2024年4月13日发(作者:冒舒荣)
33
(
6
)
:685
~
690,2007
浙江大学学报
(
农业与生命科学版
)
JournalofZhejiangUniversity
(
Agric
1
&LifeSci
1
)
文章编号
:1008
2
9209
(
2007
)
06
2
0685
2
06
异养型同步硝化反硝化处理氨氮废水及群落结构分析
苏俊峰
1,2
,
马放
1
,
高珊珊
1
,
魏利
1
,
李维国
1
(
1.
哈尔滨工业大学市政环境工程学院环境科学与工程系
,
黑龙江哈尔滨
150090;
2.
西安建筑科技大学环境与市政工程学院
,
陕西西安
710055
)
摘 要
:
从生物陶粒反应器中筛选出
6
株异养硝化细菌
,
采用乙酸钠2氯化铵培养基培养细菌进行硝化
特性研究
.
经过
12d
好氧培养
,6
株异养硝化细菌对
COD
的去除率在
45%
以上
,
总氮和氨氮最终去除
率在
60%
以上
,
并且具有产生
NO
x
-
2
N
的硝化性能
.
采用污泥驯化手段富集好氧反硝化细菌
,
将得到的
驯化污泥分离纯化
,
共得到
5
株高效好氧反硝化细菌
(
f1
、
f2
、
f3
、
f5
、
f7
)
,
他们对总氮
(
TN
)
的去除率分别
为
90
1
4%
、
91
1
2%
、
94
1
6%
、
95
1
6%
、
97%,
表现出较好的总氮去除能力
.
将
6
株异养硝化细菌和
5
株好
氧反硝化细菌扩大培养后
,
建立
SBR
反应器进行氨氮去除的试验研究
.PCR
2
DGGE
图谱表明
,
在反应
器运行的不同时期
,
微生物群落结构发生动态演替
.
在反应器稳定运行期间
,
筛选的异养硝化细菌
wgy5,wgy21,
好氧反硝化细菌
d5
和
Pseudomonas
sp.
的细菌是系统的优势菌群
.
关 键 词
:PCR
2
DGGE;
异养硝化细菌
;
好氧反硝化细菌
;
同步硝化反硝化
中图分类号
:TP273
文献标识码
:A
SUJun
2
feng
1,2
,MAFang
1
,
InstituteofTechnology,
GAOShan
2
shan
1
,WEILI
1
,LIWei
2
guo
1
(
mentof
EnvironmentalandMunicipal
EnvironmentalScience&Engineering,SchoolofMunicipalandEnvironmentalEngineering,Harbin
Harbin150090,China;of
Engineering,Xi
’
anUniversityofArchitectureandTechnology,Xi
’
an710055,China
)
Heterotrophicnitrifiersandaerobicdenitrifiersinprocessofsimultaneousnitrificationanddenitrification
disposingNH
4
+
2
lofZhejiangUniversity
(
Agric
1
&LifeSci
1
)
,2007,33
(
6
)
:
685
2
690
Abstract:Heterotrophicnitrifierswerescreenedfrombio
2
ceramicreactor,andwerecharacterizedusing
ultsobtainedwerethat
CODremovalratereachedover45%,TNandNH
4
+
2
Nremovalratereachedover60%,andalsothe
nitrificationfunctionofproducingNO
x
-
2
omesticatingactivatedsludgetoenrich
aerobicdenitrifiers,5aerobicdenitrifiers
(
f1,f2,f3,f5,f7
)
wereisolatedfromit,andtheremovalof
TNwere90
1
4%,91
1
2%,94
1
6%,95
1
6%,97%bythesestrains,cessofremoving
ammoniacnitrogenwasdonebysettingtheheterotrophicnitrifyingbacteriaandaerobicdenitrifiersonthe
sequencingbatchreactor
(
SBR
)
.ThePCR
2
DGGEprofilesshowedthatshiftofmicrobialdiversity
theSBRstableperformanceperiod,heterotrophic
收稿日期
:2006
2
11
2
10
基金项目
:
国家自然科学基金重大国际合作资助项目
(
5
)
;
国家重点基础研究发展计划“
973"
资助项目
(
2004CB185050
)
.
)
,
男
,
黑龙江北安人
,
博士
,
主要从事环境生物技术方面的研究
.E
2
mai:sjf1977518@.
作者简介
:
苏俊峰
(
1977
—
通讯作者
:
马放
,
男
,
教授
,
博士生导师
,
主要从事环境生物技术方面的研究
.E
2
mai:mafang@
686
浙江大学学报
(
农业与生命科学版
)
第
33
卷
nitrobacteriawgy5,wgy21,aerobicdenitrifiersd5and
Pseudomonas
minantbacteriainSBR.
Keywords:PCR
2
DGGE;heterotrophicnitrificationbacteria;aerobicdenitrifiers;
nitrificationanddenitrification
simultaneous
氮素污染是引起水体富营养化的重要原因
之一
[1
2
3]
,
因此污水的脱氮处理对于维持水体清
洁以及防止富营养化都具有重要的作用
.
根据
传统生物脱氮理论
,
生物脱氮必须通过硝化和
反硝化两个独立过程来实现
.
硝化和反硝化不
能同时发生
,
硝化反应在有氧条件下进行
,
而反
硝化反应需要在严格的厌氧或缺氧条件下进
行
.
最近几年国内外有不少实验和报道证明有
同步硝化和反硝化现象
(
simultaneous
nitrificationanddenitrification,SND
)
,
尤其在
g,H
2
O1000mL.
③
DM:Na
2
HPO
4
!
7H
2
O7
1
9g,KH
2
PO
4
1
1
5g,NH
4
Cl0
1
3g,MgSO
4
!
7H
2
O0
1
1g,
琥珀
酸钠
4
1
7g,KNO
3
1g,NaNO
2
0
1
1g,
微量元素溶
液
2mL,H
2
O998mL.
微量元素溶液
:EDTA50
1
0g,ZnSO
4
2
1
2
g,CaCl
2
5
1
5g,MnCl
2
!
4H
2
O5
1
06g,FeSO
4
!
7H
2
O5
1
0g,
(
NH
4
)
6
Mo
7
O
2
!
4H
2
O1
1
1g,
CuSO
4
!
5H
2
O1
1
57g,CoCl
2
!
6H
2
O1
1
61g,
H
2
O1000mL.
1
1
2
异养硝化细菌的分离及硝化能力测定
有氧条件下同步硝化与反硝化存在不同的生物
处理系统中
,
如流化床反应器
[4]
、生物转盘
[5]
、
MBR
[6]
、氧化沟
[7]
、
CAST
[8]
工艺等
.
将生物陶粒样品充分悬浮于
100mL
无菌
水中
,
震荡培养
12h
后取菌悬液按
10%
接种量
接种于牛肉膏蛋白胨培养基中
.30
℃摇床富集
培养
2
代
,
每代
24h,
然后将富集培养液接种于
异养氨化培养基固体平板中
,30
℃温箱培养
1
d,
待形成菌落后挑取单菌落
,
接种于异养亚硝
PCR
2
DGGE
作为一种指纹分析技术
,
具
有可重复、快速和操作简便等特点
,
近年来在
分子微生态研究方面得到了广泛应用
[9
2
11]
.
活
性污泥微生物种类极其丰富
,
只有
0
1
1%
~
1%
的微生物种类通过常规方法能被培养
.
因此
,
近
几年
,DGGE
技术被广泛应用于活性污泥微生
物群落多样性和动态分析
[12]
.
关于同步硝化反硝化的报道
,
多局限于实
验室内纯种微生物培养的理论研究
,
较少有水
处理实用工艺及种群结构分析研究
.
本研究采
用从污水处理系统中筛选到的
6
株异养硝化细
菌和
5
株好氧反硝化细菌构成复合菌群
,
利用
复合菌群建立
SBR
反应器处理含氨氮的污水
并对系统的种群多样性进行分析
.
化培养基中
.
将
5mL
含纯化菌株的混合液样
品加入到
500mL
经灭菌的培养用培养基
,
溶
液
pH
值调至
7
1
0
~
8
1
0,
三角瓶在
30
℃恒定
转速培养
,
每日取样
,
样品经离心分离后用标
准方法测定
COD
、氨氮、亚硝酸盐氮和总
N,
所
有结果均以空白溶液做对照
.
1
1
3
好氧反硝化菌的分离及反硝化能力测定
从驯化后富集好氧反硝化菌的活性污泥中
分离得到
62
株细菌
,
将上述分离纯化后得到的
纯菌斜面
,
用灭菌后的
DM
(
加入氧化态氮
KNO
3
1g
!
L
-1
,NaNO
2
0
1
5g
!
L
-1
)
培养液洗
到装有
100mLDM
培养液的
250mL
三角瓶
中
,
并在每个三角瓶内加入几粒灭过菌的玻璃
珠
,
用
9
层纱布包好瓶口
,
放入空气振荡器培
养
.
具体培养条件如下
:
温度
30
℃
,
转速
160r
!
min
-1
,
培养时间
24h.
取培养前后的菌液测量
TN
浓度
,
考察其对
TN
的去除率
.
1
1
4
SBR
反应器的人工配水方法
1
材料和方法
1
1
1
异养硝化分离培养基
①牛肉膏蛋白胨培养基
:
牛肉膏
3g,NaCl
5g,
蛋白胨
10g,H
2
O1000mL,pH7
1
0
~
7
1
2.
②异养氨化培养基
:NH
4
Cl0
1
382g,
乙酸
钠
2g,MgSO
4
!
7H
2
O0
1
05g,K
2
HPO
4
0
1
2g,
NaCl0
1
12g,MnSO
4
!
4H
2
O0
1
01g,FeSO
4
0
1
01
由人工配水代替试验用废水
,
由
NH
4
Cl
、
Na
2
HPO
4
、
KH
2
PO
4
、
MgSO
4
!
7H
2
O
、
MnSO
4
、
第
6
期
苏俊峰
,
等
:
异养型同步硝化反硝化处理氨氮废水及群落结构分析
687
NaAc
!
3H
2
O
和微量元素按一定比例配制
.
其水
质见表
1.
其中进水
COD
浓度根据试验需求
配制
.
表
1
试验模拟用水水质
Table1
Waterqualityofsyntheticwastewater
体系组成如下
:100ng
模板、
20pmol
正反引
物、
200
μ
mol
!
L
-1
dNTP
(
每种
10mmol
!
L
-1
)
、
5
μ
L
的
10
×
PCRbuffer
(
MgCl
2
)
、
2
1
5U
的
PfuDNA
聚合酶
,
无菌纯水补足到
50
μ
L.
1
1
6
1
3
PCR
反应条件 采用降落
PCR
策
水质指标
COD
NH
4
+
2
N
NO
3
-
2
N
NO
2
-
2
N
TP
pH
浓度
/
(
mg
!
L
-1
)
38
~
216
22
1
78
~
53
1
62
0
~
1
1
92
0
~
0
1
22
3
~
6
7
1
2
~
8
1
0
略扩增
,95
℃预变性
5min,94
℃变性
1min,
65
℃退火
1min,72
℃延伸
30s,
每个循环退火
温度降低
0
1
5
℃直至
55
℃
,30
个循环
,72
℃最
终延伸
反应的产物用
2%
琼脂糖凝
胶电泳检测
.
1
1
7
变性梯度凝胶电泳
(DGGE)
分析
采用
BioRad
公司
Dcode
TM
的基因突变检
测系统对
PCR
反应产物进行电泳分离
.
1
1
7
1
1
变性梯度胶的制备 使用梯度混合
装置
,
制备
8%
的聚丙烯酰胺凝胶
,
变性剂浓度
从
35%
到
60%
(
100%
的变性剂为
7mol
!
L
-1
的尿素和
40%
的去离子甲酰胺的混合物
)
,
其
中变性剂的浓度从胶的上方向下方依次递增
.
1
1
7
1
2
PCR
样品的加样 待变性梯度胶完
全凝固后
,
将胶板放入装有电泳缓冲液的电泳
槽中
,
取
PCR
样品
5
μ
L
和
10
倍加样缓冲液混
合后加入上样孔
.
1
1
7
1
3
电泳及染色 在
150V
电压下
,60
℃
电泳
4h.
电泳结束后
,
将凝胶进行银染
.
1
1
7
1
4
胶图扫描 将染色后的凝胶用
UMAX
透射扫描仪扫描后获取胶图
,
在凝胶两
面覆上干胶膜
(
promega
)
,
用干胶夹定型
,
自然
干燥后长期保存
.
1
1
5
SBR
反应器的建立
SBR
反应器由有机玻璃加工而成
,
容积为
3L,
采用鼓风曝气、电动搅拌机搅拌
.
将筛选
的异养硝化细菌扩大培养
,
接种相当于整个反
应器体积
0
1
1%
的新鲜活性污泥
,
空曝气
3
~
7
d
形成活性污泥后开始运行
.
当氨氮去除率在
70%
以上时表明已建立稳定的异养硝化污泥体
系
,
整个反应器运行期间逐步降低溶解氧的浓
度
,
从
4
~
5mg
!
L
-1
逐步降到
1
~
2mg
!
L
-1
.
将
筛选的好氧反硝化细菌扩大培养
,
接种相当于
整个反应器体积
0
1
1%
的新鲜活性污泥
,
空曝
气
3
~
7d
后形成活性污泥
,
整个驯化过程逐步
提高溶解氧浓度
,
从
0
1
5mg
!
L
-1
逐步升到
2
~
3mg
!
L
-1
.
当硝酸盐去除率在
80%
以上时表明
已建立稳定的好养反硝化污泥体系
.
向稳定的
异养硝化污泥体系投加用好养反硝化细菌驯化
培养液驯化的污泥
,
每天测定反应器氨氮和亚
硝酸盐浓度的变化
,
水温为
20
~
25
℃
,
以
12h
为
1
个周期
,
每个周期进水
5min,
曝气
11h20
min,
沉淀
30min,
排水
5min,
每次换水时排出
总水量的
50%
左右
,
溶解氧浓度为
2mg
!
L
-1
.
1
1
6
基因组总
DNA16SrDNAV3
区扩增
1
1
6
1
1
引物序列 采用对大多数细菌和古
细菌的
16SrDNA
基因
,V3
区具有特异性的引
物对
:F
338
GC
和
R
518
,
他们的序列分别为
:F
338
GC:
(
5
’2
CGCCCGCCGCGCCCCGCGCCCGTCCC
GCCGCCCCCGCCCGCCTACGGGAGGCAGCAG
2
)
和
R
518
(
5
’
)
.3
’2
ATTACCGCGGCTGCTGG
2
3
’
1
1
6
1
2
PCR
反应体系
50
μ
L
的
PCR
反应
2
结果与讨论
2
1
1
异养硝化细菌硝化速率的测定
采用乙酸钠、氯化铵作为碳源及氮源检验
微生物的硝化性能
,
经过
12d
的好氧培养
,6
株
异养硝化菌对
COD
的去除率在
45%
以上
,
对
总氮最终去除率在
60%
以上
(
表
2
)
,
表明
6
株
细菌具有良好的脱氮除碳性能
.
对氨氮最终去
除率在
60%
以上
.
在前
5d
细菌利用培养基中
的碳源、氮源及其它营养源进行快速增殖
,
使
COD
、总氮、氨氮快速下降
,5d
以后细菌由于
快速繁殖使培养液中的营养物质大量被耗用
,
细菌的增殖速度减慢
,
另一方面大量死亡的细
688
浙江大学学报
(
农业与生命科学版
)
第
33
卷
菌释放出其内源有机物
,
使
COD
、总氮、氨氮浓
度趋于稳定
.NO
2
-
2
N
和
NO
3
-
2
N
浓度变化较
小
(
表
2
)
.NO
2
-
2
N
和
NO
3
-
2
N
浓度在整个试
验过程后期积累明显快于前期
,
说明
NO
2
-
2
N
和
NO
3
-
2
N
浓度变化与生长情况不一致
,
其积
累不是出现在菌体对数增殖期
,
这表明硝化作
用可能是在老龄细胞中发生的
.
表
2
6
株异养硝化细菌对培养液中
COD,TN,NH
4
+
2
N
及
NO
x
-
2
N
的去除率
Table2
AverageremovalratesofCOD,TN,NH
4
+
2
NandNO
x
-
2
Ninculturemediumduringbatchtestofstrains
mg
!
L
-1
菌株
编号
CODTNNH
4
+
2
N
NO
2
-
2
N
NO
3
-
2
N
初始
浓度
结束
浓度
954
1
24
873
1
00
去除
率
/%
49
1
63
56
1
54
56
1
10
45
1
44
50
1
85
45
1
03
初始
浓度
151
1
63
171
1
55
154
1
88
171
1
56
152
1
47
172
1
85
结束
浓度
52
1
3
59
1
39
52
1
89
54
1
93
59
1
83
52
1
36
去除
率
/%
65
1
51
65
1
38
65
1
85
67
1
98
60
1
76
69
1
71
初始
浓度
105
1
68
110
1
59
99
1
77
102
1
87
115
1
67
106
1
25
结束
浓度
18
1
11
22
1
92
25
1
86
15
1
47
16
1
27
21
1
12
去除
率
/%
82
1
86
79
1
27
74
1
08
84
1
96
85
1
93
80
1
12
初始
浓度
0
0
0
0
0
0
结束
浓度
0
1
25
0
1
49
0
1
72
0
1
19
0
1
60
0
1
75
初始
浓度
3
1
36
3
1
52
3
1
12
2
1
97
3
1
19
3
1
02
结束
浓度
4
1
45
4
1
68
3
1
85
3
1
59
3
1
38
3
1
21
wgy12064
1
841040
1
15
wgy22195
1
65
wgy31988
1
51
wgy42087
1
261138
1
71
wgy52076
1
79986
1
39
wgy62033
1
151117
1
55
2
1
2
好氧反硝化菌的筛选
从太平污水处理厂的曝气池和生物陶粒作
为载体的好氧反硝化反应器中取得活性污泥样
品
,
采用
SBR
反应器对活性污泥样品进行
1
个
月的驯化
,
在污泥驯化后
,
从装置中共分离纯化
得到
62
株细菌
,
其中
TN
去除率在
90%
以上
的菌株有
5
株
.
分别为
f1
、
f2
、
f3
、
f5
、
f7,
其对总
氮的去除率分别为
90
1
4%
、
91
1
2%
、
94
1
6%
、
95
1
6%
、
97%,
表现出较好的总氮去除能力
.
一
般认为
,
生物同化作用利用的氮不会超过
TN
的
30%,
所以可以基本认为这
5
株细菌在好氧
条件下具有反硝化作用
.
2
1
3
PCR
2
DGGE
指纹图谱分析
分别在反应器运行的不同时期
(
第
2
、
15
、
30d
)
取样
,
采用细菌
16SrRNA
基因通用引物
F
338
GC
2
R
518
进行扩增
,
其
PCR
2
DGGE
图谱见
图
1.
在
PCR
2
DGGE
带谱中
,
样品
1
有
14
条
带
,
样品
2
有
9
条带
,
样品
3
有
16
条带
.
反应器
运行到第
15d
时
,
细菌种群多样性最低
,
特征
条带
e,f
所指示的优势种群消失
,
条带
b
出现
并富集
.
这主要是由于试验前期向
SBR
反应器
异养硝化污泥中投加了采用亚硝酸盐和硝酸盐
驯化的好氧反硝化污泥
,2
种污泥中含有的细
菌菌群发生剧烈的竞争
,
群落演替迅速
,
不适应
环境的菌群在竞争中处于劣势而被大量淘汰
,
但优势菌群较为明显
.
第
30d
时
,
细菌种群多
1:2d;2:15d;3:30d.
图
1
不同样品
PCR
产物变性梯度凝胶电泳图
Fig.1
DGGEprofileofdifferentPCRsamplestakenat
differenttime
样性最高
,
既有先前的种群消亡
,
也有新的优势
菌种的出现
,
说明种群一直处于动态变化过程
中
,
逐渐形成了稳定的生态位
.
在稳定期特征条
带
f
所指示的优势种群重新出现
,
出现了新的
特征条带
a,
特征条带
c,d,g
所指示的优势菌
第
6
期
苏俊峰
,
等
:
异养型同步硝化反硝化处理氨氮废水及群落结构分析
689
群始终是系统的优势菌群
,
称为常驻菌群
.
特征
条带
b,g
所指示的种群优势地位在稳定期逐渐
得以显现
.
DGGE
指纹图谱通过软件进行相似性分
析
,2d
与
15d
相似性为
47
1
62%,2d
与
30d
相似性最低为
42
1
86%,15d
与
30d
相似性最
高为
72%
(
表
3
)
.
群落的相似性随着运行时间
的延长先降低再升高
,
第
30d
逐渐形成稳定的
顶级群落
.
表
3
DGGE
图谱的相似性分析
Table3
SimilaritycoefficientofDGGEprofiles
硝化细菌由于底物缺乏且不适应新环境
.
试验
后期整个系统的群落结构趋于稳定
,
好氧反硝
化细菌有充足的底物且逐渐适应了新的环境而
成为整个系统的优势菌群
,
异养硝化细菌将氨
氮转化为硝酸盐
,
好氧反硝化细菌将硝酸盐转
化为氮气
,
并最终造成总氮的去除
.a,d,e,f
所
代表的特征条带分别为
Bacillusmegaterium
strain,
Pseudomonas
sp.,unculturedbacterium
clone
和
Pseudomonaschloritidismutans
.
Pseudomonas
sp.
的细菌是异养硝化细菌和好
氧反硝化细菌的主要类郡
.
这些细菌可能是通
过接种的污泥带进反应器中
,
由于它们有较强
的适应能力而逐渐成为系统的优势菌群
.
表
4
SBR
反应器细菌
OTU
与
GenBank
数据库中最为
相似性
/%
2d
15d
30d
2d
100
47
1
62
42
1
86
15d30d
100
72100
接近的细菌种类
Table4
Mostcloselymatchedspeciesof6partial16SrDNA
sequencesinGeneBank
2
1
4
测序结果分析
不同样品经过变性梯度凝胶电泳
(
DGGE
)
分离出数目不等的电泳条带
,
各个条带的信号
强度不同
.
根据
DGGE
对具有相同大小不同
DNA
序列片段分离原理
,
可以得知
3
个时期活
操作分
类单元
(
OTU
)
a
b
c
d
e
f
g
GenBank
数据库或筛选的硝化细菌
最为接近的细菌种类
Bacillusmegaterium
strain
相似
性
/%
98
100
100
99
100
97
95
wgy21
wgy5
Pseudomonas
111063.1
性污泥的
PCR
产物中含有十几种不同指纹条
带
,
每个独立分离的条带为
1
个操作分类单元
(
operationaltaxonomyunit,OTU
)
,
可能包括
1
种或
1
种以上的微生物种属
.
在反应器运行
UnculturedbacteriumcloneDQ469220
Pseudomonaschloritidismutans
AY017341
d5
过程中
,
不同时期的活性污泥微生物群落结构
和种群数量不同
.
对
DGGE
图谱上的
7
条主要条带分别进
行切割、
DNA
洗脱、回收、重新扩增和电泳检
测
.
对每个重新扩增条带进行纯化、连接、转化、
克隆
,
所有割胶条带都能找到与其相对应的阳
性克隆转化子
,
在
GenBank
数据库和筛选菌
16SrDNA
中找出与每条序列亲缘关系最近的
3
1
1
在氨氧化培养基中经过
12d
的好氧培
3
结 论
养
,6
株细菌的
COD
及
TN
浓度均呈现出降低
趋势
,6
株异养硝化菌对
COD
的去除率在
45%
以上
,
对氨氮和总氮最终去除率在
60%
以上
,
表明
6
株细菌具有良好的脱氮除碳性能
.
整个
试验期间
NO
2
-
2
N
和
NO
3
-
2
N
浓度变化较小
.
3
1
2
从太平污水处理厂的曝气池和生物陶粒
菌
,
其结果见表
4.
反应器的整个运行阶段
,
筛
选的异养硝化细菌
wgy21
所代表的特征条带
在反应器运行到第
2d
消失
,
第
15dwgy21
所
代表的特征条带出现并逐渐富集
,
第
30d
wgy21
成为反应器中的优势菌群
.
异养硝化细
作为载体的好氧反硝化反应器中取得活性污泥
样品
,
采用
SBR
反应器对活性污泥样品进行
1
个月的驯化
,
从装置中共分离纯化得到
5
株高
效好氧反硝化细菌
,
分别为
f1
、
f2
、
f3
、
f5
、
f7,
其
对总氮的去除率分别为
90
1
4%
、
91
1
2%
、
菌
wgy5
所代表的特征条带始终是反应器中的
优势菌群
,
称为常驻菌群
.
好氧反硝化细菌
d5
在试验前期生物量较低
,
这主要是由于好氧反
690
浙江大学学报
(
农业与生命科学版
)
亮
,
李春杰
,
等
)
.
denitrificationand
第
33
卷
Simultaneousnitrificationand
heterotrophicnitrificationin
94
1
6%
、
95
1
6%
、
97%,
表现出较好的总氮去除
能力
.
3
1
3
PCR
2
DGGE
图谱表明
,
在反应器运行的
不同时期
,
微生物群落结构发生动态演替
.2d
与
15d
的相似性为
47
1
62%,15d
与
30d
的相
似性最高为
72%,2d
与
30d
的相似性最低为
42
1
86%.
测序结果显示
,
在反应器稳定运行期
membranebioreactor[J].EnvironmentalScienceand
Technology(
环境科学与技术
),2006,29
(
1
)
:7
2
9,27.
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simultaneousnitrificationanddenitrification
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SND
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IwamoT,NakamuraK,SuzukiY,
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.Monitoring
impactof
insitu
WaterScience
间
,
筛选的异养硝化细菌
wgy5,wgy21,
好氧反
硝化细菌
d5
和
Pseudomonas
sp.
的细菌是系
统的优势菌群
.
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jie,
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(
林燕
,
何义
2024年4月13日发(作者:冒舒荣)
33
(
6
)
:685
~
690,2007
浙江大学学报
(
农业与生命科学版
)
JournalofZhejiangUniversity
(
Agric
1
&LifeSci
1
)
文章编号
:1008
2
9209
(
2007
)
06
2
0685
2
06
异养型同步硝化反硝化处理氨氮废水及群落结构分析
苏俊峰
1,2
,
马放
1
,
高珊珊
1
,
魏利
1
,
李维国
1
(
1.
哈尔滨工业大学市政环境工程学院环境科学与工程系
,
黑龙江哈尔滨
150090;
2.
西安建筑科技大学环境与市政工程学院
,
陕西西安
710055
)
摘 要
:
从生物陶粒反应器中筛选出
6
株异养硝化细菌
,
采用乙酸钠2氯化铵培养基培养细菌进行硝化
特性研究
.
经过
12d
好氧培养
,6
株异养硝化细菌对
COD
的去除率在
45%
以上
,
总氮和氨氮最终去除
率在
60%
以上
,
并且具有产生
NO
x
-
2
N
的硝化性能
.
采用污泥驯化手段富集好氧反硝化细菌
,
将得到的
驯化污泥分离纯化
,
共得到
5
株高效好氧反硝化细菌
(
f1
、
f2
、
f3
、
f5
、
f7
)
,
他们对总氮
(
TN
)
的去除率分别
为
90
1
4%
、
91
1
2%
、
94
1
6%
、
95
1
6%
、
97%,
表现出较好的总氮去除能力
.
将
6
株异养硝化细菌和
5
株好
氧反硝化细菌扩大培养后
,
建立
SBR
反应器进行氨氮去除的试验研究
.PCR
2
DGGE
图谱表明
,
在反应
器运行的不同时期
,
微生物群落结构发生动态演替
.
在反应器稳定运行期间
,
筛选的异养硝化细菌
wgy5,wgy21,
好氧反硝化细菌
d5
和
Pseudomonas
sp.
的细菌是系统的优势菌群
.
关 键 词
:PCR
2
DGGE;
异养硝化细菌
;
好氧反硝化细菌
;
同步硝化反硝化
中图分类号
:TP273
文献标识码
:A
SUJun
2
feng
1,2
,MAFang
1
,
InstituteofTechnology,
GAOShan
2
shan
1
,WEILI
1
,LIWei
2
guo
1
(
mentof
EnvironmentalandMunicipal
EnvironmentalScience&Engineering,SchoolofMunicipalandEnvironmentalEngineering,Harbin
Harbin150090,China;of
Engineering,Xi
’
anUniversityofArchitectureandTechnology,Xi
’
an710055,China
)
Heterotrophicnitrifiersandaerobicdenitrifiersinprocessofsimultaneousnitrificationanddenitrification
disposingNH
4
+
2
lofZhejiangUniversity
(
Agric
1
&LifeSci
1
)
,2007,33
(
6
)
:
685
2
690
Abstract:Heterotrophicnitrifierswerescreenedfrombio
2
ceramicreactor,andwerecharacterizedusing
ultsobtainedwerethat
CODremovalratereachedover45%,TNandNH
4
+
2
Nremovalratereachedover60%,andalsothe
nitrificationfunctionofproducingNO
x
-
2
omesticatingactivatedsludgetoenrich
aerobicdenitrifiers,5aerobicdenitrifiers
(
f1,f2,f3,f5,f7
)
wereisolatedfromit,andtheremovalof
TNwere90
1
4%,91
1
2%,94
1
6%,95
1
6%,97%bythesestrains,cessofremoving
ammoniacnitrogenwasdonebysettingtheheterotrophicnitrifyingbacteriaandaerobicdenitrifiersonthe
sequencingbatchreactor
(
SBR
)
.ThePCR
2
DGGEprofilesshowedthatshiftofmicrobialdiversity
theSBRstableperformanceperiod,heterotrophic
收稿日期
:2006
2
11
2
10
基金项目
:
国家自然科学基金重大国际合作资助项目
(
5
)
;
国家重点基础研究发展计划“
973"
资助项目
(
2004CB185050
)
.
)
,
男
,
黑龙江北安人
,
博士
,
主要从事环境生物技术方面的研究
.E
2
mai:sjf1977518@.
作者简介
:
苏俊峰
(
1977
—
通讯作者
:
马放
,
男
,
教授
,
博士生导师
,
主要从事环境生物技术方面的研究
.E
2
mai:mafang@
686
浙江大学学报
(
农业与生命科学版
)
第
33
卷
nitrobacteriawgy5,wgy21,aerobicdenitrifiersd5and
Pseudomonas
minantbacteriainSBR.
Keywords:PCR
2
DGGE;heterotrophicnitrificationbacteria;aerobicdenitrifiers;
nitrificationanddenitrification
simultaneous
氮素污染是引起水体富营养化的重要原因
之一
[1
2
3]
,
因此污水的脱氮处理对于维持水体清
洁以及防止富营养化都具有重要的作用
.
根据
传统生物脱氮理论
,
生物脱氮必须通过硝化和
反硝化两个独立过程来实现
.
硝化和反硝化不
能同时发生
,
硝化反应在有氧条件下进行
,
而反
硝化反应需要在严格的厌氧或缺氧条件下进
行
.
最近几年国内外有不少实验和报道证明有
同步硝化和反硝化现象
(
simultaneous
nitrificationanddenitrification,SND
)
,
尤其在
g,H
2
O1000mL.
③
DM:Na
2
HPO
4
!
7H
2
O7
1
9g,KH
2
PO
4
1
1
5g,NH
4
Cl0
1
3g,MgSO
4
!
7H
2
O0
1
1g,
琥珀
酸钠
4
1
7g,KNO
3
1g,NaNO
2
0
1
1g,
微量元素溶
液
2mL,H
2
O998mL.
微量元素溶液
:EDTA50
1
0g,ZnSO
4
2
1
2
g,CaCl
2
5
1
5g,MnCl
2
!
4H
2
O5
1
06g,FeSO
4
!
7H
2
O5
1
0g,
(
NH
4
)
6
Mo
7
O
2
!
4H
2
O1
1
1g,
CuSO
4
!
5H
2
O1
1
57g,CoCl
2
!
6H
2
O1
1
61g,
H
2
O1000mL.
1
1
2
异养硝化细菌的分离及硝化能力测定
有氧条件下同步硝化与反硝化存在不同的生物
处理系统中
,
如流化床反应器
[4]
、生物转盘
[5]
、
MBR
[6]
、氧化沟
[7]
、
CAST
[8]
工艺等
.
将生物陶粒样品充分悬浮于
100mL
无菌
水中
,
震荡培养
12h
后取菌悬液按
10%
接种量
接种于牛肉膏蛋白胨培养基中
.30
℃摇床富集
培养
2
代
,
每代
24h,
然后将富集培养液接种于
异养氨化培养基固体平板中
,30
℃温箱培养
1
d,
待形成菌落后挑取单菌落
,
接种于异养亚硝
PCR
2
DGGE
作为一种指纹分析技术
,
具
有可重复、快速和操作简便等特点
,
近年来在
分子微生态研究方面得到了广泛应用
[9
2
11]
.
活
性污泥微生物种类极其丰富
,
只有
0
1
1%
~
1%
的微生物种类通过常规方法能被培养
.
因此
,
近
几年
,DGGE
技术被广泛应用于活性污泥微生
物群落多样性和动态分析
[12]
.
关于同步硝化反硝化的报道
,
多局限于实
验室内纯种微生物培养的理论研究
,
较少有水
处理实用工艺及种群结构分析研究
.
本研究采
用从污水处理系统中筛选到的
6
株异养硝化细
菌和
5
株好氧反硝化细菌构成复合菌群
,
利用
复合菌群建立
SBR
反应器处理含氨氮的污水
并对系统的种群多样性进行分析
.
化培养基中
.
将
5mL
含纯化菌株的混合液样
品加入到
500mL
经灭菌的培养用培养基
,
溶
液
pH
值调至
7
1
0
~
8
1
0,
三角瓶在
30
℃恒定
转速培养
,
每日取样
,
样品经离心分离后用标
准方法测定
COD
、氨氮、亚硝酸盐氮和总
N,
所
有结果均以空白溶液做对照
.
1
1
3
好氧反硝化菌的分离及反硝化能力测定
从驯化后富集好氧反硝化菌的活性污泥中
分离得到
62
株细菌
,
将上述分离纯化后得到的
纯菌斜面
,
用灭菌后的
DM
(
加入氧化态氮
KNO
3
1g
!
L
-1
,NaNO
2
0
1
5g
!
L
-1
)
培养液洗
到装有
100mLDM
培养液的
250mL
三角瓶
中
,
并在每个三角瓶内加入几粒灭过菌的玻璃
珠
,
用
9
层纱布包好瓶口
,
放入空气振荡器培
养
.
具体培养条件如下
:
温度
30
℃
,
转速
160r
!
min
-1
,
培养时间
24h.
取培养前后的菌液测量
TN
浓度
,
考察其对
TN
的去除率
.
1
1
4
SBR
反应器的人工配水方法
1
材料和方法
1
1
1
异养硝化分离培养基
①牛肉膏蛋白胨培养基
:
牛肉膏
3g,NaCl
5g,
蛋白胨
10g,H
2
O1000mL,pH7
1
0
~
7
1
2.
②异养氨化培养基
:NH
4
Cl0
1
382g,
乙酸
钠
2g,MgSO
4
!
7H
2
O0
1
05g,K
2
HPO
4
0
1
2g,
NaCl0
1
12g,MnSO
4
!
4H
2
O0
1
01g,FeSO
4
0
1
01
由人工配水代替试验用废水
,
由
NH
4
Cl
、
Na
2
HPO
4
、
KH
2
PO
4
、
MgSO
4
!
7H
2
O
、
MnSO
4
、
第
6
期
苏俊峰
,
等
:
异养型同步硝化反硝化处理氨氮废水及群落结构分析
687
NaAc
!
3H
2
O
和微量元素按一定比例配制
.
其水
质见表
1.
其中进水
COD
浓度根据试验需求
配制
.
表
1
试验模拟用水水质
Table1
Waterqualityofsyntheticwastewater
体系组成如下
:100ng
模板、
20pmol
正反引
物、
200
μ
mol
!
L
-1
dNTP
(
每种
10mmol
!
L
-1
)
、
5
μ
L
的
10
×
PCRbuffer
(
MgCl
2
)
、
2
1
5U
的
PfuDNA
聚合酶
,
无菌纯水补足到
50
μ
L.
1
1
6
1
3
PCR
反应条件 采用降落
PCR
策
水质指标
COD
NH
4
+
2
N
NO
3
-
2
N
NO
2
-
2
N
TP
pH
浓度
/
(
mg
!
L
-1
)
38
~
216
22
1
78
~
53
1
62
0
~
1
1
92
0
~
0
1
22
3
~
6
7
1
2
~
8
1
0
略扩增
,95
℃预变性
5min,94
℃变性
1min,
65
℃退火
1min,72
℃延伸
30s,
每个循环退火
温度降低
0
1
5
℃直至
55
℃
,30
个循环
,72
℃最
终延伸
反应的产物用
2%
琼脂糖凝
胶电泳检测
.
1
1
7
变性梯度凝胶电泳
(DGGE)
分析
采用
BioRad
公司
Dcode
TM
的基因突变检
测系统对
PCR
反应产物进行电泳分离
.
1
1
7
1
1
变性梯度胶的制备 使用梯度混合
装置
,
制备
8%
的聚丙烯酰胺凝胶
,
变性剂浓度
从
35%
到
60%
(
100%
的变性剂为
7mol
!
L
-1
的尿素和
40%
的去离子甲酰胺的混合物
)
,
其
中变性剂的浓度从胶的上方向下方依次递增
.
1
1
7
1
2
PCR
样品的加样 待变性梯度胶完
全凝固后
,
将胶板放入装有电泳缓冲液的电泳
槽中
,
取
PCR
样品
5
μ
L
和
10
倍加样缓冲液混
合后加入上样孔
.
1
1
7
1
3
电泳及染色 在
150V
电压下
,60
℃
电泳
4h.
电泳结束后
,
将凝胶进行银染
.
1
1
7
1
4
胶图扫描 将染色后的凝胶用
UMAX
透射扫描仪扫描后获取胶图
,
在凝胶两
面覆上干胶膜
(
promega
)
,
用干胶夹定型
,
自然
干燥后长期保存
.
1
1
5
SBR
反应器的建立
SBR
反应器由有机玻璃加工而成
,
容积为
3L,
采用鼓风曝气、电动搅拌机搅拌
.
将筛选
的异养硝化细菌扩大培养
,
接种相当于整个反
应器体积
0
1
1%
的新鲜活性污泥
,
空曝气
3
~
7
d
形成活性污泥后开始运行
.
当氨氮去除率在
70%
以上时表明已建立稳定的异养硝化污泥体
系
,
整个反应器运行期间逐步降低溶解氧的浓
度
,
从
4
~
5mg
!
L
-1
逐步降到
1
~
2mg
!
L
-1
.
将
筛选的好氧反硝化细菌扩大培养
,
接种相当于
整个反应器体积
0
1
1%
的新鲜活性污泥
,
空曝
气
3
~
7d
后形成活性污泥
,
整个驯化过程逐步
提高溶解氧浓度
,
从
0
1
5mg
!
L
-1
逐步升到
2
~
3mg
!
L
-1
.
当硝酸盐去除率在
80%
以上时表明
已建立稳定的好养反硝化污泥体系
.
向稳定的
异养硝化污泥体系投加用好养反硝化细菌驯化
培养液驯化的污泥
,
每天测定反应器氨氮和亚
硝酸盐浓度的变化
,
水温为
20
~
25
℃
,
以
12h
为
1
个周期
,
每个周期进水
5min,
曝气
11h20
min,
沉淀
30min,
排水
5min,
每次换水时排出
总水量的
50%
左右
,
溶解氧浓度为
2mg
!
L
-1
.
1
1
6
基因组总
DNA16SrDNAV3
区扩增
1
1
6
1
1
引物序列 采用对大多数细菌和古
细菌的
16SrDNA
基因
,V3
区具有特异性的引
物对
:F
338
GC
和
R
518
,
他们的序列分别为
:F
338
GC:
(
5
’2
CGCCCGCCGCGCCCCGCGCCCGTCCC
GCCGCCCCCGCCCGCCTACGGGAGGCAGCAG
2
)
和
R
518
(
5
’
)
.3
’2
ATTACCGCGGCTGCTGG
2
3
’
1
1
6
1
2
PCR
反应体系
50
μ
L
的
PCR
反应
2
结果与讨论
2
1
1
异养硝化细菌硝化速率的测定
采用乙酸钠、氯化铵作为碳源及氮源检验
微生物的硝化性能
,
经过
12d
的好氧培养
,6
株
异养硝化菌对
COD
的去除率在
45%
以上
,
对
总氮最终去除率在
60%
以上
(
表
2
)
,
表明
6
株
细菌具有良好的脱氮除碳性能
.
对氨氮最终去
除率在
60%
以上
.
在前
5d
细菌利用培养基中
的碳源、氮源及其它营养源进行快速增殖
,
使
COD
、总氮、氨氮快速下降
,5d
以后细菌由于
快速繁殖使培养液中的营养物质大量被耗用
,
细菌的增殖速度减慢
,
另一方面大量死亡的细
688
浙江大学学报
(
农业与生命科学版
)
第
33
卷
菌释放出其内源有机物
,
使
COD
、总氮、氨氮浓
度趋于稳定
.NO
2
-
2
N
和
NO
3
-
2
N
浓度变化较
小
(
表
2
)
.NO
2
-
2
N
和
NO
3
-
2
N
浓度在整个试
验过程后期积累明显快于前期
,
说明
NO
2
-
2
N
和
NO
3
-
2
N
浓度变化与生长情况不一致
,
其积
累不是出现在菌体对数增殖期
,
这表明硝化作
用可能是在老龄细胞中发生的
.
表
2
6
株异养硝化细菌对培养液中
COD,TN,NH
4
+
2
N
及
NO
x
-
2
N
的去除率
Table2
AverageremovalratesofCOD,TN,NH
4
+
2
NandNO
x
-
2
Ninculturemediumduringbatchtestofstrains
mg
!
L
-1
菌株
编号
CODTNNH
4
+
2
N
NO
2
-
2
N
NO
3
-
2
N
初始
浓度
结束
浓度
954
1
24
873
1
00
去除
率
/%
49
1
63
56
1
54
56
1
10
45
1
44
50
1
85
45
1
03
初始
浓度
151
1
63
171
1
55
154
1
88
171
1
56
152
1
47
172
1
85
结束
浓度
52
1
3
59
1
39
52
1
89
54
1
93
59
1
83
52
1
36
去除
率
/%
65
1
51
65
1
38
65
1
85
67
1
98
60
1
76
69
1
71
初始
浓度
105
1
68
110
1
59
99
1
77
102
1
87
115
1
67
106
1
25
结束
浓度
18
1
11
22
1
92
25
1
86
15
1
47
16
1
27
21
1
12
去除
率
/%
82
1
86
79
1
27
74
1
08
84
1
96
85
1
93
80
1
12
初始
浓度
0
0
0
0
0
0
结束
浓度
0
1
25
0
1
49
0
1
72
0
1
19
0
1
60
0
1
75
初始
浓度
3
1
36
3
1
52
3
1
12
2
1
97
3
1
19
3
1
02
结束
浓度
4
1
45
4
1
68
3
1
85
3
1
59
3
1
38
3
1
21
wgy12064
1
841040
1
15
wgy22195
1
65
wgy31988
1
51
wgy42087
1
261138
1
71
wgy52076
1
79986
1
39
wgy62033
1
151117
1
55
2
1
2
好氧反硝化菌的筛选
从太平污水处理厂的曝气池和生物陶粒作
为载体的好氧反硝化反应器中取得活性污泥样
品
,
采用
SBR
反应器对活性污泥样品进行
1
个
月的驯化
,
在污泥驯化后
,
从装置中共分离纯化
得到
62
株细菌
,
其中
TN
去除率在
90%
以上
的菌株有
5
株
.
分别为
f1
、
f2
、
f3
、
f5
、
f7,
其对总
氮的去除率分别为
90
1
4%
、
91
1
2%
、
94
1
6%
、
95
1
6%
、
97%,
表现出较好的总氮去除能力
.
一
般认为
,
生物同化作用利用的氮不会超过
TN
的
30%,
所以可以基本认为这
5
株细菌在好氧
条件下具有反硝化作用
.
2
1
3
PCR
2
DGGE
指纹图谱分析
分别在反应器运行的不同时期
(
第
2
、
15
、
30d
)
取样
,
采用细菌
16SrRNA
基因通用引物
F
338
GC
2
R
518
进行扩增
,
其
PCR
2
DGGE
图谱见
图
1.
在
PCR
2
DGGE
带谱中
,
样品
1
有
14
条
带
,
样品
2
有
9
条带
,
样品
3
有
16
条带
.
反应器
运行到第
15d
时
,
细菌种群多样性最低
,
特征
条带
e,f
所指示的优势种群消失
,
条带
b
出现
并富集
.
这主要是由于试验前期向
SBR
反应器
异养硝化污泥中投加了采用亚硝酸盐和硝酸盐
驯化的好氧反硝化污泥
,2
种污泥中含有的细
菌菌群发生剧烈的竞争
,
群落演替迅速
,
不适应
环境的菌群在竞争中处于劣势而被大量淘汰
,
但优势菌群较为明显
.
第
30d
时
,
细菌种群多
1:2d;2:15d;3:30d.
图
1
不同样品
PCR
产物变性梯度凝胶电泳图
Fig.1
DGGEprofileofdifferentPCRsamplestakenat
differenttime
样性最高
,
既有先前的种群消亡
,
也有新的优势
菌种的出现
,
说明种群一直处于动态变化过程
中
,
逐渐形成了稳定的生态位
.
在稳定期特征条
带
f
所指示的优势种群重新出现
,
出现了新的
特征条带
a,
特征条带
c,d,g
所指示的优势菌
第
6
期
苏俊峰
,
等
:
异养型同步硝化反硝化处理氨氮废水及群落结构分析
689
群始终是系统的优势菌群
,
称为常驻菌群
.
特征
条带
b,g
所指示的种群优势地位在稳定期逐渐
得以显现
.
DGGE
指纹图谱通过软件进行相似性分
析
,2d
与
15d
相似性为
47
1
62%,2d
与
30d
相似性最低为
42
1
86%,15d
与
30d
相似性最
高为
72%
(
表
3
)
.
群落的相似性随着运行时间
的延长先降低再升高
,
第
30d
逐渐形成稳定的
顶级群落
.
表
3
DGGE
图谱的相似性分析
Table3
SimilaritycoefficientofDGGEprofiles
硝化细菌由于底物缺乏且不适应新环境
.
试验
后期整个系统的群落结构趋于稳定
,
好氧反硝
化细菌有充足的底物且逐渐适应了新的环境而
成为整个系统的优势菌群
,
异养硝化细菌将氨
氮转化为硝酸盐
,
好氧反硝化细菌将硝酸盐转
化为氮气
,
并最终造成总氮的去除
.a,d,e,f
所
代表的特征条带分别为
Bacillusmegaterium
strain,
Pseudomonas
sp.,unculturedbacterium
clone
和
Pseudomonaschloritidismutans
.
Pseudomonas
sp.
的细菌是异养硝化细菌和好
氧反硝化细菌的主要类郡
.
这些细菌可能是通
过接种的污泥带进反应器中
,
由于它们有较强
的适应能力而逐渐成为系统的优势菌群
.
表
4
SBR
反应器细菌
OTU
与
GenBank
数据库中最为
相似性
/%
2d
15d
30d
2d
100
47
1
62
42
1
86
15d30d
100
72100
接近的细菌种类
Table4
Mostcloselymatchedspeciesof6partial16SrDNA
sequencesinGeneBank
2
1
4
测序结果分析
不同样品经过变性梯度凝胶电泳
(
DGGE
)
分离出数目不等的电泳条带
,
各个条带的信号
强度不同
.
根据
DGGE
对具有相同大小不同
DNA
序列片段分离原理
,
可以得知
3
个时期活
操作分
类单元
(
OTU
)
a
b
c
d
e
f
g
GenBank
数据库或筛选的硝化细菌
最为接近的细菌种类
Bacillusmegaterium
strain
相似
性
/%
98
100
100
99
100
97
95
wgy21
wgy5
Pseudomonas
111063.1
性污泥的
PCR
产物中含有十几种不同指纹条
带
,
每个独立分离的条带为
1
个操作分类单元
(
operationaltaxonomyunit,OTU
)
,
可能包括
1
种或
1
种以上的微生物种属
.
在反应器运行
UnculturedbacteriumcloneDQ469220
Pseudomonaschloritidismutans
AY017341
d5
过程中
,
不同时期的活性污泥微生物群落结构
和种群数量不同
.
对
DGGE
图谱上的
7
条主要条带分别进
行切割、
DNA
洗脱、回收、重新扩增和电泳检
测
.
对每个重新扩增条带进行纯化、连接、转化、
克隆
,
所有割胶条带都能找到与其相对应的阳
性克隆转化子
,
在
GenBank
数据库和筛选菌
16SrDNA
中找出与每条序列亲缘关系最近的
3
1
1
在氨氧化培养基中经过
12d
的好氧培
3
结 论
养
,6
株细菌的
COD
及
TN
浓度均呈现出降低
趋势
,6
株异养硝化菌对
COD
的去除率在
45%
以上
,
对氨氮和总氮最终去除率在
60%
以上
,
表明
6
株细菌具有良好的脱氮除碳性能
.
整个
试验期间
NO
2
-
2
N
和
NO
3
-
2
N
浓度变化较小
.
3
1
2
从太平污水处理厂的曝气池和生物陶粒
菌
,
其结果见表
4.
反应器的整个运行阶段
,
筛
选的异养硝化细菌
wgy21
所代表的特征条带
在反应器运行到第
2d
消失
,
第
15dwgy21
所
代表的特征条带出现并逐渐富集
,
第
30d
wgy21
成为反应器中的优势菌群
.
异养硝化细
作为载体的好氧反硝化反应器中取得活性污泥
样品
,
采用
SBR
反应器对活性污泥样品进行
1
个月的驯化
,
从装置中共分离纯化得到
5
株高
效好氧反硝化细菌
,
分别为
f1
、
f2
、
f3
、
f5
、
f7,
其
对总氮的去除率分别为
90
1
4%
、
91
1
2%
、
菌
wgy5
所代表的特征条带始终是反应器中的
优势菌群
,
称为常驻菌群
.
好氧反硝化细菌
d5
在试验前期生物量较低
,
这主要是由于好氧反
690
浙江大学学报
(
农业与生命科学版
)
亮
,
李春杰
,
等
)
.
denitrificationand
第
33
卷
Simultaneousnitrificationand
heterotrophicnitrificationin
94
1
6%
、
95
1
6%
、
97%,
表现出较好的总氮去除
能力
.
3
1
3
PCR
2
DGGE
图谱表明
,
在反应器运行的
不同时期
,
微生物群落结构发生动态演替
.2d
与
15d
的相似性为
47
1
62%,15d
与
30d
的相
似性最高为
72%,2d
与
30d
的相似性最低为
42
1
86%.
测序结果显示
,
在反应器稳定运行期
membranebioreactor[J].EnvironmentalScienceand
Technology(
环境科学与技术
),2006,29
(
1
)
:7
2
9,27.
(
inChinese
)
[7]
MoriyamaK,SatoK,HaradaY,
etal
.Simultaneous
biologicalremovalofnitrogenandphosphorususing
oxicanaerobicoxicprocess[J].
Technology,1990,22
(
78
)
:54
2
69.
[8]
PochanaK,ffactorsaffecting
simultaneousnitrificationanddenitrification
(
SND
)
[J].WaterScienceTechnology,1999,39
(
6
)
:55
2
71.
[9]
CasamayorEO,SchaferH,BanerasL,
etal
.
Identificationofspatiotemporaldifferencesbetween
microbialassemblagesfromtwoneighboringsulfurous
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