2024年5月25日发(作者:公羊茜茜)
胃癌细胞HGC-27与SGC-7901体外增殖和黏附能力的比较
王婷婷;王玉巧;马佰菁;韩梅;林佳静;孙伯坚
【摘 要】目的 比较两株胃癌细胞HGC-27与SGC-7901的体外增殖和黏附能力.
方法 分别培养胃癌细胞HGC-27、SGC-7901,用噻唑蓝(MTT)比色实验和流式细
胞术(FCM)比较两种细胞的体外增殖能力;用同质黏附和异质黏附实验比较两种细
胞的体外黏附能力.结果 MTT比色实验绘制,生长曲线显示SGC-7901生长较
HCC-27慢;流式细胞术结果表明SGC-7901的增殖活性低于HGC-27(P<0.05);黏
附实验中SGC-7901同质黏附强于HGC-27,异质黏附弱于HGC-27(P<0.05).结论
胃癌细胞SGC-7901的体外增殖能力和异质黏附能力低于HGC-27,同质黏附能力
高于HGC-27,提示胃癌细胞HGC-27的转移能力可能强于SGC-7901.
【期刊名称】《宁夏医科大学学报》
【年(卷),期】2010(032)002
【总页数】3页(P169-171)
【关键词】胃癌细胞;HGC-27;SGC-7901;增殖;黏附
【作 者】王婷婷;王玉巧;马佰菁;韩梅;林佳静;孙伯坚
【作者单位】宁夏医科大学基础医学院病原生物学与免疫学系,银川,750004;宁夏
医科大学基础医学院病原生物学与免疫学系,银川,750004;宁夏医科大学基础医学
院病原生物学与免疫学系,银川,750004;宁夏医科大学基础医学院病原生物学与免
疫学系,银川,750004;宁夏医科大学基础医学院病原生物学与免疫学系,银
川,750004;宁夏医科大学基础医学院病原生物学与免疫学系,银川,750004
【正文语种】中 文
【中图分类】R73-37
胃癌是消化道高发的恶性肿瘤,发病率和死亡率均位于恶性肿瘤的前列[1]。虽然
临床上对胃癌可采取手术、放疗、化疗等综合治疗措施,但很多患者仍死于肿瘤的
侵袭及转移。侵袭性与转移能力是癌细胞区别于正常细胞的最基本的特征,也是导
致患者肿瘤复发、病情恶化而最终死亡的病理基础,因此侵袭转移是影响胃癌预后
的最重要的因素[2-3]。胃癌的转移机制尚不清楚,可能与缺氧、微环境变化等多
种因素有关[4-6]。本文选取两株胃癌细胞比较其体外生长和黏附特性,为下一步
研究胃癌的转移机制奠定基础。
1 材料与方法
1.1 试剂与材料 胃癌细胞HGC-27、SGC-7901均购自中科院上海细胞库。
RPMI-1640培养基购自GIBICO公司,标准胎牛血清购自杭州四季青公司,胰蛋白酶
购自Amresco公司,96孔板及24孔培养板均购自COSTAR公司。
1.2 方法
1.2.1 细胞培养 SGC-7901培养于含 10% 胎牛血清、50μL·100 mL-1青霉素、
125μL·100 mL-1庆大霉素的RPMI-1640培养液中; HGC-27 培养于含 10% 胎
牛血清、50μL·100 mL-1青霉素、125μL·100 mL-1庆大霉素的MEM培养液中,
细胞均置于37℃,5% CO2 的孵箱中生长。
1.2.2 MTT比色法检测两种细胞的体外增殖能力 两株细胞生长于对数生长期后,
分别用0.25%胰酶消化后制成单细胞悬液,以1.0×103个·孔-1接种于96孔板中,
200μL·孔-1,设4个复孔,37℃,5% CO2 培养。分别培养1、2、3、4、5、6d
和7d计数细胞。结束培养前4h,每孔加入MTT,孵育4h后终止培养,弃去上
清液,每孔加入150μL DMSO,充分震荡混匀10min。在490nm波长的酶联免
疫检测仪上测定各孔吸光度值,以时间为横轴,吸光度值(OD)为纵轴,绘制细胞
生长曲线。
1.2.3 流式细胞术检测两种细胞的DNA倍体和细胞周期 对数生长期细胞,分别用
0.25%胰酶消化,调整细胞密度为1×106个·mL-1。以正常人外周血单个核细胞
做对照,用流式细胞仪在488nm激发光检测DNA含量,MCYCLE软件分析细胞
周期,以S期细胞所占百分比(SPF)表示细胞的增殖活性:
1.2.4 同质黏附实验 细胞以12.5×104个·mL-1接种于24孔培养板中,1mL·孔-1,
每株细胞设3个复孔,待生长至铺满孔底不留空隙,再在其上加入1.0×105
个·mL-1的相应细胞,200μL·孔-1,分别于培养60min和90min后,吸上清,
并以生理盐水洗涤未充分黏附的细胞,计数上清和洗涤液中的细胞数,即未黏附的
细胞。黏附细胞百分比(%)=(细胞总数-未黏附的细胞)/细胞总数×100%。
1.2.5 异质黏附实验 以1.0×105个·mL-1接种于24孔培养板中,200μL·孔-1,
每株细胞设3个复孔,培养3h后,吸上清,并以生理盐水洗涤未充分黏附的细胞,
计数上清和洗涤液中的细胞数,即未黏附的细胞。黏附的细胞百分比(%)=(细胞总
数-未黏附的细胞)/细胞总数×100%。
1.3 统计学方法 采用SPSS 13.0软件进行统计分析,数据以均数±标准差表示,计
量资料两两比较采用两样本对数t检验,检验水平为0.05。
2 结果
2.1 MTT比色法检测两株细胞的体外增殖能力 用两株细胞连续培养7d的吸光度
值绘制生长曲线(图1)。结果显示,SGC-7901的增殖速度较HGC-27慢,二者差
异有统计学意义。
图1 MTT比色法绘制两株胃癌细胞的生长曲线
2.2 流式细胞术检测细胞DNA倍体和细胞周期 经流式细胞术检测,两株均为异倍
体细胞(图2)。SGC-7901的SPF低于HGC-27,且G0/G1比例高于HGC-
27,P<0.05。见表1。
图2 流式细胞术检测两株胃癌细胞周期
表1 流式细胞术测定两株胃癌细胞的周期分布细胞种类G0/G1G2/MSPFHGC-
2759.0±2.19.5±1.031.5±1.7SGC-790171.3±3.7∗5.2±2.2∗23.5±1.8∗
与胃癌细胞HGC-27株比较*P<0.05
2.3 两株胃癌细胞的同质黏附能力及异质黏附能力比较
两株胃癌细胞在同质黏附介质上分别生长60和90min时,SGC-7901比HGC-
27黏附细胞数高,差异有统计学意义(P<0.05)。两株胃癌细胞在24孔板上生长
3h后,SGC-7901比HGC-27的异质黏附能力弱(P<0.05)。HGC-27和SGC-
7901的黏附细胞数见表2。
表2 两株胃癌细胞黏附能力的比较细胞种类同质黏附实验细胞数/×103个
60min90min异质黏附实验细胞数/×103个HGC-
276.97±0.077.71±0.198.98±0.15SGC-
79017.67±0.12∗8.05±0.05∗8.32±0.09∗
与胃癌细胞HGC-27株比较*P<0.05
3 讨论
肿瘤的恶性程度与其细胞的生物学特性密切相关[7],恶性程度越高的肿瘤细胞体
外生长增殖和迁徙转移能力越强;反之,恶性程度低的肿瘤细胞的体外生长增殖和
迁徙转移能力越弱。机体肿瘤转移的过程中,肿瘤细胞需脱落并侵入基质,这时同
质黏附能力下降,运动能力增加;肿瘤细胞到达特定的继发组织或器官时,通过异
质黏附作用锚定在血管和周围组织,最终形成转移。
本实验采用了两株胃癌细胞:HGC-27来源于未分化胃黏液腺癌,SGC-7901来
源于淋巴结转移的胃腺癌[8]。在MTT比色法检测两种细胞的体外增殖能力的实验
中,在连续培养的7d内,两株细胞的数量均逐渐增多,但从第2天开始,HGC-
27的增殖速度快于SGC-7901。用流式细胞术检测两株细胞的DNA倍体和细胞
周期以比较增殖活性的高低,结果表明两株均为异倍体细胞;SGC-7901的SPF
低于HGC-27,且G0/G1比例高于HGC-27,表明SGC-7901的增殖活性低于
HGC-27。在同质黏附实验中,不论生长60min还是90min,SGC-7901的同质
黏附力高于HGC-27,由于同质黏附能力高低在一定程度上反映了肿瘤细胞脱离
肿瘤能力的强弱,故HGC-27比SGC-7901更易从肿瘤细胞团中脱离,从而发生
转移。在异质黏附实验中,SGC-7901的异质黏附力低于HGC-27,由于异质黏
附能力高低在一定程度上反映了癌症细胞与其他组织、细胞黏附能力的强弱,因此
SGC-7901比HGC-27更不易与其他组织、细胞黏附,可能不易发生转移。
本实验从增殖和黏附能力检测了SGC-7901和HGC-27的差异,显示胃癌细胞
SGC-7901的体外增殖能力和异质黏附能力低于HGC-27,同质黏附能力高于
HGC-27,为下一步研究影响胃癌细胞转移的相关分子机制打下基础。
【相关文献】
[1] Ohgaki H,Matsukura N. Stomach cancer world cancer report[M]. Lyon: IARC
Press,2003:197.
[2] 齐菲菲,贺福初,姜颖. 肿瘤转移研究的现状与趋势[J]. 生物化学与生物物理进
展,2009,36(10):1244-1251.
[3] Zeng ZR,Hu PJ,Hu S,et al. Association of interleukin 1B gene polymorphism and gastric
cancers in high and low prevalence regions in China [J].Gut,2003,52(12):1684-1689.
[4] Cecilia Sahlgren,Maria V,Gustafsson,Shaobo Jin,et al. Notch signaling mediates
hypoxia-induced tumor cell migration and invasion[J]. PNAS,2008,105(17):692-697.
[5] Shipitsin M,Polyak K. The cancer stem cell hypothesis: in search of
definitions,markers,and relevance[J]. Lab Invest,2008,88(5): 459-463.
[6] 张磊,王效民. 基质细胞与肿瘤发生发展之间的关系[J]. 中国癌症杂志,2009,19(10): 788-792.
[7] Song IH. Cancer metastasis and metastasis suppressors[J]. Korean J
Gastroenterol,2004,43:1-7.
[8] 林超鸿,富志民,刘亚伦,等. 人体胃癌细胞株SGC-7901的建立[J].肿瘤,1981,2(1) :1-3.
2024年5月25日发(作者:公羊茜茜)
胃癌细胞HGC-27与SGC-7901体外增殖和黏附能力的比较
王婷婷;王玉巧;马佰菁;韩梅;林佳静;孙伯坚
【摘 要】目的 比较两株胃癌细胞HGC-27与SGC-7901的体外增殖和黏附能力.
方法 分别培养胃癌细胞HGC-27、SGC-7901,用噻唑蓝(MTT)比色实验和流式细
胞术(FCM)比较两种细胞的体外增殖能力;用同质黏附和异质黏附实验比较两种细
胞的体外黏附能力.结果 MTT比色实验绘制,生长曲线显示SGC-7901生长较
HCC-27慢;流式细胞术结果表明SGC-7901的增殖活性低于HGC-27(P<0.05);黏
附实验中SGC-7901同质黏附强于HGC-27,异质黏附弱于HGC-27(P<0.05).结论
胃癌细胞SGC-7901的体外增殖能力和异质黏附能力低于HGC-27,同质黏附能力
高于HGC-27,提示胃癌细胞HGC-27的转移能力可能强于SGC-7901.
【期刊名称】《宁夏医科大学学报》
【年(卷),期】2010(032)002
【总页数】3页(P169-171)
【关键词】胃癌细胞;HGC-27;SGC-7901;增殖;黏附
【作 者】王婷婷;王玉巧;马佰菁;韩梅;林佳静;孙伯坚
【作者单位】宁夏医科大学基础医学院病原生物学与免疫学系,银川,750004;宁夏
医科大学基础医学院病原生物学与免疫学系,银川,750004;宁夏医科大学基础医学
院病原生物学与免疫学系,银川,750004;宁夏医科大学基础医学院病原生物学与免
疫学系,银川,750004;宁夏医科大学基础医学院病原生物学与免疫学系,银
川,750004;宁夏医科大学基础医学院病原生物学与免疫学系,银川,750004
【正文语种】中 文
【中图分类】R73-37
胃癌是消化道高发的恶性肿瘤,发病率和死亡率均位于恶性肿瘤的前列[1]。虽然
临床上对胃癌可采取手术、放疗、化疗等综合治疗措施,但很多患者仍死于肿瘤的
侵袭及转移。侵袭性与转移能力是癌细胞区别于正常细胞的最基本的特征,也是导
致患者肿瘤复发、病情恶化而最终死亡的病理基础,因此侵袭转移是影响胃癌预后
的最重要的因素[2-3]。胃癌的转移机制尚不清楚,可能与缺氧、微环境变化等多
种因素有关[4-6]。本文选取两株胃癌细胞比较其体外生长和黏附特性,为下一步
研究胃癌的转移机制奠定基础。
1 材料与方法
1.1 试剂与材料 胃癌细胞HGC-27、SGC-7901均购自中科院上海细胞库。
RPMI-1640培养基购自GIBICO公司,标准胎牛血清购自杭州四季青公司,胰蛋白酶
购自Amresco公司,96孔板及24孔培养板均购自COSTAR公司。
1.2 方法
1.2.1 细胞培养 SGC-7901培养于含 10% 胎牛血清、50μL·100 mL-1青霉素、
125μL·100 mL-1庆大霉素的RPMI-1640培养液中; HGC-27 培养于含 10% 胎
牛血清、50μL·100 mL-1青霉素、125μL·100 mL-1庆大霉素的MEM培养液中,
细胞均置于37℃,5% CO2 的孵箱中生长。
1.2.2 MTT比色法检测两种细胞的体外增殖能力 两株细胞生长于对数生长期后,
分别用0.25%胰酶消化后制成单细胞悬液,以1.0×103个·孔-1接种于96孔板中,
200μL·孔-1,设4个复孔,37℃,5% CO2 培养。分别培养1、2、3、4、5、6d
和7d计数细胞。结束培养前4h,每孔加入MTT,孵育4h后终止培养,弃去上
清液,每孔加入150μL DMSO,充分震荡混匀10min。在490nm波长的酶联免
疫检测仪上测定各孔吸光度值,以时间为横轴,吸光度值(OD)为纵轴,绘制细胞
生长曲线。
1.2.3 流式细胞术检测两种细胞的DNA倍体和细胞周期 对数生长期细胞,分别用
0.25%胰酶消化,调整细胞密度为1×106个·mL-1。以正常人外周血单个核细胞
做对照,用流式细胞仪在488nm激发光检测DNA含量,MCYCLE软件分析细胞
周期,以S期细胞所占百分比(SPF)表示细胞的增殖活性:
1.2.4 同质黏附实验 细胞以12.5×104个·mL-1接种于24孔培养板中,1mL·孔-1,
每株细胞设3个复孔,待生长至铺满孔底不留空隙,再在其上加入1.0×105
个·mL-1的相应细胞,200μL·孔-1,分别于培养60min和90min后,吸上清,
并以生理盐水洗涤未充分黏附的细胞,计数上清和洗涤液中的细胞数,即未黏附的
细胞。黏附细胞百分比(%)=(细胞总数-未黏附的细胞)/细胞总数×100%。
1.2.5 异质黏附实验 以1.0×105个·mL-1接种于24孔培养板中,200μL·孔-1,
每株细胞设3个复孔,培养3h后,吸上清,并以生理盐水洗涤未充分黏附的细胞,
计数上清和洗涤液中的细胞数,即未黏附的细胞。黏附的细胞百分比(%)=(细胞总
数-未黏附的细胞)/细胞总数×100%。
1.3 统计学方法 采用SPSS 13.0软件进行统计分析,数据以均数±标准差表示,计
量资料两两比较采用两样本对数t检验,检验水平为0.05。
2 结果
2.1 MTT比色法检测两株细胞的体外增殖能力 用两株细胞连续培养7d的吸光度
值绘制生长曲线(图1)。结果显示,SGC-7901的增殖速度较HGC-27慢,二者差
异有统计学意义。
图1 MTT比色法绘制两株胃癌细胞的生长曲线
2.2 流式细胞术检测细胞DNA倍体和细胞周期 经流式细胞术检测,两株均为异倍
体细胞(图2)。SGC-7901的SPF低于HGC-27,且G0/G1比例高于HGC-
27,P<0.05。见表1。
图2 流式细胞术检测两株胃癌细胞周期
表1 流式细胞术测定两株胃癌细胞的周期分布细胞种类G0/G1G2/MSPFHGC-
2759.0±2.19.5±1.031.5±1.7SGC-790171.3±3.7∗5.2±2.2∗23.5±1.8∗
与胃癌细胞HGC-27株比较*P<0.05
2.3 两株胃癌细胞的同质黏附能力及异质黏附能力比较
两株胃癌细胞在同质黏附介质上分别生长60和90min时,SGC-7901比HGC-
27黏附细胞数高,差异有统计学意义(P<0.05)。两株胃癌细胞在24孔板上生长
3h后,SGC-7901比HGC-27的异质黏附能力弱(P<0.05)。HGC-27和SGC-
7901的黏附细胞数见表2。
表2 两株胃癌细胞黏附能力的比较细胞种类同质黏附实验细胞数/×103个
60min90min异质黏附实验细胞数/×103个HGC-
276.97±0.077.71±0.198.98±0.15SGC-
79017.67±0.12∗8.05±0.05∗8.32±0.09∗
与胃癌细胞HGC-27株比较*P<0.05
3 讨论
肿瘤的恶性程度与其细胞的生物学特性密切相关[7],恶性程度越高的肿瘤细胞体
外生长增殖和迁徙转移能力越强;反之,恶性程度低的肿瘤细胞的体外生长增殖和
迁徙转移能力越弱。机体肿瘤转移的过程中,肿瘤细胞需脱落并侵入基质,这时同
质黏附能力下降,运动能力增加;肿瘤细胞到达特定的继发组织或器官时,通过异
质黏附作用锚定在血管和周围组织,最终形成转移。
本实验采用了两株胃癌细胞:HGC-27来源于未分化胃黏液腺癌,SGC-7901来
源于淋巴结转移的胃腺癌[8]。在MTT比色法检测两种细胞的体外增殖能力的实验
中,在连续培养的7d内,两株细胞的数量均逐渐增多,但从第2天开始,HGC-
27的增殖速度快于SGC-7901。用流式细胞术检测两株细胞的DNA倍体和细胞
周期以比较增殖活性的高低,结果表明两株均为异倍体细胞;SGC-7901的SPF
低于HGC-27,且G0/G1比例高于HGC-27,表明SGC-7901的增殖活性低于
HGC-27。在同质黏附实验中,不论生长60min还是90min,SGC-7901的同质
黏附力高于HGC-27,由于同质黏附能力高低在一定程度上反映了肿瘤细胞脱离
肿瘤能力的强弱,故HGC-27比SGC-7901更易从肿瘤细胞团中脱离,从而发生
转移。在异质黏附实验中,SGC-7901的异质黏附力低于HGC-27,由于异质黏
附能力高低在一定程度上反映了癌症细胞与其他组织、细胞黏附能力的强弱,因此
SGC-7901比HGC-27更不易与其他组织、细胞黏附,可能不易发生转移。
本实验从增殖和黏附能力检测了SGC-7901和HGC-27的差异,显示胃癌细胞
SGC-7901的体外增殖能力和异质黏附能力低于HGC-27,同质黏附能力高于
HGC-27,为下一步研究影响胃癌细胞转移的相关分子机制打下基础。
【相关文献】
[1] Ohgaki H,Matsukura N. Stomach cancer world cancer report[M]. Lyon: IARC
Press,2003:197.
[2] 齐菲菲,贺福初,姜颖. 肿瘤转移研究的现状与趋势[J]. 生物化学与生物物理进
展,2009,36(10):1244-1251.
[3] Zeng ZR,Hu PJ,Hu S,et al. Association of interleukin 1B gene polymorphism and gastric
cancers in high and low prevalence regions in China [J].Gut,2003,52(12):1684-1689.
[4] Cecilia Sahlgren,Maria V,Gustafsson,Shaobo Jin,et al. Notch signaling mediates
hypoxia-induced tumor cell migration and invasion[J]. PNAS,2008,105(17):692-697.
[5] Shipitsin M,Polyak K. The cancer stem cell hypothesis: in search of
definitions,markers,and relevance[J]. Lab Invest,2008,88(5): 459-463.
[6] 张磊,王效民. 基质细胞与肿瘤发生发展之间的关系[J]. 中国癌症杂志,2009,19(10): 788-792.
[7] Song IH. Cancer metastasis and metastasis suppressors[J]. Korean J
Gastroenterol,2004,43:1-7.
[8] 林超鸿,富志民,刘亚伦,等. 人体胃癌细胞株SGC-7901的建立[J].肿瘤,1981,2(1) :1-3.