2024年4月20日发(作者：贰莉)
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实验七 测定细菌生长曲线
一、 实验目的
1. 了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时；
2. 学习液体培养基的配制以及接种方法；
3. 反复练习无菌操作技术；
4. 了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同；
5. 掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法
二、 实验原理
将一定量的细菌接种在液体培养基内，在一定条件下培养，可观察到细菌的生长繁
殖有一定的规律性，如以细菌的活菌数的对数作纵坐标，以培养时间作横坐标，可绘成
一条曲线，成为生长曲线（如图一）。
图一 微生物生长曲线示意图
单细胞微生物的发酵具有四个阶段，即Ⅰ调整期（延滞期）、Ⅱ对数期（生长旺盛
期）、Ⅲ平衡期（稳定期）、Ⅳ死亡期（衰亡期）。
生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的全过程的动态。不同的微生物有不同的生
长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。因此，测定微生物
的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。
测定微生物生长曲线的方法很多，有血球计数板法、平板菌落计数法、称重法和比
浊法等。本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可利用
分光光度计测定细菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。将所测得的光密度值（OD600）
与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。注意，由于光密度
表示的是培养液中的总菌数，包括活菌与死菌，因此所测定的生长曲线的衰亡期不明显。
从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G表示。其
计算公式为：
t
2
t
1
G
(lgW
2
lgW
1
)/lg2
式中t1和t2为所取对数期两点的时间；
W1和W2分别为相应时间测得的细胞含量（g/L）或OD。
三、 实验仪器、材料和用具
1. 实验材料:大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板；
2. 培养基:牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基
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3. 实验仪器:取液器(5000ul, 1000ul 各一支);培养箱, 摇床，722s分光光度计；
4. 实验用具:无菌1000ul吸头80个;无菌5000ul吸头2个;比色皿9个+共用参比杯一个.
四、 实验步骤
1. 准备菌种：将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡培养18h，另
外准备单菌落平板各1块
2. 分为三个小组：
第（1）小组
取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基, 37 ℃ 200rpm
取3.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃ 200rpm
取5.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃ 200rpm
第（2）小组
取一个大肠杆菌菌落接种到100ml培养基， 37 ℃ 200rpm
取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃ 110rpm
取1.0ml大肠杆菌接种到100ml培养基， 30 ℃ 200rpm
第（3）小组
取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 37 ℃ 200rpm
取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 30 ℃ 200rpm
取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 37 ℃ 110rpm
每培养一小时取样一次(2.5h,3.5h加测1次). 对照组测量起始pH,所有瓶子测量发酵
9h结束测pH.
3. 测量：选用600nm波长，以蒸馏水作为参比，开始培养前测定每组培养液的OD值
作为起始点。开始培养后，每小时吸取测定一次OD值。
五、 实验结果及分析
1. 实验数据：
表一 三个小组时间-OD数据
开始取样时间
结束取样时间
发酵时间
单菌落
37℃110rpm
大肠
30℃200rpm
杆菌
1.0mL
3.0mL
ODt
5.0mL
37℃200rpm
枯草30℃200rpm
杆菌
37℃110rpm
单菌落
大肠
OD=ODt-OD0
杆菌
37℃110rpm
30℃200rpm
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9:55
0
0.004
-0.010
-0.010
0.010
0.039
0.067
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-0.010
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3
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0.125
0.253
0.032
0.337
0.371
2024年4月20日发(作者：贰莉)
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实验七 测定细菌生长曲线
一、 实验目的
1. 了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时；
2. 学习液体培养基的配制以及接种方法；
3. 反复练习无菌操作技术；
4. 了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同；
5. 掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法
二、 实验原理
将一定量的细菌接种在液体培养基内，在一定条件下培养，可观察到细菌的生长繁
殖有一定的规律性，如以细菌的活菌数的对数作纵坐标，以培养时间作横坐标，可绘成
一条曲线，成为生长曲线（如图一）。
图一 微生物生长曲线示意图
单细胞微生物的发酵具有四个阶段，即Ⅰ调整期（延滞期）、Ⅱ对数期（生长旺盛
期）、Ⅲ平衡期（稳定期）、Ⅳ死亡期（衰亡期）。
生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的全过程的动态。不同的微生物有不同的生
长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。因此，测定微生物
的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。
测定微生物生长曲线的方法很多，有血球计数板法、平板菌落计数法、称重法和比
浊法等。本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可利用
分光光度计测定细菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。将所测得的光密度值（OD600）
与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。注意，由于光密度
表示的是培养液中的总菌数，包括活菌与死菌，因此所测定的生长曲线的衰亡期不明显。
从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G表示。其
计算公式为：
t
2
t
1
G
(lgW
2
lgW
1
)/lg2
式中t1和t2为所取对数期两点的时间；
W1和W2分别为相应时间测得的细胞含量（g/L）或OD。
三、 实验仪器、材料和用具
1. 实验材料:大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板；
2. 培养基:牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基
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3. 实验仪器:取液器(5000ul, 1000ul 各一支);培养箱, 摇床，722s分光光度计；
4. 实验用具:无菌1000ul吸头80个;无菌5000ul吸头2个;比色皿9个+共用参比杯一个.
四、 实验步骤
1. 准备菌种：将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡培养18h，另
外准备单菌落平板各1块
2. 分为三个小组：
第（1）小组
取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基, 37 ℃ 200rpm
取3.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃ 200rpm
取5.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃ 200rpm
第（2）小组
取一个大肠杆菌菌落接种到100ml培养基， 37 ℃ 200rpm
取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃ 110rpm
取1.0ml大肠杆菌接种到100ml培养基， 30 ℃ 200rpm
第（3）小组
取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 37 ℃ 200rpm
取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 30 ℃ 200rpm
取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 37 ℃ 110rpm
每培养一小时取样一次(2.5h,3.5h加测1次). 对照组测量起始pH,所有瓶子测量发酵
9h结束测pH.
3. 测量：选用600nm波长，以蒸馏水作为参比，开始培养前测定每组培养液的OD值
作为起始点。开始培养后，每小时吸取测定一次OD值。
五、 实验结果及分析
1. 实验数据：
表一 三个小组时间-OD数据
开始取样时间
结束取样时间
发酵时间
单菌落
37℃110rpm
大肠
30℃200rpm
杆菌
1.0mL
3.0mL
ODt
5.0mL
37℃200rpm
枯草30℃200rpm
杆菌
37℃110rpm
单菌落
大肠
OD=ODt-OD0
杆菌
37℃110rpm
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