2024年5月11日发(作者:东门高)
银杏叶提取物对三氯乙烯诱导人角质形成细胞线粒体损伤的保
护作用
朱启星;叶良平;马泰;沈彤
【摘 要】背景与目的:研究三氯乙烯(trichloroethylene,TCE)对人角质形成细胞
(kemtinocytes,KC)线粒体的损伤以及银杏叶提取物(ginkgo biloba extract,EGb)
对其损伤的保护作用,为防治三氯乙烯药疹样皮炎提供基础资料和理论依据.材料与
方法:分离制备体外培养Kc,接种于培养板/皿中,分成TCE染毒组、EGb保护组,溶
剂对照组和空白对照组,TCE染毒组以不同浓度TCE(0、0.125、0.5和2.0
mmoL/L)及不同时间(0、4、8、12和24 h)处理体外培养的Kc,EGb保护组则以
不同浓度EGb(0、10、50、100和150 mg/L)预处理2 h后再用2.0 mmoL/L
TCE进行染毒,溶剂对照组和空白对照不加入TCE和EGb,以使用含1%丙酮(体积
分数)的培养基为溶剂对照组,以新鲜培养基作为空白对照组.采用MTT法观察细胞
活力和线粒体酶抑制率变化,检测ATP酶活力,间接反映线粒体能量变化情况,通过
流式细胞术结合罗丹明123(Rh123)和碘化丙啶(PI)双染法检测线粒体膜电位的改
变情况.结果:随着TCE浓度的升高和作用时间的延长,细胞活力、ATP酶活性和线
粒体膜电位下降,线粒体酶抑制率升高,当TCE浓度超过0.5 mmol/L,作用时间大于
8 h时,与空白对照组相比差异均有统计学意义(P<0.05);EGb保护组在EGb浓度为
10 mg/L时即可起到保护作用(与2/0 mmnol/L TCE染毒组比较,P<0/01),当EGb
浓度增加到150 mg/L时线粒体功能状态接近正常对照组水平(与溶剂对照组比
较,P>0.05).结论:TCE可引起人KC线粒体损伤,EGb对这种损害具有保护作用.
【期刊名称】《癌变·畸变·突变》
【年(卷),期】2008(020)005
【总页数】5页(P337-341)
【关键词】三氯乙烯;角质形成细胞;线粒体;银杏叶提取物
【作 者】朱启星;叶良平;马泰;沈彤
【作者单位】安徽医科大学公共卫生学院劳动卫生与环境卫生系,安徽,合
肥,230032;安徽医科大学皮肤病研究所,安徽,合肥,230023;安徽医科大学公共卫生
学院劳动卫生与环境卫生系,安徽,合肥,230032;安徽医科大学公共卫生学院劳动卫
生与环境卫生系,安徽,合肥,230032;安徽医科大学皮肤病研究所,安徽,合肥,230023
【正文语种】中 文
【中图分类】R285.5;R758.22
在生产和使用三氯乙烯(trichloroethylene,TCE)过程中,少数接触者会发生职
业性三氯乙烯药疹样皮炎(occupational dermatitis medicamentosa-like of
trichloroethylene,ODMLT),表现为迅速出现的表皮剥脱、松解和皮肤细胞的
损伤、死亡,而多数皮肤接触TCE的工人,则有不同程度的皮肤接触刺激性损伤,
其发病机制都亟待探讨[1-2]。有研究表明,三氯乙烯通过线粒体途径诱导人角
质形成细胞(keratinocyte,KC)损伤、凋亡,TCE对KC的细胞毒性作用可能参
与上述职业性疾患的发生过程[3]。线粒体不仅是细胞能量的代谢场所,而且可
以介导细胞凋亡,启动细胞死亡[4],许多外源性化合物可通过线粒体途径发挥
细胞毒性作用。而银杏叶提取物(ginkgo biloba extract,EGb)具有天然的抗氧
化活性,且可以有效地保护线粒体功能,对各种不同原因导致的组织和细胞损伤起
到防护作用[5-6]。本研究通过观察TCE直接作用以及EGb预处理再行TCE染
毒后,皮肤角质形成细胞线粒体功能的变化,以期深入揭示TCE的皮肤毒性机制
并为开发研制皮肤防护用品提供基础资料。
1.1 试剂和材料
三氯乙烯(99.5%AR,美国Alfa Aesar公司),胰蛋白酶、DMEM、Defined
Keratinocyte-SFM培养基均购自GIBCO公司,胎牛血清(FBS)为杭州四季青生
物工程材料有限公司产品,银杏叶提取物由江苏扬子江药业提供,四甲基噻唑蓝
(MTT)、罗丹明123(Rh123)染料为Sigma公司产品,DNA-PrepTMStain
(PI+RNase,美国Beckman Coulter公司),超微量ATP酶测定试剂盒(南京
建成生物工程有限公司),uQuabtTM酶标仪(美国Bio-Tek公司),EPICS流式
细胞仪(美国Beckman Coulter公司)。
1.2 角质形成细胞的分离和培养
临床泌尿外科包皮环切术后的正常皮肤用D-Hanks液漂洗3次并去除皮下组织后,
剪成1 cm×0.5 cm大小的皮片,经0.25%胰蛋白酶在4℃消化10 h分离出表皮,
再以0.25%胰蛋白酶37℃消化10 min,吹打、过滤、离心后分离KC,用含
10%FBS的DMEM培养基于37℃、5%CO2条件下进行培养,贴壁后换成
Defined Keratinocyte-SFM培养基继续培养,待细胞长至80%汇合后用于实验
研究。
1.3 细胞染毒组和保护组的设置
根据要求调整细胞密度接种至培养板/皿中,以不同浓度的TCE(0、0.125、0.5
和2.0 mmol/L)染毒不同时间(0、4、8、12和24 h),使用含1%丙酮(体积分
数)的培养基作为溶剂对照,新鲜培养基作为空白对照,每个组分别设3个重复孔。
EGb保护实验中,EGb的保护浓度取0、10、50、100和150 mg/L,于染毒前
2 h分别加入不同浓度的EGb预处理,弃去含EGb培养基后,用2.0 mmol/L
TCE染毒,每个组设3个复孔。
1.4 MTT实验
调整细胞密度至5×104/ml,将细胞悬液以每孔100 μl接种至96孔培养板,染
毒组和保护组处理至不同的时间后,每孔加入50μl的0.5 mg/ml MTT工作液孵
育5 h。加入50μl的10%SDS、0.1 mol/L HCI溶液终止反应,置培养箱内放置
过夜后,酶标仪上570 nm下测定吸光度(A570)。按下式分别计算细胞存活率和
线粒体酶活力抑制率。
细胞存活率=处理组A570/对照组A570×100%
线粒体酶活力抑制率=(对照组A570-处理组A570)/对照组A570×100%
1.5 ATP酶活力检测
收集细胞,调整密度至107/ml(PBS稀释),取0.3 ml低温环境下进行超声破碎
(超声时间:10 s,间隔时间:5 s,全程时间:4 min),根据ATP酶试剂盒说明
书测定ATP酶活力,结果以U/mg蛋白表示(每小时每毫克细胞匀浆蛋白中ATP
酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为1个ATP酶活力单位)。
1.6 Rh123/PI双染法检测膜电位变化
细胞以5×105/ml的密度接种至6孔培养板,染毒组和保护组均处理8 h。收集
细胞,PBS洗涤1遍;加入1 ml Rh123工作液(2μg/ml),37℃孵育30 min;
PBS洗涤细胞2遍,加入500μl DNA-PrepTMStain(即PI染料),室温避光染色
30 min后进行流式细胞仪检测,激发光波长为488 nm。
1.7 统计学方法
所有数据采用SPSS11.5统计软件包进行数据处理,结果以±s表示,采用单因素
方差分析。并将各指标的测量值与染毒剂量进行曲线拟合,分析剂量-效应关系。
2.1 EGb对细胞活力的保护作用
TCE可引起KC的细胞活力呈时间和剂量依赖性降低(表1。0.5和2.0 mmol/L
TCE在作用4 h后细胞活力即降低,与溶剂对照组相比,差异具有统计学意义(P
<0.01)。
EGb的保护作用如表2所示。150 mg/L EGb单独作用细胞活力与空白对照组比
较,无明显改变(P>0.05);而2.0 mmol/L TCE单独处理后细胞活力下降至
39.56% ±1.95%,与溶剂对照组比较差异有统计学意义(P<0.01)。经EGb预处
理的各组,细胞活力逐渐回升,与2.0 mmol/L TCE单独处理组比较差异均有统
计学意义(P均<0.01),EGb浓度增加为100和150 mg/L时细胞活力与溶剂对
照组比较差异无统计学意义(P>0.05)。
2.2 EGb对线粒体酶活力的保护作用
根据MTT检测的结果可以计算线粒体酶活性抑制率,此指标可以间接反映线粒体
功能。如表3所示,随着TCE剂量的增加以及作用时间的延长,线粒体酶活力抑
制率增加,线粒体功能下降,呈一定的时间、剂量依赖关系。KC用含EGb的培养
基预孵育后暴露于2.0 mmol/L TCE时,从表2中可以看到EGb对TCE引起的线
粒体酶抑制具有明显的保护作用,2.0 mmol/L TCE使得细胞的酶活性抑制率升高
到60.44±1.95(与溶剂对照组比较,P<0.01),保护组则随着EGb剂量的加大酶
活性抑制率逐渐下降(与2.0 mmol/L TCE染毒组比较,P<0.01),当EGb浓度
为100 mg/L和150 mg/L时线粒体酶抑制率与溶剂对照组比较差异无统计学意
义(P>0.05)
2.3 EGb对ATP酶抑制的保护作用
如表4所示,随着TCE浓度的升高和染毒时间的延长,ATP酶活力下降越明显。
EGb的保护作用如表2所示,使用EGb预处理后,随着EGb剂量的加大ATP酶
活力逐渐上升,当EGb浓度超过50 mg/L时EGb可以保护ATP酶活性的降低
(与2.0 mmol/L TCE染毒组比较,P<0.01),超过100 mg/L EGb保护组ATP
酶活力与溶剂对照组比较差异无统计学意义(P>0.05)。
2.4 EGb对线粒体膜电位的保护作用
流式细胞仪根据Rh123和PI的荧光强度高低将细胞分为4群:Rh123/PI细胞为
细胞膜完整,线粒体膜电位(用△Ψm表示)处于“稳态”的细胞;Rh123-/PI-细
胞为细胞膜完整,△Ψm降低的细胞,即将发生调亡;Rh123-/PI+细胞为细胞膜
破坏,△Ψm降低的坏死细胞;Rh123+/PI+细胞为△Ψm正常,细胞膜遭到破坏
的细胞,为机械损伤所致。分别检测Rh123的荧光强度以及各群细胞所占的百分
比(Rh123+/PI+群细胞计数),结果如表5所示。
不同浓度的TCE处理细胞8 h后均能显著降低KC线粒体膜电位水平(Rh123荧
光强度与对照组相比,P<0.01),呈剂量-效应关系;从各群细胞所占的比例来分
析,染毒剂量增加可引起Rh123+/PI-群细胞(正常细胞)减少,同时伴随Rh123-
/PI-群(凋亡早期细胞)和Rh123-/PI+群细胞(坏死细胞)增多(表5),且均有统
计学意义(与对照组相比,P<0.01)。从表5中可看出,不同浓度EGb预处理可
以保护TCE(2.0 mmol/L)引起的膜电位下降,各保护组Rh123荧光强度均高于
2.0 mmol/L TCE染毒组(P<0.01),Rh123-/PI-细胞群的比例均较TCE染毒阳
性组减少(与2.0 mmol/L TCE组比较,P<0.01)。且当EGb浓度提高到100和
150 mg/L时,Rh123荧光强度、Rh123-/PI-细胞群的比例与正常对照组比较差
异无统计学意义(P>0.05)。
2.5 剂量-效应关系的曲线拟合
对各指标结果进行单因素方差分析和组间两两比较,差异具有统计学意义。各指标
实测值与染毒剂量进行曲线拟合后,得到的曲线方程均为直线模式,即符合Y=
a+bX模式(Y为各指标的实测值,X为染毒剂量),拟合优度系数R2均大于0.8,
P<0.05,说明各指标在实验选择的剂量范围内,存在剂量-效应和时间-效应关系。
细胞线粒体是许多外来化学物最早累及,也是最有效的作用靶点[7],可引起
ROS产生增多、细胞钙稳态失调、线粒体膜蛋白释放等一系列事件[8],这些事
件或互为因果或相互协同,往往发生放大效应作用于细胞,因此检测线粒体的形态
功能变化情况可以反映细胞的早期功能状态和损伤状况,为机制研究提供第一手的
资料。银杏叶提取物制剂具有公认的抗氧化作用,研究发现它还能够保护线粒体功
能形态以及抗凋亡的作用,包括改善线粒体呼吸功能[9]、阻止衰老导致的线粒
体形态学改变、保护△Ψm的下降[10]、抑制线粒体cyt C的释放和caspase的
激活从而阻滞细胞凋亡的发生[11-12],因此EGb被认为是线粒体和细胞损伤
有效的保护剂。
MTT法可检测细胞活力,同时该法也可间接反映线粒体酶的活性[13]。本研究
结果显示TCE染毒后线粒体酶活性抑制程度逐渐加重,细胞活力则逐渐下降,
EGb预处理后则起到明显的保护作用。细胞的能量代谢其实质是在线粒体中进行
的一系列由线粒体酶系所催化的氧化还原反应,产生的能量储存于ATP的高能磷
酸键中,线粒体酶活性的抑制将影响ATP的产生。由于ATP是ATP酶的唯一底
物,测定ATP酶的活性可从侧面反映出细胞内ATP的水平。本实验中,TCE处理
后细胞总ATP酶活性降低,表明细胞ATP生成减少,EGb保护组则能有效提高
ATP酶的活性。结合MTT的实验结果,提示TCE可直接作用于KC线粒体代谢酶
和呼吸功能,干扰细胞的能量代谢,引起ATP生成减少,而ATP量的多少又决定
细胞受损时是选择凋亡还是坏死的方式消亡[14],因此这一作用在细胞损伤研
究中值得关注。
流式细胞术结合Rh123/PI双染法可反映△Ψm的变化情况以及细胞的存活状态
[15]。△Ψm是反映线粒体功能极为敏感指标,对细胞的存活和维持细胞的正常
功能至关重要[16]。在观察到经典的细胞凋亡特征之前,线粒体功能就已经发
生了改变,其中△Ψm的下降或崩溃被认为是不可逆的早期凋亡事件,抑制其下降
则可避免细胞进入凋亡,是细胞凋亡中有意义的限速步骤[17]。研究表明,
△Ψm的下降与由线粒体外膜、内膜蛋白构成的线粒体膜通透性转换孔
(mitochondrial permeability transition pores,MPTP)开放有关,MPTP一旦
持续性开放,大量物质涌入,破坏内膜两侧的电子梯度,△Ψm崩溃,呼吸链与氧
化磷酸化失偶联,影响细胞ATP产生、Ca2+稳态、活性氧的产量以及细胞色素C
的释放[8,18],这些事件的发生与发展也会介导细胞凋亡。因此考察△Ψm的
变化在研究细胞凋亡中的意义不言而喻。本次研究结果显示,TCE可显著降低
△Ψm,且呈现一定的时间剂量效应关系。从细胞各群分布来看,随着TCE染毒剂
量的增大和时间的延长,正常细胞比例不断减少,进入早期凋亡状态的细胞不断增
多,提示线粒体膜电位的下降参与了这一细胞毒性作用。在进行了EGb预处理以
后,△Ψm较TCE染毒组明显提高,且随着EGb剂量的增加保护作用更为明显,
表明EGb对△Ψm的保护是其保护TCE所致的KC损伤和凋亡的重要机制。
综上,线粒体损伤在TCE所致的KC细胞损伤和凋亡中起到了重要的作用,而
EGb可以有效地保护TCE所引起的KC线粒体的损伤,提示EGb可以作为开发防
治TCE药疹样皮炎防护用品的重要候选物。当然,EGb成分复杂,具体是何种物
质还是几种物质协同作用才起到保护作用还有待进一步探究,此外其保护作用的机
制也需要进一步研究。
【相关文献】
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2024年5月11日发(作者:东门高)
银杏叶提取物对三氯乙烯诱导人角质形成细胞线粒体损伤的保
护作用
朱启星;叶良平;马泰;沈彤
【摘 要】背景与目的:研究三氯乙烯(trichloroethylene,TCE)对人角质形成细胞
(kemtinocytes,KC)线粒体的损伤以及银杏叶提取物(ginkgo biloba extract,EGb)
对其损伤的保护作用,为防治三氯乙烯药疹样皮炎提供基础资料和理论依据.材料与
方法:分离制备体外培养Kc,接种于培养板/皿中,分成TCE染毒组、EGb保护组,溶
剂对照组和空白对照组,TCE染毒组以不同浓度TCE(0、0.125、0.5和2.0
mmoL/L)及不同时间(0、4、8、12和24 h)处理体外培养的Kc,EGb保护组则以
不同浓度EGb(0、10、50、100和150 mg/L)预处理2 h后再用2.0 mmoL/L
TCE进行染毒,溶剂对照组和空白对照不加入TCE和EGb,以使用含1%丙酮(体积
分数)的培养基为溶剂对照组,以新鲜培养基作为空白对照组.采用MTT法观察细胞
活力和线粒体酶抑制率变化,检测ATP酶活力,间接反映线粒体能量变化情况,通过
流式细胞术结合罗丹明123(Rh123)和碘化丙啶(PI)双染法检测线粒体膜电位的改
变情况.结果:随着TCE浓度的升高和作用时间的延长,细胞活力、ATP酶活性和线
粒体膜电位下降,线粒体酶抑制率升高,当TCE浓度超过0.5 mmol/L,作用时间大于
8 h时,与空白对照组相比差异均有统计学意义(P<0.05);EGb保护组在EGb浓度为
10 mg/L时即可起到保护作用(与2/0 mmnol/L TCE染毒组比较,P<0/01),当EGb
浓度增加到150 mg/L时线粒体功能状态接近正常对照组水平(与溶剂对照组比
较,P>0.05).结论:TCE可引起人KC线粒体损伤,EGb对这种损害具有保护作用.
【期刊名称】《癌变·畸变·突变》
【年(卷),期】2008(020)005
【总页数】5页(P337-341)
【关键词】三氯乙烯;角质形成细胞;线粒体;银杏叶提取物
【作 者】朱启星;叶良平;马泰;沈彤
【作者单位】安徽医科大学公共卫生学院劳动卫生与环境卫生系,安徽,合
肥,230032;安徽医科大学皮肤病研究所,安徽,合肥,230023;安徽医科大学公共卫生
学院劳动卫生与环境卫生系,安徽,合肥,230032;安徽医科大学公共卫生学院劳动卫
生与环境卫生系,安徽,合肥,230032;安徽医科大学皮肤病研究所,安徽,合肥,230023
【正文语种】中 文
【中图分类】R285.5;R758.22
在生产和使用三氯乙烯(trichloroethylene,TCE)过程中,少数接触者会发生职
业性三氯乙烯药疹样皮炎(occupational dermatitis medicamentosa-like of
trichloroethylene,ODMLT),表现为迅速出现的表皮剥脱、松解和皮肤细胞的
损伤、死亡,而多数皮肤接触TCE的工人,则有不同程度的皮肤接触刺激性损伤,
其发病机制都亟待探讨[1-2]。有研究表明,三氯乙烯通过线粒体途径诱导人角
质形成细胞(keratinocyte,KC)损伤、凋亡,TCE对KC的细胞毒性作用可能参
与上述职业性疾患的发生过程[3]。线粒体不仅是细胞能量的代谢场所,而且可
以介导细胞凋亡,启动细胞死亡[4],许多外源性化合物可通过线粒体途径发挥
细胞毒性作用。而银杏叶提取物(ginkgo biloba extract,EGb)具有天然的抗氧
化活性,且可以有效地保护线粒体功能,对各种不同原因导致的组织和细胞损伤起
到防护作用[5-6]。本研究通过观察TCE直接作用以及EGb预处理再行TCE染
毒后,皮肤角质形成细胞线粒体功能的变化,以期深入揭示TCE的皮肤毒性机制
并为开发研制皮肤防护用品提供基础资料。
1.1 试剂和材料
三氯乙烯(99.5%AR,美国Alfa Aesar公司),胰蛋白酶、DMEM、Defined
Keratinocyte-SFM培养基均购自GIBCO公司,胎牛血清(FBS)为杭州四季青生
物工程材料有限公司产品,银杏叶提取物由江苏扬子江药业提供,四甲基噻唑蓝
(MTT)、罗丹明123(Rh123)染料为Sigma公司产品,DNA-PrepTMStain
(PI+RNase,美国Beckman Coulter公司),超微量ATP酶测定试剂盒(南京
建成生物工程有限公司),uQuabtTM酶标仪(美国Bio-Tek公司),EPICS流式
细胞仪(美国Beckman Coulter公司)。
1.2 角质形成细胞的分离和培养
临床泌尿外科包皮环切术后的正常皮肤用D-Hanks液漂洗3次并去除皮下组织后,
剪成1 cm×0.5 cm大小的皮片,经0.25%胰蛋白酶在4℃消化10 h分离出表皮,
再以0.25%胰蛋白酶37℃消化10 min,吹打、过滤、离心后分离KC,用含
10%FBS的DMEM培养基于37℃、5%CO2条件下进行培养,贴壁后换成
Defined Keratinocyte-SFM培养基继续培养,待细胞长至80%汇合后用于实验
研究。
1.3 细胞染毒组和保护组的设置
根据要求调整细胞密度接种至培养板/皿中,以不同浓度的TCE(0、0.125、0.5
和2.0 mmol/L)染毒不同时间(0、4、8、12和24 h),使用含1%丙酮(体积分
数)的培养基作为溶剂对照,新鲜培养基作为空白对照,每个组分别设3个重复孔。
EGb保护实验中,EGb的保护浓度取0、10、50、100和150 mg/L,于染毒前
2 h分别加入不同浓度的EGb预处理,弃去含EGb培养基后,用2.0 mmol/L
TCE染毒,每个组设3个复孔。
1.4 MTT实验
调整细胞密度至5×104/ml,将细胞悬液以每孔100 μl接种至96孔培养板,染
毒组和保护组处理至不同的时间后,每孔加入50μl的0.5 mg/ml MTT工作液孵
育5 h。加入50μl的10%SDS、0.1 mol/L HCI溶液终止反应,置培养箱内放置
过夜后,酶标仪上570 nm下测定吸光度(A570)。按下式分别计算细胞存活率和
线粒体酶活力抑制率。
细胞存活率=处理组A570/对照组A570×100%
线粒体酶活力抑制率=(对照组A570-处理组A570)/对照组A570×100%
1.5 ATP酶活力检测
收集细胞,调整密度至107/ml(PBS稀释),取0.3 ml低温环境下进行超声破碎
(超声时间:10 s,间隔时间:5 s,全程时间:4 min),根据ATP酶试剂盒说明
书测定ATP酶活力,结果以U/mg蛋白表示(每小时每毫克细胞匀浆蛋白中ATP
酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为1个ATP酶活力单位)。
1.6 Rh123/PI双染法检测膜电位变化
细胞以5×105/ml的密度接种至6孔培养板,染毒组和保护组均处理8 h。收集
细胞,PBS洗涤1遍;加入1 ml Rh123工作液(2μg/ml),37℃孵育30 min;
PBS洗涤细胞2遍,加入500μl DNA-PrepTMStain(即PI染料),室温避光染色
30 min后进行流式细胞仪检测,激发光波长为488 nm。
1.7 统计学方法
所有数据采用SPSS11.5统计软件包进行数据处理,结果以±s表示,采用单因素
方差分析。并将各指标的测量值与染毒剂量进行曲线拟合,分析剂量-效应关系。
2.1 EGb对细胞活力的保护作用
TCE可引起KC的细胞活力呈时间和剂量依赖性降低(表1。0.5和2.0 mmol/L
TCE在作用4 h后细胞活力即降低,与溶剂对照组相比,差异具有统计学意义(P
<0.01)。
EGb的保护作用如表2所示。150 mg/L EGb单独作用细胞活力与空白对照组比
较,无明显改变(P>0.05);而2.0 mmol/L TCE单独处理后细胞活力下降至
39.56% ±1.95%,与溶剂对照组比较差异有统计学意义(P<0.01)。经EGb预处
理的各组,细胞活力逐渐回升,与2.0 mmol/L TCE单独处理组比较差异均有统
计学意义(P均<0.01),EGb浓度增加为100和150 mg/L时细胞活力与溶剂对
照组比较差异无统计学意义(P>0.05)。
2.2 EGb对线粒体酶活力的保护作用
根据MTT检测的结果可以计算线粒体酶活性抑制率,此指标可以间接反映线粒体
功能。如表3所示,随着TCE剂量的增加以及作用时间的延长,线粒体酶活力抑
制率增加,线粒体功能下降,呈一定的时间、剂量依赖关系。KC用含EGb的培养
基预孵育后暴露于2.0 mmol/L TCE时,从表2中可以看到EGb对TCE引起的线
粒体酶抑制具有明显的保护作用,2.0 mmol/L TCE使得细胞的酶活性抑制率升高
到60.44±1.95(与溶剂对照组比较,P<0.01),保护组则随着EGb剂量的加大酶
活性抑制率逐渐下降(与2.0 mmol/L TCE染毒组比较,P<0.01),当EGb浓度
为100 mg/L和150 mg/L时线粒体酶抑制率与溶剂对照组比较差异无统计学意
义(P>0.05)
2.3 EGb对ATP酶抑制的保护作用
如表4所示,随着TCE浓度的升高和染毒时间的延长,ATP酶活力下降越明显。
EGb的保护作用如表2所示,使用EGb预处理后,随着EGb剂量的加大ATP酶
活力逐渐上升,当EGb浓度超过50 mg/L时EGb可以保护ATP酶活性的降低
(与2.0 mmol/L TCE染毒组比较,P<0.01),超过100 mg/L EGb保护组ATP
酶活力与溶剂对照组比较差异无统计学意义(P>0.05)。
2.4 EGb对线粒体膜电位的保护作用
流式细胞仪根据Rh123和PI的荧光强度高低将细胞分为4群:Rh123/PI细胞为
细胞膜完整,线粒体膜电位(用△Ψm表示)处于“稳态”的细胞;Rh123-/PI-细
胞为细胞膜完整,△Ψm降低的细胞,即将发生调亡;Rh123-/PI+细胞为细胞膜
破坏,△Ψm降低的坏死细胞;Rh123+/PI+细胞为△Ψm正常,细胞膜遭到破坏
的细胞,为机械损伤所致。分别检测Rh123的荧光强度以及各群细胞所占的百分
比(Rh123+/PI+群细胞计数),结果如表5所示。
不同浓度的TCE处理细胞8 h后均能显著降低KC线粒体膜电位水平(Rh123荧
光强度与对照组相比,P<0.01),呈剂量-效应关系;从各群细胞所占的比例来分
析,染毒剂量增加可引起Rh123+/PI-群细胞(正常细胞)减少,同时伴随Rh123-
/PI-群(凋亡早期细胞)和Rh123-/PI+群细胞(坏死细胞)增多(表5),且均有统
计学意义(与对照组相比,P<0.01)。从表5中可看出,不同浓度EGb预处理可
以保护TCE(2.0 mmol/L)引起的膜电位下降,各保护组Rh123荧光强度均高于
2.0 mmol/L TCE染毒组(P<0.01),Rh123-/PI-细胞群的比例均较TCE染毒阳
性组减少(与2.0 mmol/L TCE组比较,P<0.01)。且当EGb浓度提高到100和
150 mg/L时,Rh123荧光强度、Rh123-/PI-细胞群的比例与正常对照组比较差
异无统计学意义(P>0.05)。
2.5 剂量-效应关系的曲线拟合
对各指标结果进行单因素方差分析和组间两两比较,差异具有统计学意义。各指标
实测值与染毒剂量进行曲线拟合后,得到的曲线方程均为直线模式,即符合Y=
a+bX模式(Y为各指标的实测值,X为染毒剂量),拟合优度系数R2均大于0.8,
P<0.05,说明各指标在实验选择的剂量范围内,存在剂量-效应和时间-效应关系。
细胞线粒体是许多外来化学物最早累及,也是最有效的作用靶点[7],可引起
ROS产生增多、细胞钙稳态失调、线粒体膜蛋白释放等一系列事件[8],这些事
件或互为因果或相互协同,往往发生放大效应作用于细胞,因此检测线粒体的形态
功能变化情况可以反映细胞的早期功能状态和损伤状况,为机制研究提供第一手的
资料。银杏叶提取物制剂具有公认的抗氧化作用,研究发现它还能够保护线粒体功
能形态以及抗凋亡的作用,包括改善线粒体呼吸功能[9]、阻止衰老导致的线粒
体形态学改变、保护△Ψm的下降[10]、抑制线粒体cyt C的释放和caspase的
激活从而阻滞细胞凋亡的发生[11-12],因此EGb被认为是线粒体和细胞损伤
有效的保护剂。
MTT法可检测细胞活力,同时该法也可间接反映线粒体酶的活性[13]。本研究
结果显示TCE染毒后线粒体酶活性抑制程度逐渐加重,细胞活力则逐渐下降,
EGb预处理后则起到明显的保护作用。细胞的能量代谢其实质是在线粒体中进行
的一系列由线粒体酶系所催化的氧化还原反应,产生的能量储存于ATP的高能磷
酸键中,线粒体酶活性的抑制将影响ATP的产生。由于ATP是ATP酶的唯一底
物,测定ATP酶的活性可从侧面反映出细胞内ATP的水平。本实验中,TCE处理
后细胞总ATP酶活性降低,表明细胞ATP生成减少,EGb保护组则能有效提高
ATP酶的活性。结合MTT的实验结果,提示TCE可直接作用于KC线粒体代谢酶
和呼吸功能,干扰细胞的能量代谢,引起ATP生成减少,而ATP量的多少又决定
细胞受损时是选择凋亡还是坏死的方式消亡[14],因此这一作用在细胞损伤研
究中值得关注。
流式细胞术结合Rh123/PI双染法可反映△Ψm的变化情况以及细胞的存活状态
[15]。△Ψm是反映线粒体功能极为敏感指标,对细胞的存活和维持细胞的正常
功能至关重要[16]。在观察到经典的细胞凋亡特征之前,线粒体功能就已经发
生了改变,其中△Ψm的下降或崩溃被认为是不可逆的早期凋亡事件,抑制其下降
则可避免细胞进入凋亡,是细胞凋亡中有意义的限速步骤[17]。研究表明,
△Ψm的下降与由线粒体外膜、内膜蛋白构成的线粒体膜通透性转换孔
(mitochondrial permeability transition pores,MPTP)开放有关,MPTP一旦
持续性开放,大量物质涌入,破坏内膜两侧的电子梯度,△Ψm崩溃,呼吸链与氧
化磷酸化失偶联,影响细胞ATP产生、Ca2+稳态、活性氧的产量以及细胞色素C
的释放[8,18],这些事件的发生与发展也会介导细胞凋亡。因此考察△Ψm的
变化在研究细胞凋亡中的意义不言而喻。本次研究结果显示,TCE可显著降低
△Ψm,且呈现一定的时间剂量效应关系。从细胞各群分布来看,随着TCE染毒剂
量的增大和时间的延长,正常细胞比例不断减少,进入早期凋亡状态的细胞不断增
多,提示线粒体膜电位的下降参与了这一细胞毒性作用。在进行了EGb预处理以
后,△Ψm较TCE染毒组明显提高,且随着EGb剂量的增加保护作用更为明显,
表明EGb对△Ψm的保护是其保护TCE所致的KC损伤和凋亡的重要机制。
综上,线粒体损伤在TCE所致的KC细胞损伤和凋亡中起到了重要的作用,而
EGb可以有效地保护TCE所引起的KC线粒体的损伤,提示EGb可以作为开发防
治TCE药疹样皮炎防护用品的重要候选物。当然,EGb成分复杂,具体是何种物
质还是几种物质协同作用才起到保护作用还有待进一步探究,此外其保护作用的机
制也需要进一步研究。
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