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白术和黄芪种子试管内萌发试验研究

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2024年3月20日发(作者:司马梦露)

湖南农业科学2010,(5):7-8,11 Hunan A cultural Sciences 

白术和黄芪种子试管内萌发试验研究 

洪森荣,尹明华,叶利民,李玲 

(上饶师范学院生命科学学院,江西上饶334001) 

摘 要:采用不同消毒方式和培养基对白术和黄芪种子试管内萌发进行探究。实验结果表明:白术种子最佳消毒方式为75%酒 

精消毒30 S再用O.I%HgCl 消毒5 min;白术种子试管内萌发的适宜培养基为l,2 Ms。黄芪种子最佳消毒方式为75%酒精消毒 

20 S再用0.1%HgCl 消毒lO~15 arin;黄芪种子试管内萌发的适宜培养基为半固体培养基。 

关键词:白术;黄芪;试管内萌发 

中图分类号:¥336 文献标识码:A 文章编号:1006—060X(2010)05—0007—02 

h Vitro Germination Experiment of Seeds of AtracOylodes macrocephala Koidz. 

and Astragalus membranaceus(Fish)Bge. 

HONG Sen-rong,YIN Ming-hua,YE Li—min,LI Ling 

(College ofLife Sciences,Shangrao Normal University,Shangrao 334001,脓cJ 

Abstract:The effects of diferent culture media and disinfection methods on in vitro germination of seeds of 

Atractylodes macrocephala Koidz.and Astragalus membraglztcet2¥(Fisch.)Bge.were studied.The results showed that the 

optimum disinfection method for seeds of A tractylodes macrocephala Koidz.was firstly treated with 75%ethanol for 30 S 

nad then treated witll 0.1%HgC12 for 5 min;the best culture medium for Atractylodes macrocephala Koidz.seeds was 112 

MS;the optimum disifnection method for seeds of Astragalus玎 e玎 n田lc ce (Fisch.、Bge.was firslty treated with 75% 

ethanol for 20 S and then treated with O.1%HgCI2 for 10 min to 15 min;the best culture medium for seeds ofAstragalus 

membroltA1cell ̄(Fisch.)Bge.Was semisolid medium. 

Key words:Atractylodes macrocephala Koidz.;Astragalus,m m6r 叽6【ce“s(Fisch.)Bge.;in vitro germination 

白术(A tractylodes macrocephala Koidz.)系菊科 

1.1试验材料 

植物,其干燥根茎具有健脾益气、燥湿利水、止汗安 

白术种子和黄芪种子购于浙江省景宁县梧桐 

胎之效,主治脾虚食少、腹胀、水肿、胎动不安等症【l】。 

乡药材专业合作社,原产地为安徽毫州。 

栽培中常用种子或块根繁殖,但都难以在短期内大 

1.2试验方法 

面积种植121,黄芪(Astragalus membranaceus(Fisch.) 

1.2.1 不同消毒方式对白术种子萌发的影响 配 

Bge.)属于豆科黄芪属的多年生草本植物[31。黄芪具 

置112 MS培养基(大量元素减半,其他基本成分不 

有增强机体免疫力功能、强心降压、降血糖、利尿、 

变),加入30 g/L蔗糖和7.5 g/L琼脂,pH值调为 

抗病毒等作用,国内外市场对其需要量越来越大 。 

5.8~6.0。用聚乙烯封口膜封好,贴上标签。放入高压 

目前对于黄芪的研究主要集中于其多糖、黄酮等有 

灭菌锅内灭菌(温度:120 ̄C,时间:20 min)。灭菌冷 

效成分的提取及其应用价值的研究,对黄芪组织培 

却后备用。挑选成熟饱满的白术种子,分成3组,放 

养的研究报道较少 。初步研究了白术和黄芪种子 

人超净工作台内依次进行消毒,消毒方式设置如 

的试管内萌发,以期为白术和黄芪无菌体系建立、 

下:(1)用75%酒精消毒30 S,无菌水浸洗1次;再 

快速繁殖以及白术和黄芪的产业化生产提供理论 

用0.1%HgC1 消毒1 min,无菌水浸洗1次。(2)用 

依据。 

75%酒精消毒30 S,无菌水浸洗1次;再用0.1% 

1材料与方法 

HgC1 消毒5 min,无菌水浸洗1次。(3)用75%酒 

精消毒30 S,无菌水浸洗1次;再用0.1%HgC1 消 

收稿日期:2010—01—20 

毒10 min,无菌水浸洗1次。材料消毒以后,接种 

基金项目:2009年江西省高校省级教改项目(JXJG一09—16— 

在112 MS培养基上,放人光照培养箱中培养,培养 

10) 

作者简介:洪森荣(1974一),男,江西永新县人,硕士,主要从 

条件为:光照时间12 h/d,光照强度1 200~1 400 

事植物生物技术方面的研究。 

1)【,温度(25±1)oc,湿度60%一80%。每天观察种子萌 

通讯作者:李玲 

发情况并记录种子萌芽、生根、出苗的时间以及种 

湖南农业科学 第5期 

子污染情况,45 d时统计白术种子的萌发率、污染 

率。萌发率=(出芽的种子粒数/总接种数)×100%, 

污染率=(污染粒数/总接种粒数)x100%。 

1.2.2培养基无机盐水平对白术种子萌发的影响 

挑选成熟饱满的白术种子,放人超净工作台内进行 

消毒,种子消毒方法用75%酒精消毒30 S,无菌水 

浸洗1次;再用0.1%HgC1 消毒5 rain,无菌水浸 

洗1次。材料消毒以后接种在不同无机盐水平的培 

养基上,培养基设置如下:(1)MS;(2)1/2 MS;(3)1/4 

MS。培养基中加入蔗糖30 g/L、琼脂7.5 g/L,pH调节 

为5.8~6.0,用封口膜封口,高压灭菌锅中灭菌。每个 

瓶中接人5-6粒种子不等。接种后放入光照培养箱 

中培养。每天观察种子萌发、生根情况,45 d时统计 

萌发率。 

1.2.3不同消毒方式和培养基类型对黄芪种子试 

管内萌发的影响配置固体和半固体培养基,固体 

培养基中加入琼脂7.5 g/L,半固体培养基加入琼脂 

3.5 g/L。封口膜封口并灭菌。挑选饱满黄芪种子放 

人工作台内消毒,消毒方式设置如下:(1)用75%酒 

精消毒20 s,无菌水浸洗1次;再用0.1%HgC1 消 

毒5~8 min,无菌水浸洗1次。种子消毒后接人固体 

和半固体培养基中;(2)用75%酒精消毒20 S,无菌 

水浸洗i次;再用0.1%HgC1:消毒l0~15 min,无 

菌水浸洗1次。种子消毒后接人固体和半固体培养 

基中。每支试管接人3~10粒黄芪种子不等,接种后 

放人光照培养箱中培养。每天观察黄芪种子发芽情 

况。15 d时统计其萌发率。 

1.3数据处理 

试验为单因子试验,数据均取平均值。 

2结果与分析 

2.1 消毒方式对白术种子萌发的影响 

种子接入培养基4 d后,就出现种子污染情 

况,用75%酒精消毒30 S再用0.1%HgC12消毒1 

min的种子最先出现污染,长出白色绒毛状菌体, 

圆形菌落,菌落随时间不断扩大,最后布满整瓶,菌 

体由白色变为墨绿色,最后变成黑色。接人的种子 

有轻微的褪色,种子在逐渐胀大,但30 d后,无一 

粒种子萌发,45 d时开始有种子发芽并生根。由表 

1可知用0.1%HgC1 消毒时间越短,白术污染率越 

高,但种子消毒时问过长或过短对白术种子的萌发 

都不利。因此,白术种子最佳的消毒方式是:75%酒 

精消毒30 S再用0.1%HgC12消毒5 arin。 

2.2无机盐水平对白术种子萌发的影响 

表1消毒方式对白术种子萌发和污染的影响(45 d) 

白术种子接到不同无机盐水平培养基上,有轻 

微的褪色,种子也有一定胀大,但一直没有萌发迹 

象,到45 d时开始出现种子萌发。无机盐浓度过低 

对白术种子萌发不利。无机盐水平为1/4 MS时,种 

子萌发率为0;无机盐水平为MS和1/2 MS时,白 

术种子萌发率相对较高,分别为3.5%和3.7%,总体 

上白术种子在试管内的萌发率较低。 

2.3 消毒方式和培养基类型对黄芪种子试 

管内萌发的影响 

黄芪种子培养2 d后,用0.1%HgC1 消毒5 

min的种子接到半固体培养基上的最先有种子发 

芽,4 d后,其他种子也有发芽,萌发情况统计如表 

2所示,从表2中可知,半固体培养基中种子萌发 

率高于固体培养基,用0.1%HgC1 消毒1O一15 min 

对黄芪种子适合。 

表2消毒方式和培养基类型对黄芪种子 

试管内萌发的影响(15 d) 

消毒献 接种数萌发数萌发率 

(个) (粒) (%) 

固体75%酒精20 s+0.1%HgCi2 5~8 min 12 

I 8.3 

固体75%酒精20 s+0.1%HgCl2 1O~15 min 22 

5 22.7 

半固体75%酒精20 s+0.1%Hscl2 5-8 min 28 

7 27.8 

半固体75%酒精20 s+0.1%ngC12 lO~15 min 6 

2 33-3 

3讨论 

本试验对于白术萌发的初步研究表明,用 

0.1%HgCI:对白术消毒5 min的消毒效果最好,污 

染率较低。但1/2 MS培养基上的种子萌发率仅为 

3.7%。因此,在本试验中,白术种子总的萌发率较 

低,究其原因可能有以下几点:首先是因为白术种 

子外表皮有一层茸毛,如果消毒液没有完全浸透种 

子,茸毛中的细菌无法杀死,种子易污染,从而影响 

种子萌发。其次是因为种子体型较大,种子萌发需 

要吸收一定量的水分通过吸胀阶段才能萌发,本试 

验采用固体培养基水分不足,导致实验后期培养基 

干裂,种子无法吸水导致萌发率低。另外可能是因 

为本试验所购买的白术种子本身活力低,萌发率不 

高。但李慧[21把白术种子在流水中冲4~6 h,剥去种 

皮,用0.2%HgC1 浸泡20 min后,(下转第11页) 

第5期 陈星等:细菌总RNA提取方法的研究进展 

器皿,塑料制品和电泳槽等器材经常会有RNase的 

公司开发研制的ABI PRISMTM 6100核酸提取仪。 

污染。玻璃器皿,研钵等使用前需要在1 80 ̄(2下干烤 这是一个小型、多用途、快速而又经济的核酸纯化 

8 h或更长时间删;离心管等塑料制品可用氯仿浸泡 

平台,半个小时即可完成96个样品的纯化工作,并 

过夜后用灭过菌的l%的DEPC(焦炭酸二乙酯)水 

且可纯化来自多种生物样本的总RNA和基因组 

冲洗或直接用DEPC水浸泡,装满水的塑料制品需 

DNA[2]。这种自动核酸提取仪也在不断的出现和更 

要放置2 h以上,然后在l2l℃下灭菌30 min;用于 新,越来越多的公司开始研发和生产,这种仪器也 

凝胶电泳的电泳槽需要用去污剂清洗后,装满双氧 已经用于很多公司和机构,但目前对于大多数高校 

水放置10 rain后再1%的DEPC水彻底冲洗后才 和科研机构而言还是很难实现此条件的。 

能使用。 

RNA的提取是分子生物学研究的基础,RNA 

4.2.2实验人员的污染进行提取RNA实验时, 

的质量好坏直接影响下游研究结果的准确与否。随 

实验人员自身也是重要的RNase污染源。在准备和 

着科学技术的发展,RNA的提取将不断向着快捷、 

进行RNA提取实验时,需带一次性手套,在实验过 

准确和自动化的方向发展。 

程中接触了可能带有RNase的物品时,要更换手 

套,所以在整个实验过程中要勤换手套。另外,空气 

参考文献: 

和液体中也会有RNase,所以实验过程中要带口 

[11 Junhui L,Chuanhong T.A simple,rapid and effective method 

罩,尽量不说话,并减少实验区域的人员走动。 

for total RNA extraction from Lentinula edodes fJ].Biotechnol 

4.2.3 实验试剂的污染实验中用到的各种试剂, 

Lett.,2006,(28):1193—1197. 

[2】庞昕,周冬生,杨瑞馥.细菌mRNA的提取方法 .生物技 

也是重要的RNase污染源。在配置所用试剂时,要 

术通报,2003,(1):3O一34. 

使用经过处理的器皿,并且用灭过菌的1%的DE— 

【3】陈晖,何海福.植物组织总RNA提取方法的研究进展『J】.甘 

PC水来配置;试剂使用次数多了,可能会被RNase 

肃农业,2006,(8):228. 

污染,所以尽量做到现配现用。 

【4】杨占军,谷守琴,张健.几种植物组织总RNA提取方法的特 

点及疑难对策叨.安徽农业科学,2009,37(18):8341—8342. 

5 提取技术的发展前景 

[5 5】Chomczynski P,Sacchi N.Single-step method of RNA isolation 

目前,国内外有很多专门用于提取细菌RNA的 

by acid guanidinium thiocyanate—phenol—chloroform extraction『J]. 

Anal Biochem.1987。(162):156—159. 

方法,这些方法可以分为两大类:一类是依据特殊的 

[6 Si6]un C T,Beow C Y.DNA,RNA,and Protein Extraction:The 

溶液来提取RNA(如TRIZOL法);另一类是依据离 

Past and The Present[J].Journal of Biomedicine and Biotechnolo— 

心柱,如硅化膜离心柱(Promega SV Total RNA Iso— 

gY,2009,(11):1-10. 

lation System)等。这些方法大多数被开发成商业的 

【7】周秦,黄有军,曾燕如,等.山核桃胚和胚乳总RNA的提取 

试剂盒,进而简化分子生物学的提取工艺[61。 

与eDNA的合成『JJ。浙江林业科技,2009,(1):39—42. 

当前国际上还出现了自动核酸提取仪,如ABI 

(责任编辑:石君) 

(上接第8页)白术种子萌发率很高。本试验也表 

【3】伍春莲.黄芪愈伤组织的培养及蛋白质含量的测定啪.西华师 

明,培养基中添加琼脂量的多少对黄芪种子的萌发 

范大学学报,2009,30(2):138—139. 

有影响,加入琼脂量少的半固体培养基,黄芪种子 

『41暴宪斌,沈俊兰.黄芪的药理作用及临床研究进展啪.山西中 

萌发率高,而添加琼脂量多的固体培养基,培养基 

医,2006,22(6):48—49. 

[5】陈兰兰,高山林,赵慧娜.蒙古黄芪组织培养及同源四倍体的 

易硬化,影响了养分和水分的吸收,导致黄芪种子 

诱导与鉴定[J1.药物生物技术,2006,13(6):413—417. 

萌发率低。因此,采取半固体培养基对于黄芪种子 

【6】攀锐锋,梁冰,李海燕.黄芪属植物生物学特性及组织培养 

萌发有利。本试验结果可以为白术和黄芪试管苗无 

技术研究进展【J】.东北农业大学学报,2006,(2):32—35. 

菌体系的建立提供理论依据。 

【7】包英华,苏格尔.蒙古黄芪不同外植体愈伤组织中黄芪甲甙含 

量比较『J].蒙古大学学报,2003,(4):78—80. 

参考文献 

f8】王忠.植物生理学[M】.北京:中国农业出版社.2002.212— 

【1】彭晓波.白术的炮制与应用fJ1.中国现代药物应用,2009,3 

2】3. 

(21):115~116. 

[2]李慧.白术的组织培养【JJ.特种经济动植物,2002,(7):23—24. 

(责任编辑:卢红玲) 

2024年3月20日发(作者:司马梦露)

湖南农业科学2010,(5):7-8,11 Hunan A cultural Sciences 

白术和黄芪种子试管内萌发试验研究 

洪森荣,尹明华,叶利民,李玲 

(上饶师范学院生命科学学院,江西上饶334001) 

摘 要:采用不同消毒方式和培养基对白术和黄芪种子试管内萌发进行探究。实验结果表明:白术种子最佳消毒方式为75%酒 

精消毒30 S再用O.I%HgCl 消毒5 min;白术种子试管内萌发的适宜培养基为l,2 Ms。黄芪种子最佳消毒方式为75%酒精消毒 

20 S再用0.1%HgCl 消毒lO~15 arin;黄芪种子试管内萌发的适宜培养基为半固体培养基。 

关键词:白术;黄芪;试管内萌发 

中图分类号:¥336 文献标识码:A 文章编号:1006—060X(2010)05—0007—02 

h Vitro Germination Experiment of Seeds of AtracOylodes macrocephala Koidz. 

and Astragalus membranaceus(Fish)Bge. 

HONG Sen-rong,YIN Ming-hua,YE Li—min,LI Ling 

(College ofLife Sciences,Shangrao Normal University,Shangrao 334001,脓cJ 

Abstract:The effects of diferent culture media and disinfection methods on in vitro germination of seeds of 

Atractylodes macrocephala Koidz.and Astragalus membraglztcet2¥(Fisch.)Bge.were studied.The results showed that the 

optimum disinfection method for seeds of A tractylodes macrocephala Koidz.was firstly treated with 75%ethanol for 30 S 

nad then treated witll 0.1%HgC12 for 5 min;the best culture medium for Atractylodes macrocephala Koidz.seeds was 112 

MS;the optimum disifnection method for seeds of Astragalus玎 e玎 n田lc ce (Fisch.、Bge.was firslty treated with 75% 

ethanol for 20 S and then treated with O.1%HgCI2 for 10 min to 15 min;the best culture medium for seeds ofAstragalus 

membroltA1cell ̄(Fisch.)Bge.Was semisolid medium. 

Key words:Atractylodes macrocephala Koidz.;Astragalus,m m6r 叽6【ce“s(Fisch.)Bge.;in vitro germination 

白术(A tractylodes macrocephala Koidz.)系菊科 

1.1试验材料 

植物,其干燥根茎具有健脾益气、燥湿利水、止汗安 

白术种子和黄芪种子购于浙江省景宁县梧桐 

胎之效,主治脾虚食少、腹胀、水肿、胎动不安等症【l】。 

乡药材专业合作社,原产地为安徽毫州。 

栽培中常用种子或块根繁殖,但都难以在短期内大 

1.2试验方法 

面积种植121,黄芪(Astragalus membranaceus(Fisch.) 

1.2.1 不同消毒方式对白术种子萌发的影响 配 

Bge.)属于豆科黄芪属的多年生草本植物[31。黄芪具 

置112 MS培养基(大量元素减半,其他基本成分不 

有增强机体免疫力功能、强心降压、降血糖、利尿、 

变),加入30 g/L蔗糖和7.5 g/L琼脂,pH值调为 

抗病毒等作用,国内外市场对其需要量越来越大 。 

5.8~6.0。用聚乙烯封口膜封好,贴上标签。放入高压 

目前对于黄芪的研究主要集中于其多糖、黄酮等有 

灭菌锅内灭菌(温度:120 ̄C,时间:20 min)。灭菌冷 

效成分的提取及其应用价值的研究,对黄芪组织培 

却后备用。挑选成熟饱满的白术种子,分成3组,放 

养的研究报道较少 。初步研究了白术和黄芪种子 

人超净工作台内依次进行消毒,消毒方式设置如 

的试管内萌发,以期为白术和黄芪无菌体系建立、 

下:(1)用75%酒精消毒30 S,无菌水浸洗1次;再 

快速繁殖以及白术和黄芪的产业化生产提供理论 

用0.1%HgC1 消毒1 min,无菌水浸洗1次。(2)用 

依据。 

75%酒精消毒30 S,无菌水浸洗1次;再用0.1% 

1材料与方法 

HgC1 消毒5 min,无菌水浸洗1次。(3)用75%酒 

精消毒30 S,无菌水浸洗1次;再用0.1%HgC1 消 

收稿日期:2010—01—20 

毒10 min,无菌水浸洗1次。材料消毒以后,接种 

基金项目:2009年江西省高校省级教改项目(JXJG一09—16— 

在112 MS培养基上,放人光照培养箱中培养,培养 

10) 

作者简介:洪森荣(1974一),男,江西永新县人,硕士,主要从 

条件为:光照时间12 h/d,光照强度1 200~1 400 

事植物生物技术方面的研究。 

1)【,温度(25±1)oc,湿度60%一80%。每天观察种子萌 

通讯作者:李玲 

发情况并记录种子萌芽、生根、出苗的时间以及种 

湖南农业科学 第5期 

子污染情况,45 d时统计白术种子的萌发率、污染 

率。萌发率=(出芽的种子粒数/总接种数)×100%, 

污染率=(污染粒数/总接种粒数)x100%。 

1.2.2培养基无机盐水平对白术种子萌发的影响 

挑选成熟饱满的白术种子,放人超净工作台内进行 

消毒,种子消毒方法用75%酒精消毒30 S,无菌水 

浸洗1次;再用0.1%HgC1 消毒5 rain,无菌水浸 

洗1次。材料消毒以后接种在不同无机盐水平的培 

养基上,培养基设置如下:(1)MS;(2)1/2 MS;(3)1/4 

MS。培养基中加入蔗糖30 g/L、琼脂7.5 g/L,pH调节 

为5.8~6.0,用封口膜封口,高压灭菌锅中灭菌。每个 

瓶中接人5-6粒种子不等。接种后放入光照培养箱 

中培养。每天观察种子萌发、生根情况,45 d时统计 

萌发率。 

1.2.3不同消毒方式和培养基类型对黄芪种子试 

管内萌发的影响配置固体和半固体培养基,固体 

培养基中加入琼脂7.5 g/L,半固体培养基加入琼脂 

3.5 g/L。封口膜封口并灭菌。挑选饱满黄芪种子放 

人工作台内消毒,消毒方式设置如下:(1)用75%酒 

精消毒20 s,无菌水浸洗1次;再用0.1%HgC1 消 

毒5~8 min,无菌水浸洗1次。种子消毒后接人固体 

和半固体培养基中;(2)用75%酒精消毒20 S,无菌 

水浸洗i次;再用0.1%HgC1:消毒l0~15 min,无 

菌水浸洗1次。种子消毒后接人固体和半固体培养 

基中。每支试管接人3~10粒黄芪种子不等,接种后 

放人光照培养箱中培养。每天观察黄芪种子发芽情 

况。15 d时统计其萌发率。 

1.3数据处理 

试验为单因子试验,数据均取平均值。 

2结果与分析 

2.1 消毒方式对白术种子萌发的影响 

种子接入培养基4 d后,就出现种子污染情 

况,用75%酒精消毒30 S再用0.1%HgC12消毒1 

min的种子最先出现污染,长出白色绒毛状菌体, 

圆形菌落,菌落随时间不断扩大,最后布满整瓶,菌 

体由白色变为墨绿色,最后变成黑色。接人的种子 

有轻微的褪色,种子在逐渐胀大,但30 d后,无一 

粒种子萌发,45 d时开始有种子发芽并生根。由表 

1可知用0.1%HgC1 消毒时间越短,白术污染率越 

高,但种子消毒时问过长或过短对白术种子的萌发 

都不利。因此,白术种子最佳的消毒方式是:75%酒 

精消毒30 S再用0.1%HgC12消毒5 arin。 

2.2无机盐水平对白术种子萌发的影响 

表1消毒方式对白术种子萌发和污染的影响(45 d) 

白术种子接到不同无机盐水平培养基上,有轻 

微的褪色,种子也有一定胀大,但一直没有萌发迹 

象,到45 d时开始出现种子萌发。无机盐浓度过低 

对白术种子萌发不利。无机盐水平为1/4 MS时,种 

子萌发率为0;无机盐水平为MS和1/2 MS时,白 

术种子萌发率相对较高,分别为3.5%和3.7%,总体 

上白术种子在试管内的萌发率较低。 

2.3 消毒方式和培养基类型对黄芪种子试 

管内萌发的影响 

黄芪种子培养2 d后,用0.1%HgC1 消毒5 

min的种子接到半固体培养基上的最先有种子发 

芽,4 d后,其他种子也有发芽,萌发情况统计如表 

2所示,从表2中可知,半固体培养基中种子萌发 

率高于固体培养基,用0.1%HgC1 消毒1O一15 min 

对黄芪种子适合。 

表2消毒方式和培养基类型对黄芪种子 

试管内萌发的影响(15 d) 

消毒献 接种数萌发数萌发率 

(个) (粒) (%) 

固体75%酒精20 s+0.1%HgCi2 5~8 min 12 

I 8.3 

固体75%酒精20 s+0.1%HgCl2 1O~15 min 22 

5 22.7 

半固体75%酒精20 s+0.1%Hscl2 5-8 min 28 

7 27.8 

半固体75%酒精20 s+0.1%ngC12 lO~15 min 6 

2 33-3 

3讨论 

本试验对于白术萌发的初步研究表明,用 

0.1%HgCI:对白术消毒5 min的消毒效果最好,污 

染率较低。但1/2 MS培养基上的种子萌发率仅为 

3.7%。因此,在本试验中,白术种子总的萌发率较 

低,究其原因可能有以下几点:首先是因为白术种 

子外表皮有一层茸毛,如果消毒液没有完全浸透种 

子,茸毛中的细菌无法杀死,种子易污染,从而影响 

种子萌发。其次是因为种子体型较大,种子萌发需 

要吸收一定量的水分通过吸胀阶段才能萌发,本试 

验采用固体培养基水分不足,导致实验后期培养基 

干裂,种子无法吸水导致萌发率低。另外可能是因 

为本试验所购买的白术种子本身活力低,萌发率不 

高。但李慧[21把白术种子在流水中冲4~6 h,剥去种 

皮,用0.2%HgC1 浸泡20 min后,(下转第11页) 

第5期 陈星等:细菌总RNA提取方法的研究进展 

器皿,塑料制品和电泳槽等器材经常会有RNase的 

公司开发研制的ABI PRISMTM 6100核酸提取仪。 

污染。玻璃器皿,研钵等使用前需要在1 80 ̄(2下干烤 这是一个小型、多用途、快速而又经济的核酸纯化 

8 h或更长时间删;离心管等塑料制品可用氯仿浸泡 

平台,半个小时即可完成96个样品的纯化工作,并 

过夜后用灭过菌的l%的DEPC(焦炭酸二乙酯)水 

且可纯化来自多种生物样本的总RNA和基因组 

冲洗或直接用DEPC水浸泡,装满水的塑料制品需 

DNA[2]。这种自动核酸提取仪也在不断的出现和更 

要放置2 h以上,然后在l2l℃下灭菌30 min;用于 新,越来越多的公司开始研发和生产,这种仪器也 

凝胶电泳的电泳槽需要用去污剂清洗后,装满双氧 已经用于很多公司和机构,但目前对于大多数高校 

水放置10 rain后再1%的DEPC水彻底冲洗后才 和科研机构而言还是很难实现此条件的。 

能使用。 

RNA的提取是分子生物学研究的基础,RNA 

4.2.2实验人员的污染进行提取RNA实验时, 

的质量好坏直接影响下游研究结果的准确与否。随 

实验人员自身也是重要的RNase污染源。在准备和 

着科学技术的发展,RNA的提取将不断向着快捷、 

进行RNA提取实验时,需带一次性手套,在实验过 

准确和自动化的方向发展。 

程中接触了可能带有RNase的物品时,要更换手 

套,所以在整个实验过程中要勤换手套。另外,空气 

参考文献: 

和液体中也会有RNase,所以实验过程中要带口 

[11 Junhui L,Chuanhong T.A simple,rapid and effective method 

罩,尽量不说话,并减少实验区域的人员走动。 

for total RNA extraction from Lentinula edodes fJ].Biotechnol 

4.2.3 实验试剂的污染实验中用到的各种试剂, 

Lett.,2006,(28):1193—1197. 

[2】庞昕,周冬生,杨瑞馥.细菌mRNA的提取方法 .生物技 

也是重要的RNase污染源。在配置所用试剂时,要 

术通报,2003,(1):3O一34. 

使用经过处理的器皿,并且用灭过菌的1%的DE— 

【3】陈晖,何海福.植物组织总RNA提取方法的研究进展『J】.甘 

PC水来配置;试剂使用次数多了,可能会被RNase 

肃农业,2006,(8):228. 

污染,所以尽量做到现配现用。 

【4】杨占军,谷守琴,张健.几种植物组织总RNA提取方法的特 

点及疑难对策叨.安徽农业科学,2009,37(18):8341—8342. 

5 提取技术的发展前景 

[5 5】Chomczynski P,Sacchi N.Single-step method of RNA isolation 

目前,国内外有很多专门用于提取细菌RNA的 

by acid guanidinium thiocyanate—phenol—chloroform extraction『J]. 

Anal Biochem.1987。(162):156—159. 

方法,这些方法可以分为两大类:一类是依据特殊的 

[6 Si6]un C T,Beow C Y.DNA,RNA,and Protein Extraction:The 

溶液来提取RNA(如TRIZOL法);另一类是依据离 

Past and The Present[J].Journal of Biomedicine and Biotechnolo— 

心柱,如硅化膜离心柱(Promega SV Total RNA Iso— 

gY,2009,(11):1-10. 

lation System)等。这些方法大多数被开发成商业的 

【7】周秦,黄有军,曾燕如,等.山核桃胚和胚乳总RNA的提取 

试剂盒,进而简化分子生物学的提取工艺[61。 

与eDNA的合成『JJ。浙江林业科技,2009,(1):39—42. 

当前国际上还出现了自动核酸提取仪,如ABI 

(责任编辑:石君) 

(上接第8页)白术种子萌发率很高。本试验也表 

【3】伍春莲.黄芪愈伤组织的培养及蛋白质含量的测定啪.西华师 

明,培养基中添加琼脂量的多少对黄芪种子的萌发 

范大学学报,2009,30(2):138—139. 

有影响,加入琼脂量少的半固体培养基,黄芪种子 

『41暴宪斌,沈俊兰.黄芪的药理作用及临床研究进展啪.山西中 

萌发率高,而添加琼脂量多的固体培养基,培养基 

医,2006,22(6):48—49. 

[5】陈兰兰,高山林,赵慧娜.蒙古黄芪组织培养及同源四倍体的 

易硬化,影响了养分和水分的吸收,导致黄芪种子 

诱导与鉴定[J1.药物生物技术,2006,13(6):413—417. 

萌发率低。因此,采取半固体培养基对于黄芪种子 

【6】攀锐锋,梁冰,李海燕.黄芪属植物生物学特性及组织培养 

萌发有利。本试验结果可以为白术和黄芪试管苗无 

技术研究进展【J】.东北农业大学学报,2006,(2):32—35. 

菌体系的建立提供理论依据。 

【7】包英华,苏格尔.蒙古黄芪不同外植体愈伤组织中黄芪甲甙含 

量比较『J].蒙古大学学报,2003,(4):78—80. 

参考文献 

f8】王忠.植物生理学[M】.北京:中国农业出版社.2002.212— 

【1】彭晓波.白术的炮制与应用fJ1.中国现代药物应用,2009,3 

2】3. 

(21):115~116. 

[2]李慧.白术的组织培养【JJ.特种经济动植物,2002,(7):23—24. 

(责任编辑:卢红玲) 

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