瘤块备用。在超声引导下将瘤块直接注射接种于28只新西兰白兔肝左
叶，术后正常饲养，预防感染，每天肌注青霉素20万U，共3天，24只成功建
模。
1.3 CEUS检查 采用GE Logiq E9超声诊断仪，ML6-15高频探头，探头频率
10MHz。将荷瘤兔麻醉固定，常规扫查兔肝；采用SonoVue（意大利Bracco公
司）干粉造影剂，5ml生理盐水稀释混匀，经兔耳缘静脉团注1ml微泡混悬液，
尾随快速注射5ml生理盐水冲管，团注同时启动内置计时器，实时、动态观察选
定的肝肿瘤显影情况，所有影像资料存盘。
1.4 观察指标 在VX2瘤种植后10、14、21、28天随机选取6只应用CEUS观察
肝肿瘤生长演变情况。造影选定同一部位肿瘤进行连续观察，测量该肿瘤中心切面
最大径a、最小径b，瘤内坏死灶最大径c、最小径d，计算瘤体体积（V1）、坏
死区体积（V2），计算公式［5］：V1＝（a×b）2／2，V2＝（c×d）2／2，再
计算瘤内坏死率（X）：X＝V2／V1×100%。
1.5 病理学检查 每次CEUS后立即处死荷瘤兔，取肝脏大体标本，观察肿瘤坏死
及转移情况，切取CEUS部位的肿瘤，以10%甲醛溶液固定，石蜡包埋，切片后
进行常规HE染色，镜下观察肿瘤细胞的分化程度、坏死情况及瘤内血管丰富程度。
1.6 统计学分析 采用SPSS 18.0统计学软件。计量资料用¯x±s表示，采用LSD检
验，P＜0.05为差异有统计学意义。
2 结果
本研究建模成功24只，成功率85.71%（24／28）。
2.1 不同时间VX2观察指标比较 在VX2肿瘤种植后10、14、21、28天，肿瘤
体积、坏死灶体积和瘤内坏死率差异均有统计学意义（P＜0.05，表1）。
2.2 CEUS及病理学特点 CEUS示肿瘤呈类圆形稍强回声结节，边界清晰，均呈
“快进快出”表现；大体标本示VX2肿瘤呈类圆形结节状，灰白色鱼肉样组织，
质地较硬，与正常肝组织分界清楚；中心坏死灶亦大致呈类圆形，白色乳糜样性状。
种植后10天CEUS动脉期主要表现为整体显著增强（图1A、1B），病理示VX2
瘤实质细胞呈团块状，与周围组织分界清晰，其内部及周边均有丰富血管（图
1C）。种植后14、21天CEUS示瘤内坏死灶明显，动脉期呈不均匀增强或环状
增强，坏死灶无增强（图2A、2B、3A、3B）；病理示肿瘤中心坏死较多，周边
肿瘤组织血管较丰富（图2C、3C）。种植后28天CEUS示瘤体呈大囊腔，仅表
现为瘤周边环状增强，且动脉期增强程度明显降低（图4A、4B）；病理示肿瘤呈
大片状坏死，瘤内以纤维包裹坏死为主，周边少见甚至无肿瘤组织，血管不丰富
（图4C）。
2.3 VX2肿瘤的生长演变 根据CEUS和病理学特征，将肿瘤生长过程再细分为5
个时期，0～10天为肿瘤实质前期；11～14天为肿瘤实质后期；15～21天为肿
瘤坏死初期；22～28天为加速坏死期；28天后为肿瘤囊变期。
3 讨论
VX2瘤株是一种由shope病毒诱发的兔皮肤鳞癌，肿瘤植入兔肝脏后，短期内即
能长出巨块型实体瘤［6］。兔肝VX2肿瘤模型的可靠稳定性已被大量文献证实
［7－8］。前期预实验本课题组对21只荷瘤兔进行观察，发现肿瘤植入后7天时
肿瘤直径约3～5mm，肿瘤实质呈丰富的毛细血管团，瘤内均未发现坏死组织
［9］，故本实验从10天开始观察肿瘤坏死过程。
CEUS可动态观察到兔肝VX2瘤在动脉早期呈快速弥漫性增强，门静脉期和延迟
期显示为等回声或略低回声，表现为典型的“快进快出”型增强模式。根据肿瘤微
血管分布情况可判断出肿瘤实质与坏死范围，本研究病理学检查与CEUS表现一
致，在客观上证实了CEUS的准确性，认为应用CEUS能及时了解肿瘤生长变化
及瘤内坏死情况。
表1 种植后10、14、21、28天兔肝VX2肿瘤生长情况（¯x±s，n＝6）时间
（天） a（mm） b（mm） V1（mm3） c（mm） d（mm） V2（mm3）
X（×100%）10 5.81±0.67 4.61±0.42 75.42±20.61 1.43±0.43 1.11±0.31
3.59±2.34 0.05±0.02 14 10.55±1.40 8.38±0.81 426.12±128.61 5.72±1.34
4.00±0.86 74.72±33.19 0.14±0.03 21 16.07±1.37 12.10±0.98
1290.51±283.98 12.09±1.11 7.86±1.03 504.31±144.43 0.36±0.05 28
22.40±2.35 15.96±2.47 3959.51±1920.13 18.05±1.98 12.62±2.49
2380.77±1394.51 0.50±0.04
图1 肿瘤种植后10天CEUS和病理图 A、示动脉期肿瘤呈整体增强；C.
病理示VX2肿瘤实质细胞呈团块状分布，与正常组织分界清晰，核大深染，异型
性明显（HE，×400） 图2 肿瘤种植后14天的CEUS和病理图 A、示动
脉期不均匀增强，肿瘤内可见少量坏死灶（M）；2肿瘤中心坏死，周围肿
瘤实质内可见条索状纤维组织（HE，×100）图3 肿瘤种植后21天CEUS和病理
图 A、示动脉期肿瘤呈环状增强；2肿瘤坏死灶内可见大量凋亡细胞
核固缩、碎裂或崩解（HE，×400） 图4 肿瘤种植28天的CEUS和病理图 A、
示肿瘤周边环状增强，动脉期增强程度明显降低；2肿瘤大片状坏死，
周边见纤维组织包裹，肿瘤组织少见（HE，×100）
以往研究将兔肝VX2肿瘤生长过程大致分为3个阶段，种植后2～3周为实质期、
4～5周为坏死期、6～7周为囊变期［10］。本研究通过CEUS对肿瘤坏死过程
的观察发现，种植后10、14、21、28天VX2肿瘤体积、坏死灶体积和瘤内坏死
率有差异，根据以上各时间节点的CEUS和病理学特征表现认为，可以将肿瘤生
长过程再细分为5个时期。0～10天为肿瘤实质前期，此期为肿瘤血管形成期，
肿瘤细胞释放大量血管生成因子，肿瘤体积较小，肿瘤新生血管生长旺盛，毛细血
管网包绕肿瘤；11～14天为肿瘤实质后期，是肿瘤血管稳定期，由于肿瘤血供丰
富，肿瘤体积迅速增大，但个别肿瘤内因血供不均衡可出现少量坏死；15～21天
为肿瘤坏死初期，瘤体增长快于血管增生，肿瘤中央因缺血逐渐形成坏死灶；
22～28天肿瘤进入加速坏死期，肿瘤血管增生减慢，肿瘤进一步增大，瘤内变性
坏死灶增多，且逐渐出现远处转移；28天后肿瘤进入囊变期，此时期肿瘤血供匮
乏，瘤体大片液化坏死，形成囊腔，仅存瘤周少量环状血管，并出现腹腔积液、广
泛转移、恶病质等衰竭症状。可见，VX2肿瘤在0～10天体积较小，尚处于肿瘤
血管生成期，可作为早期肝癌模型；11～21天生长最旺盛，肿瘤血管丰富，可作
为稳定的肝癌研究模型，适合进行肿瘤传代、模型制作及肿瘤治疗学等实验研究；
22～28天肿瘤体积较大，瘤内坏死组织较多，适宜作为进展期肝癌模型；28天
后瘤体大部分坏死囊变，动物模型亦呈晚期肝癌状态，适于作为晚期肝癌治疗和观
察模型。
［参考文献］
［1］ Kuszyk BS，Boitnott JK，Choti MA，et tumor recurrence
following hepatic cryoablation：Radiologic-histopathologic correlation in a
rabbit ogy，2000，217（2）：477-486.
［2］ Seong NJ，Yoon CJ，Kang SG，et s of arsenic trioxide on
radiofrequency ablation of VX2liver tumor：Intraarterial versus intravenous
J Radiol，2012，13（2）：195-201.
［3］ Sun H，Xu L，Fan T，et ed hyperthermia after selective
embolization with ferromagnetic nanoparticles in a VX2rabbit liver tumor
J Nanomedicine，2013，8：3795-3804.
［4］ Gao L，Song JR，Zhang JW，et quine promotes the
anticancer effect of TACE in a rabbit VX2liver tumor J Biol Sci，
2013，9（4）：322-330.
［5］ Yoon CJ，Chung JW，Park JH，et atheter arterial chemo-
embolization with paclitaxe-lipiodol solution in rabbit VX2 liver
ogy，2003，229（1）：126-131.
［6］ 曹炜，彭建明，张洪新，等.种植性兔VX2肝肿瘤血供的研究.实用放射学杂
志，2008，24（11）：1543-1546.
［7］ 曹成，刘利平，张炎晶，等.超声造影评价兔肝VX2移植瘤血流灌注及其与
血管生成的相关性.中国医学影像技术，2013，29（2）：177-180.
［8］ Rhee TK，Young JY，Larson AC，et of transcatheterart-erial
embolization on levels of hypoxia-inducible factor-lalpha in rabbit VX2liver
tumors.J Vasc Interv Radiol，2007，18（5）：639-6451.
［9］ Wu H，Exner AA，Shi H，et c evolutionary changes in
blood flow measured by MDCT in a hepatic VX2tumor implant over an
extended 28-day growth period：Time-density curve Radiol，
2009，16（12）：1483-1492.
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