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探讨DNA条形码对摇蚊属物种界定的有效性

IT圈 admin 45浏览 0评论

2024年6月12日发(作者:似城)

第60卷第5期

2021年3月

余海军,王

湖北农业科学

Hubei

Agricultural

农业

Sciences

科学

Vol.60No.5

2021年

Mar.,2021

茜.探讨DNA条形码对摇蚊属物种界定的有效性[J].湖北农业科学,2021,60(5):144-148.

探讨DNA条形码对摇蚊属物种界定的有效性

余海军,王茜

300384)(天津农学院水产学院/天津市水生生态及养殖重点实验室,天津

摘要:以摇蚊属的12种物种为研究对象,结合BarcodeofLifeDatabase(BOID)和Genbank数据库下载的

条形码数据,采用AutomaticBarcodeGapDiscovery(ABGD)和邻接法(Neighborjoining,NJ)对所获取的

749条DNA条形码进行分析,探究DNA条形码在摇蚊属物种界定的有效性。结果表明,基于ABGD的分

析,显示物种遗传距离之间存在空白区;通过分析邻接树,得到60个分子分类操作单元,与形态学鉴定

结果一致,并将数据库中11修正为Chironomuspseudothummi。研究在一定程度上补充

了中国摇蚊科DNA条形码研究,也为摇蚊科DNA条形码数据库的构建和完善提供了数据支持。

关键词:摇蚊属;DNA条形码;物种界定

中国分类号:Q969.44;Q523文献标识码:A

开放科学(资源服务)标识码(OSID):

文章编号:0439-8114(2021)05-0144-05

DOI:10.14088/0439-8114.2021.05.028

ExploringtheutilityofDNAbarcodinginspeciesidentificationofChironomus

YUHai-jun,WANGQian

(CollegeofFishery,TianjinAgriculturalUniversityKeyLaboratoryofAquatic-EcologyandAquacultureofTianjin,Tianjin300384,China)

Abstract:Theresearchanalyzed749DNAbarcodescollectedthe12speciesofChironomusspeciesanddownloadedbarcodesin

BOLDandGenbankdatabasebyABGD(AutomaticBarcodeGapDiscovery)andNJ(Neighbor-joining).TheresultshowedthatAB⁃

GDanalysedgeneticdistance,existed“DNAbarcodegap”.TheNJtreesupported60molecularoperationaltaxonomicunits,and

tion,basedonthedataarefound,11frompubliclibrary

andprovidedatasupportforestablishingandperfectingtheChineseDNAbarcodesdatabaseofChironominae.

Keywords:Chironomus;DNAbarcoding;speciesidentification

ultisanimportantsupplementfortheChineseDNAbarcodesstudyofChironominae,

摇蚊属(Chironomus)隶属于双翅目摇蚊亚科

(Diptera:Chironomidae),该属由德国昆虫学家Mei⁃

gen于1803年建立,迄今为止全世界已记录种类达

303种;摇蚊属的幼虫可以生存于各种水体(尚未污

ronomus)在缺乏营养的水体中较为丰富,并且能耐

受酸性环境,另一些摇蚊亚属喜欢生长在盐分较高

的环境中,对重金属污染具有耐受性

[1]

。摇蚊属部

分种类雄成虫能引起人类过敏性疾病;裸露在外和

正在产卵的摇蚊属种类可以成为新鲜水体中鱼类

(鳟鱼)的主要食物来源;在日常生活中,某些垂钓者

收稿日期:2020-06-29

基金项目:国家自然科学基金项目(NSFC31672264)

所用诱饵也为摇蚊属幼虫

[2]

摇蚊属是摇蚊科最古老的属之一,由于种种历

史原因,该属的研究在世界上一直存在很大的争议,

属内物种的分类地位至今没有获得广泛的认可。依

据中国摇蚊名录中统计,中国已有该属种类共23种,

其中只有13种具有明确记录,另包括3种可疑种和7

种只进行鉴定而没有正式发表的

[3]

。因此,摇蚊属的

物种界定一直存在争议

[3]

。随着DNA条形码的提

出,其通过将基因组的标准部分提取一个或几个相

5]

对较短的基因序列,用于识别物种

[4,

;虽然使用DNA

染至严重污染的水体),其中宽叶摇蚊亚属(Lobochi⁃

序列识别生物并不新颖

[6]

,但DNA条形码能快速且

作者简介:余海军(1994-),男,贵州雷山人,在读硕士研究生,研究方向为分子系统学,(电话)183****0463(电子信箱)yhj@163.

com;通信作者,王

****************。

茜(1971-),女,副教授,博士,主要从事水生动物及昆虫分子系统学的研究,(电话)136****4584(电子信箱)

第5期

余海军等:探讨DNA条形码对摇蚊属物种界定的有效性

145

可靠地识别所有生命形式的物种层次,包括动物、植

物、真菌、微生物;其在论证物种群落组成、食物链和

种内遗传变异方面也有所研究

[7-9]

;同时也扮演着生

物安全和淡水生态监测中一个不可缺少的角色

[10-13]

Lin等

[14]

使用DNA条形码对长跗摇蚊属(Tanytarsus)

121

DNA

个形态种进行物种鉴定有效性分析,

究分类的长跗摇蚊属物种;

条形码明确区分出94.6%

结果表明

Song

的先前通过形态学研

[15]

使用DNA条形

码对多足摇蚊属(Polypedilum)161个形态种进行物

种鉴定有效性分析,结果表明现已有研究中多足摇

蚊属94.4%的种类能有效被DNA条形码区分。

本研究基于编码细胞色素C氧化酶甲基(ICOI)

基因对摇蚊属157种的749条DNA条形码进行分

析研究,并利用相关软件对摇蚊属类群进行了遗传

距离和系统发育树的分析,目的是探索DNA条形码

在摇蚊属物种界定方面的有效性,同时为完善摇蚊

科DNA条形码数据库提供参考,以填补当前国内该

属的研究空白。

1材料与方法

1.1分类抽取和收集信息

研究中695条DNA条形码数据为BOID和Gen⁃

bank

夏、海南、

数据库提供,

贵州、广西、

54条为收集样本,

天津、浙江等地;

采集于新疆、

采集方式包括

灯诱、马氏网、D型网、扫网;将采集后的幼虫样本保

存于95%乙醇中,成虫样本保存于85%乙醇中,并

存于4℃冰箱,用于后续的形态学和分子学研究。

1.2DNA提取和PCR扩增

本研究通过QiagenDNABloodandTissuekit试

剂盒,采用摇蚊成虫的头、胸部和幼虫的腹部提取基

因组DNA。提取后成虫的头、胸部保存到与翅、足

和触角一致的玻片标本上,用Euparal树胶封片,凭

证标本均存于天津农学院水产遗传育种实验室。

使用通用引物LCO1490和HCO2198扩增COI条

形码

[16]

。PCR扩增反应体系为25μL,包含12.5μL

2×Es

8.75

TaqMasterMix,上下游引物各0.625μL,ddH

2

O

进行扩增,

μL,DNA

扩增程序为

模板2.5μL

98

。通过

℃预变性

Master

10

Cycler

s,94℃

Gradient

5min,

35

72

个循环

℃延伸

(94

5min

1

10

min

,51

保存。

℃1min

PCR

,72

扩增产物经

℃1min),

1.5%

最后

琼脂糖凝胶电泳检测后,送北京六合华大基因科技

股份有限公司进行纯化测序。

1.3序列分析和对比

各个基因片段都采用双向测序,根据测序公司

返回的测序结果,使用软件SeqMan7.1.0.44观察峰

图质量编辑序列

[17]

。将编辑好的FASTA文件导入

MEGA7.0

用MEGA7.0

后选择标准密码子进行后续密码子比对。

软件分析对比后,对各样本碱基的

组成、简约信息位点、变异位点(Variablesites)、保守

位点、自裔位点、平均碱基含量、遗传距离和碱基转

换与颠换比值进行统计。选用Kimura-2-parameter

(K2P)分子进化模型,节点处置信度为1000,其他

设置均为默认值,建立邻接树。

利用ABGD软件分析mOTU的数量

[18]

:将编辑

好的FASTA文件在线提交到ABGD网站(http://ww⁃

/public/abgd/

差异先验值P为0.001~0.100

相对

选择

gap

K2P

宽度值

模型,种内

X为

1.0

DNA

,其

序列及其相关信息均已上传

余参数设置为默认值

[15]

。本研究的54条

)数据库。

BOLD(http://www.

2结果与分析

2.1序列特征

研究共获得摇蚊属749条DNA条形码,其中实

验室获得54条DNA条形码,695条来自BOID和

Genbank

的平均含量分别为

数据库,所有序列的长度均为

A=26.56%,T=37.67%

658

,C=18.82%

bp,各碱基

G=16.92%

低于A+T的含量,

,序列存在碱基的偏倚性,

特别是第三核酸位点

C+G的含量显著

A+T的含量

为85.15%。通过比对序列得出,信息位点有244个,

占37.08%;变异位点有261个,占39.67%。大部分

的变异位点都集中在第三核酸位点,其比例为

78.16%

2.2遗传距离

,表明在第三核酸位点上的碱基进化速率快。

在DNA条形码研究中,种内与种间遗传距离的

差异是一项非常重要的指标,当种间遗传距离大于

种内遗传距离,就会形成一个明显的空白区

[15,19]

实验室共获得54条DNA条形码,形态鉴定约

为12种。结合BOID和Genbank数据库已下载的数

据,分析统计共获得形态种约50种。在MEGA7.0

软件中,对所有形态种进行分组,即60个组。种内

遗传距离为0~7.21%,平均值为1.10%;种间遗传距

离为0.2%~19.4%,平均值为14.25%;种间平均遗传

距离是种内平均遗传距离的12.95倍,因此本研究

的749条形码数据存在明显的空白区。

5]

通过对无脊椎动物及脊椎动物11

门13

Hebert

320个物种进行了

DNA条形码的研究,并提

出了种间平均遗传距离大于种内平均遗传距离的

10

入研究,

倍作为区分物种的标准;

不同领域的学者对该标准进行了验证,

随着DNA条形码的深

摇蚊科不同类群中也出现了相应的研究,详细结果

见表1。

146

湖北农业科学

2021年

表1

类群

长跗摇蚊属(

Tanytarsus

摇蚊属(

Chironomus

多足摇蚊属(

Polypedilum

多足摇蚊属(

Polypedilum

摇蚊属(

Chironomus

文献

[14]

[20]

[15]

[17]

本研究

摇蚊科不同类群遗传距离比较

遗传距离//%

种间平均与种内

种间最小

0.70

0.80

5.90

1.50

0.20

平均遗传距离比例

7.43

6.62

9.40

12.95

6.76

种间平均

15.90

17.20

15.80

13.93

14.25

种内最大

17.30

18.30

7.50

7.21

8.50

种内平均

2.14

2.60

1.68

2.06

1.10

2.3系统发育树结果

本研究采用DNA条形码分析中最常用的邻接

法,基于54条DNA条形码明显分离出13个分类操

作单元,代表摇蚊亚科中12个已命名的物种,结果

显示DNA条形码的鉴别结果与形态学鉴定结果一

致(图1)。

Chironomusflaviplumus|GZCH12|

0.02

Chironomusflaviplumus||HJ30|

Chironomusflaviplumus|GZCH16|

Chironomusflaviplumus|GZCH13|

Chironomusflaviplumus|HJ90|

Chironomusflaviplumus|HJ06|

Chironomusflaviplumus|GXCH45|

83

96

Chironomusflaviplumus|GXCH41|

Chironomusflaviplumus|GXCH42|

lumus

Chironomusflaviplumus|HJ02|

100

74

96

Chironomusflaviplumus|GZCH23|

Chironomusflaviplumus|HJ08|

Chironomusflaviplumus|GZCH05|

94

92

Chironomusflaviplumus|GZCH10|

Chironomusflaviplumus|HJ04|

Chironomusincertipenis|GZCH48|

ipenis

Chironomuscircumdatus|CJL142

Chironomuscircumdatus|cjl177

Chironomuscircumdatus|cjl5

100

Chironomuscircumdatus|CJL168

Chironomuscircumdatus|cjl176

datus

Chironomuscircumdatus|cj7

Chironomuscircumdatus|cj4

Chironomuscircumdatus|cj173

Chironomuscircumdatus|CJL174

100

Chironomusdorsalis|CH233|

Chironomusdorsalis|LX06|

is

100

81

Chironomusdorsalis|CH23|

Chironomussp.3SC|GZCH49|

Chironomussp.3SC|GZCH10|

.3SC

Chironomussp.3SC|XL579|

Chironomusriparius|us

100

Chironomusjavanus|GXCH09|

Chironomusjavanus|GXCH46|

s

Chironomuskiiensis|CH34|

100

84

Chironomuskiiensis|HJ105|

Chironomuskiiensis|HJ106|

98

Chironomuskiiensis|HJ103|

is

Chironomuskiiensis|CH252|

Chironomuskiiensis|HJ72|

Chironomuskiiensis|XJ07|

Chironomuspseudothummi|CH325|thummi

Chironomustentans|XL584|

100

93

Chironomustentans|CH323|s

Chironomustentans|CH324|

100

Chironomusannularius|LX01|

Chironomusannularius|XL585|

rius

100

Chironomusnovosibiricus|CH198|

Chironomusnovosibiricus|CH220|

biricus

Chironomusplumosus|HJ386

100

Chironomusplumosus|HJ389

Chironomusplumosus|HJ387

us

Chironomusplumosus|HJ252

Chironomusplumosus|HJ388

图154条DNA条形码邻接树

2.4ABGD评估结果

离,当种间最小遗传距离大于种内最大遗传距离时

ABGD在线软件通过比较种内和种间的遗传距

则出现空白区,DNA条形码空白区的存在很容易将

物种分开(图2)。

68991

62

55

091

48

192

41

293

34

394

27

495

20

596

13

697

6

798

899

0369258

0000111

.......

0000000

遗传距离

图2749条DNA条形码基于K2P模型得到的遗传距离分类

基于ABGD在线软件评估摇蚊亚科OTUs的数

量,即通过设定不同的阈值P,得到不同的OTUs数

量;随着P增大,OTUs的数量减少(图3)。当P为

0.002

P为0.026

637时,

827

749

时,

被分为

DNA条形码被分为

61OTUs。即

104

OTUs

OTUs

的置

信区间可为61~104,ABGD所评估的OTUs的数量

略大于形态评估的种类。当P为0.037276时,被分

为58OTUs,最为接近邻接树法评估的分子操作单

元数量,因此ABGD方法评估749条摇蚊亚科DNA

110

100

90

80

s

70

U

T

60

O

50

40

30

20

10

0

0.001

阀值

0.010.020.030.040.06

图3ABGD在线评估OTUs的数量随P的变化

第5期

余海军等:探讨DNA条形码对摇蚊属物种界定的有效性

147

条形码的遗传距离阈值为3%~4%。

3讨论

目前为止,DNA条形码技术存在5种分析方法,

即遗传距离的分析、遗传相似度的分析、系统发育树

的分析、序列特征的分析和统计分类法的分析

[21]

而在摇蚊DNA条形码研究中,主要是基于遗传距离

和系统发育树的分析

[22-28]

基于遗传距离的分析,即通过计算DNA条形码

序列的遗传距离,从而实现物种的区分,主要分析方

法包括DNA条形码间隙和遗传距离阈值分析

[21]

DNA

间遗传距离的差异,

条形码间隙的一项非常重要指标是种内与种

当种间遗传距离大于种内遗传

距离,就会形成一个明显的空白区。本研究中种内

平均遗传为距离为1.10%,种间平均遗传距离为

14.25%

区。遗传距离阈值是指物种在能形成空白区的前提

,后者大约是前者的12.95倍,形成了空白

下,使用物种种间遗传距离与参比的遗传距离阈值

进行对比,当种间遗传距离大于参比的阈值,则可以

将物种区分为不同物种。阈值法在DNA条形码的

物种鉴定中起着不可替代的作用,然而随着DNA条

形码的研究不断出现,有学者发现不同物种DNA条

形码的阈值各不相同,没有一个统一的标准阈

[29]

。BOLD数据库最初将遗传距离1%作为生物

物种的划分阈值,由于其阈值宽泛,在一定程度上造

成了物种的鉴别过度,导致同种异名的出现,为了不

使物种混乱,近年来BOLD系统默认鉴别阈值为

3%

[30]

;Meier等

[31]

在对449个双翅目昆虫物种的研

究中,发现在物种划分时,其遗传距离大于3%;He⁃

bert等

[5]

以3%作为阈值对200个鳞翅目昆虫物种

进行鉴别;蜉蝣目

[32-34]

、襀翅目和毛翅目

[35,36]

的物种

以2%的阈值就能将物种区分开。本试验研究的物

种隶属于双翅目,通过使用ABGD方法评估得到的

遗传距离阈值为3%~4%,与Meier等

[31]

的研究相

符,且与摇蚊亚科中其他属研究的阈值差异不大,

Song等

[15]

区分多足摇蚊属的遗传距离阈值为5%~

8%,Lin等

[14]

区分长跗摇蚊属的遗传距离阈值为

其属于摇蚊亚科中比较大的属级之一,

4%~5%。本研究是分析摇蚊属物种的DNA

属内物种的

条形码,

丰富度极高,但由于时间有限,加之中国地大物博,

从而不能完全覆盖已记录所有物种和一些隐种;为

此还需要更深入的研究,才能达到对中国地区摇蚊

属遗传距离的准确界定。

系统发育树能直观地反映物种之间的亲缘关

系,本研究采用的是邻接树法,其基于遗传距离和最

小进化原理,通过自举检验法进行聚类,并通过统计

给定树分支的可信度,得出最优树

[37]

。在邻接树

中,基于54条来自实验室的DNA条形码明显分离

出12个物种,与形态学鉴定结果一致,匹配率达

92.3%

条DNA

;通过结合

条形码,分离出

BOID和

50

Genbank

个形态种,

数据库中的

其中发现本试

695

验数据Chironomuspseudothummi与参比数据Chi⁃

11聚为一支(图4),由于数据库中参

比数据11不能提供证据标本与本

研究比较,将基于本研究的数据将参比数据Chi⁃

11修改为Chironomuspseudothummi,

并将相关信息上传至BOLD数据库。

0.005

88

11

11|B|OUG07603-H11|KM967408

99

11|B|OUG08857-B05|KM909600

Chironomuspseudothummi|CH325|

11|CH-OSF86|

99

11|Finnmark434|JN265051

11|Finnmark578|JF870939

11|Finnmark725|JN265114

11|TRD-CH299|

11|TRD-CH378|

99

Chironomuspseudothummi|CH-OSF190|JN265016

Chironomuspseudothummi|CH-OSF36

12

图4Chironomuspseudothummi类群邻接树

4结论

本研究通过采集中国地区的摇蚊属昆虫12种

54

据,

个样本,

共计749

结合

条DNA

BOID

条形码,

和Genbank

运用

数据库中的相关数

ABDG法分析该数

据集遗传距离,结果显示种内与种间存在一个明显

的空白区;基于邻接树结果得出数据集分离出50个

物种,与传统形态学鉴定一致,匹配率高达92.3%,

并修正数据库中11为Chironomus

pseudothummi,证明DNA条形码能有效鉴别摇蚊属

昆虫。本研究的数据均已上传中国DNA条形码数

据库,在丰富中国摇蚊科数据库的同时,也为探索

DNA

础数据。

条形码在摇蚊昆虫中鉴别的有效性提供了基

参考文献:

1]MACHADONG,NASSARDENDCS,DOSSANTOSF,⁃

ronomuslarvae(Chironomidae:Diptera)aswaterqualityindicators

along

Ambiente

anenvironmentalgradientinaneotropicalurbanstream[J].

2015,10:298-309.

&agua-aninterdisciplinaryjournalofappliedscience,

2]王俊才,王新华.中国北方摇蚊虫[M].北京:中国言实出版社,2011.

3]edchecklistofChironomidaefromChina(Dip⁃

tera

ronomidae

).In:

Hoffrichter

A].Ananthology

O(Eds)

from

,Late

13th

20th

international

CenturyResearch

symposium

onChi⁃

on

Chironomidae[C].Achen:ShakerVerlag,2000.629-652.

4]HEBERTPDN,RATNASINGHAMS,⁃

ing

closely

animal

related

life:

species

Cytochrome

[J].Proceedings

oxidasesubunit

ofthe

1

royal

divergences

societyof

among

lon⁃

148

湖北农

[5]

don

HEBERT

series

P

biological

DN,CYWINSKA

sciences,2003

A,BALL

,270:

S

96-99.

L,icaliden⁃

tifications

ence,2003

through

,270:313-321.

DNAbarcodes[J].Proceedingsbiolologicalsci⁃

[6]PECNIKARZF,BUZANEV.20yearssincetheintroductionof

DNA

2014,

barcoding

55:4-52.

:fromtheorytoapplication[J].JApplGenet,

[7]BAKERCC,BITTLESTONLS,SANDERsJG,ting

host-associated

ofthe

communities

royalsociety

with

B:

DNA

Biological

barcodes

sciences

[J].

Philosophical

20150328.

transactions2016,371:

[8LITTLEFAIRJE,ingthefoodchain:From

sanger

946-958.

tohigh-throughputsequencing[J].Genome,2016,59:

[9]ROSLINT,ofDNAbarcodesinfoodweb

construction

2016,59:603-628.

-terrestrialandaquaticecologistsunite[J].Genome,

[10]ASHFAQM,codesforbio-surveillance:

Regulated

Genome,2016

and

economically

59:933-945.

importantarthropodplantpests[J].

[11]HODGETTSJ,OSTOJÁ-STARZEWSKIJC,PRIORT,etal.

DNA

protection

barcoding

program

for

[J

biosecurity

].Genome

,2016

Case

studies

59:1033-1048.

fromtheUKplant

[12]BRODINY,EJDUNGG,STRANDBERGJ,ingen⁃

vironmental

DNAbarcoding

and

of

biodiversity

Chironomidae

monitoring

(Diptera)

in

[J

the

].Molecular

BalticSea

ecology

using

[13]

resources

CAREW

M

2013

E,

PETTIGROVE

13:996-1004.

VJ,METZELINGL,⁃

ronmental

identification

monitoringusingnextgenerationsequencing:Rapid

tiersin

X

zoology

of

L,STUR

,2013

macroinvertebrate

E,EKREM

,10:45.

bioindicatorspecies[J].Fron⁃

[14]inggeneticdivergenceina

species-rich

One,2015,10

insect

:e0138993.

genususing2790DNAbarcodes[J].Plos

[15]SONGC,LINXL,WANGQ,codessuccessfully

delimit

cascripta

morphospecies

,2018,47:311-324.

inasuperdiverseinsectgenus[J].Zoologi⁃

[16]FOLMERO,BLACKM,HOEHW,mersforampli⁃

fication

verse

ofmitochondrialcytochromecoxidasesubunitI

[17]

biotechnology

metazoan

LINXL,YU

H

1994

invertebrates

J,ZHANG

,5:294-299.

[J].Molecularmarinebiology

from

and

di⁃

RL,dilum(Cerobregma)

heberti

Yunnan

sp.

,China

n.(

Diptera

J].Zootaxa

:Chironomidae

,2019,4571

)from

:255-262.

GaoligongMountains,

[18]PUILLANDREN,LAMBERTA,BROUILLETS,,

automatic

Molecular

barcode

ecology,

gap

2012

discovery

,21:1864-1877.

forprimaryspeciesdelimitation[J].

[19]SONGC,WANGQ,ZHANGRL,ingtheutilityof

DNA

non-biting

barcoding

midges

inspecies

(Diptera

delimitation

:Chironomidae

ofPolypedilum

)[J].Zootaxa

(Tripodura

,2016

20]

4079

KONDO

:534-550.

[NI,UENOR,OHBAYASHIK,coding

supports

Chironomidae

reclassification

)[J].Entomological

ofJapanese

science

Chironomus

,2016,

species

19:337-350.

(Diptera:

业科学

2021年

[21]杨倩倩,刘苏汶,俞晓平.DNA条形码分析方法研究进展[J].

应用生态学报,2018,29(3):1006-1014.

[22]SONGC,LIUWB,ZHANGRL,andromorphic

species

withDNA

of

barcodes

Polypedilum

from

Kieffer

Oriental

,1912

China

Diptera

J].

:Chironomidae),

[23]

gist

SONG

,2017

C,

WANG

93:95-104.

Pan-Pacificentomolo⁃

Q,SUNBJ,aKieffer,1924(Dip⁃

tera

Pacific

:Chironomidae

entomologist

a

2017

newly

,93

recorded

:218-225.

genusfromChina[J].Pan-

[24]QIX,WANGXH,ANDERSENT,eciesofManoa

Fittkau

National

(Diptera

Park,Oriental

:Chironomidae

China[J

.Zootaxa

withDNA

,2017

barcodes

,4231

from

:398-408.

Xianju

[25]GIŁKAW,PAASIVIRTAL,GADAWSKIP,logy

and

Chironomidae

molecules

say

[J]

.

Tanytarsus

Zootaxa,2018

latens

4471

.

:569-579.

fromFinland(Diptera:

[26]MAKARCHENKOEA,MAKARCHENKOMA,SEMENCHEN⁃

KO

Chaetocladius

AA,etal.

(Chaetocladius

Morphological

description

elisabethaesp.

and

nov.

DNA

(Diptera

barcoding

:Chi⁃

of

ronomidae

2018,4403

Orthocladiinae

378-388.

)fromtheMoscowRegion[J].Zootaxa,

[27]LINXL,STURE,codesandmorphologyre⁃

veal

systematics

unrecognized

&evolution

species

,2018

inChironomidae

,49:329-398.

(Diptera)[J].Insect

[28]QIX,LINXL,EKREMT,rfaceglidingspeciesof

Chironomidae:Anindependentinvasionofmarineenvironments

[29]COLLINS

anditsevolutionary

RA,CRUICKSHANK

implications[

R

J]

H.

.Zoologica

Theseven

scripta

deadly

,2018

sinsof

:1-12.

DNA

[30]

barcoding

RATNASINGHAM

[J].Molecular

S,HEBERT

ecologyresources

PDN.

BOLD

2013

,13

The

:969-975.

barcodeof

[31]MEIER

lifedata

R

system

,SHIYANG

[J].Molecular

K,VAIDYA

ecology

G

notes

,etal.

,2007

DNA

barcoding

7:355-364.

and

taxonomy

identification

indiptera

success

A

J]

tale

.Systematic

ofhighintraspecific

biology,

variabilityandlow

[32]WEBBJM,JACOBUSLM,FUNKDH,et

2006

al.A

DNA

55:715-728.

barcode

library

PLoSone

for

north

2012

American

,7:e38063.

ephemeroptera:Progressandprospects[J].

[33]ZHOUX,JACOBUSLM,DEWALTRE,roptera,

Plecoptera

insights

,andTrichopterafaunaofChurchill(

[34]

of

SCHMIDT

thenorth

into

S

American

biodiversity

,SCHMID-EGGER

benthological

patternsfrom

C,

society

DNA

MORINIÈRE

barcoding

Manitoba

2010,

J,

29

et

al.

814-837.

J]

Canada

.Journal

):

DNAbar⁃

coding

tionsfor

largely

central

supports

european

250

bees

years

(Hymenoptera

ofclassicaltaxonomy:Identifica⁃

Molecularecology

M,

resources

JANZEN

D

2015

H,

BURNS

15:985-1000.

,Apoideapartim)[J].

[35]HAJIBABAEIJM,⁃

codes

103:968-971.

distinguishspeciesoftropicallepidoptera[J].PNAS,2006,

[36]ZAHIRIR,LAFONTAINEJD,SCHMIDTBC,con⁃

tinental

species

challenge-a

of

testofDNAbarcode

Lepidoptera

performance

)[J].PLoS

for1,

one

541

2014,9:e92797.

Canadiannoctuoidea(,

[37]DUARTES,BATISTAD,BARLOCHERF,w

DNA

2015,

barcodes

56:102-108.

ofaquatichyphomycetespecies[J].Mycoscience,

2024年6月12日发(作者:似城)

第60卷第5期

2021年3月

余海军,王

湖北农业科学

Hubei

Agricultural

农业

Sciences

科学

Vol.60No.5

2021年

Mar.,2021

茜.探讨DNA条形码对摇蚊属物种界定的有效性[J].湖北农业科学,2021,60(5):144-148.

探讨DNA条形码对摇蚊属物种界定的有效性

余海军,王茜

300384)(天津农学院水产学院/天津市水生生态及养殖重点实验室,天津

摘要:以摇蚊属的12种物种为研究对象,结合BarcodeofLifeDatabase(BOID)和Genbank数据库下载的

条形码数据,采用AutomaticBarcodeGapDiscovery(ABGD)和邻接法(Neighborjoining,NJ)对所获取的

749条DNA条形码进行分析,探究DNA条形码在摇蚊属物种界定的有效性。结果表明,基于ABGD的分

析,显示物种遗传距离之间存在空白区;通过分析邻接树,得到60个分子分类操作单元,与形态学鉴定

结果一致,并将数据库中11修正为Chironomuspseudothummi。研究在一定程度上补充

了中国摇蚊科DNA条形码研究,也为摇蚊科DNA条形码数据库的构建和完善提供了数据支持。

关键词:摇蚊属;DNA条形码;物种界定

中国分类号:Q969.44;Q523文献标识码:A

开放科学(资源服务)标识码(OSID):

文章编号:0439-8114(2021)05-0144-05

DOI:10.14088/0439-8114.2021.05.028

ExploringtheutilityofDNAbarcodinginspeciesidentificationofChironomus

YUHai-jun,WANGQian

(CollegeofFishery,TianjinAgriculturalUniversityKeyLaboratoryofAquatic-EcologyandAquacultureofTianjin,Tianjin300384,China)

Abstract:Theresearchanalyzed749DNAbarcodescollectedthe12speciesofChironomusspeciesanddownloadedbarcodesin

BOLDandGenbankdatabasebyABGD(AutomaticBarcodeGapDiscovery)andNJ(Neighbor-joining).TheresultshowedthatAB⁃

GDanalysedgeneticdistance,existed“DNAbarcodegap”.TheNJtreesupported60molecularoperationaltaxonomicunits,and

tion,basedonthedataarefound,11frompubliclibrary

andprovidedatasupportforestablishingandperfectingtheChineseDNAbarcodesdatabaseofChironominae.

Keywords:Chironomus;DNAbarcoding;speciesidentification

ultisanimportantsupplementfortheChineseDNAbarcodesstudyofChironominae,

摇蚊属(Chironomus)隶属于双翅目摇蚊亚科

(Diptera:Chironomidae),该属由德国昆虫学家Mei⁃

gen于1803年建立,迄今为止全世界已记录种类达

303种;摇蚊属的幼虫可以生存于各种水体(尚未污

ronomus)在缺乏营养的水体中较为丰富,并且能耐

受酸性环境,另一些摇蚊亚属喜欢生长在盐分较高

的环境中,对重金属污染具有耐受性

[1]

。摇蚊属部

分种类雄成虫能引起人类过敏性疾病;裸露在外和

正在产卵的摇蚊属种类可以成为新鲜水体中鱼类

(鳟鱼)的主要食物来源;在日常生活中,某些垂钓者

收稿日期:2020-06-29

基金项目:国家自然科学基金项目(NSFC31672264)

所用诱饵也为摇蚊属幼虫

[2]

摇蚊属是摇蚊科最古老的属之一,由于种种历

史原因,该属的研究在世界上一直存在很大的争议,

属内物种的分类地位至今没有获得广泛的认可。依

据中国摇蚊名录中统计,中国已有该属种类共23种,

其中只有13种具有明确记录,另包括3种可疑种和7

种只进行鉴定而没有正式发表的

[3]

。因此,摇蚊属的

物种界定一直存在争议

[3]

。随着DNA条形码的提

出,其通过将基因组的标准部分提取一个或几个相

5]

对较短的基因序列,用于识别物种

[4,

;虽然使用DNA

染至严重污染的水体),其中宽叶摇蚊亚属(Lobochi⁃

序列识别生物并不新颖

[6]

,但DNA条形码能快速且

作者简介:余海军(1994-),男,贵州雷山人,在读硕士研究生,研究方向为分子系统学,(电话)183****0463(电子信箱)yhj@163.

com;通信作者,王

****************。

茜(1971-),女,副教授,博士,主要从事水生动物及昆虫分子系统学的研究,(电话)136****4584(电子信箱)

第5期

余海军等:探讨DNA条形码对摇蚊属物种界定的有效性

145

可靠地识别所有生命形式的物种层次,包括动物、植

物、真菌、微生物;其在论证物种群落组成、食物链和

种内遗传变异方面也有所研究

[7-9]

;同时也扮演着生

物安全和淡水生态监测中一个不可缺少的角色

[10-13]

Lin等

[14]

使用DNA条形码对长跗摇蚊属(Tanytarsus)

121

DNA

个形态种进行物种鉴定有效性分析,

究分类的长跗摇蚊属物种;

条形码明确区分出94.6%

结果表明

Song

的先前通过形态学研

[15]

使用DNA条形

码对多足摇蚊属(Polypedilum)161个形态种进行物

种鉴定有效性分析,结果表明现已有研究中多足摇

蚊属94.4%的种类能有效被DNA条形码区分。

本研究基于编码细胞色素C氧化酶甲基(ICOI)

基因对摇蚊属157种的749条DNA条形码进行分

析研究,并利用相关软件对摇蚊属类群进行了遗传

距离和系统发育树的分析,目的是探索DNA条形码

在摇蚊属物种界定方面的有效性,同时为完善摇蚊

科DNA条形码数据库提供参考,以填补当前国内该

属的研究空白。

1材料与方法

1.1分类抽取和收集信息

研究中695条DNA条形码数据为BOID和Gen⁃

bank

夏、海南、

数据库提供,

贵州、广西、

54条为收集样本,

天津、浙江等地;

采集于新疆、

采集方式包括

灯诱、马氏网、D型网、扫网;将采集后的幼虫样本保

存于95%乙醇中,成虫样本保存于85%乙醇中,并

存于4℃冰箱,用于后续的形态学和分子学研究。

1.2DNA提取和PCR扩增

本研究通过QiagenDNABloodandTissuekit试

剂盒,采用摇蚊成虫的头、胸部和幼虫的腹部提取基

因组DNA。提取后成虫的头、胸部保存到与翅、足

和触角一致的玻片标本上,用Euparal树胶封片,凭

证标本均存于天津农学院水产遗传育种实验室。

使用通用引物LCO1490和HCO2198扩增COI条

形码

[16]

。PCR扩增反应体系为25μL,包含12.5μL

2×Es

8.75

TaqMasterMix,上下游引物各0.625μL,ddH

2

O

进行扩增,

μL,DNA

扩增程序为

模板2.5μL

98

。通过

℃预变性

Master

10

Cycler

s,94℃

Gradient

5min,

35

72

个循环

℃延伸

(94

5min

1

10

min

,51

保存。

℃1min

PCR

,72

扩增产物经

℃1min),

1.5%

最后

琼脂糖凝胶电泳检测后,送北京六合华大基因科技

股份有限公司进行纯化测序。

1.3序列分析和对比

各个基因片段都采用双向测序,根据测序公司

返回的测序结果,使用软件SeqMan7.1.0.44观察峰

图质量编辑序列

[17]

。将编辑好的FASTA文件导入

MEGA7.0

用MEGA7.0

后选择标准密码子进行后续密码子比对。

软件分析对比后,对各样本碱基的

组成、简约信息位点、变异位点(Variablesites)、保守

位点、自裔位点、平均碱基含量、遗传距离和碱基转

换与颠换比值进行统计。选用Kimura-2-parameter

(K2P)分子进化模型,节点处置信度为1000,其他

设置均为默认值,建立邻接树。

利用ABGD软件分析mOTU的数量

[18]

:将编辑

好的FASTA文件在线提交到ABGD网站(http://ww⁃

/public/abgd/

差异先验值P为0.001~0.100

相对

选择

gap

K2P

宽度值

模型,种内

X为

1.0

DNA

,其

序列及其相关信息均已上传

余参数设置为默认值

[15]

。本研究的54条

)数据库。

BOLD(http://www.

2结果与分析

2.1序列特征

研究共获得摇蚊属749条DNA条形码,其中实

验室获得54条DNA条形码,695条来自BOID和

Genbank

的平均含量分别为

数据库,所有序列的长度均为

A=26.56%,T=37.67%

658

,C=18.82%

bp,各碱基

G=16.92%

低于A+T的含量,

,序列存在碱基的偏倚性,

特别是第三核酸位点

C+G的含量显著

A+T的含量

为85.15%。通过比对序列得出,信息位点有244个,

占37.08%;变异位点有261个,占39.67%。大部分

的变异位点都集中在第三核酸位点,其比例为

78.16%

2.2遗传距离

,表明在第三核酸位点上的碱基进化速率快。

在DNA条形码研究中,种内与种间遗传距离的

差异是一项非常重要的指标,当种间遗传距离大于

种内遗传距离,就会形成一个明显的空白区

[15,19]

实验室共获得54条DNA条形码,形态鉴定约

为12种。结合BOID和Genbank数据库已下载的数

据,分析统计共获得形态种约50种。在MEGA7.0

软件中,对所有形态种进行分组,即60个组。种内

遗传距离为0~7.21%,平均值为1.10%;种间遗传距

离为0.2%~19.4%,平均值为14.25%;种间平均遗传

距离是种内平均遗传距离的12.95倍,因此本研究

的749条形码数据存在明显的空白区。

5]

通过对无脊椎动物及脊椎动物11

门13

Hebert

320个物种进行了

DNA条形码的研究,并提

出了种间平均遗传距离大于种内平均遗传距离的

10

入研究,

倍作为区分物种的标准;

不同领域的学者对该标准进行了验证,

随着DNA条形码的深

摇蚊科不同类群中也出现了相应的研究,详细结果

见表1。

146

湖北农业科学

2021年

表1

类群

长跗摇蚊属(

Tanytarsus

摇蚊属(

Chironomus

多足摇蚊属(

Polypedilum

多足摇蚊属(

Polypedilum

摇蚊属(

Chironomus

文献

[14]

[20]

[15]

[17]

本研究

摇蚊科不同类群遗传距离比较

遗传距离//%

种间平均与种内

种间最小

0.70

0.80

5.90

1.50

0.20

平均遗传距离比例

7.43

6.62

9.40

12.95

6.76

种间平均

15.90

17.20

15.80

13.93

14.25

种内最大

17.30

18.30

7.50

7.21

8.50

种内平均

2.14

2.60

1.68

2.06

1.10

2.3系统发育树结果

本研究采用DNA条形码分析中最常用的邻接

法,基于54条DNA条形码明显分离出13个分类操

作单元,代表摇蚊亚科中12个已命名的物种,结果

显示DNA条形码的鉴别结果与形态学鉴定结果一

致(图1)。

Chironomusflaviplumus|GZCH12|

0.02

Chironomusflaviplumus||HJ30|

Chironomusflaviplumus|GZCH16|

Chironomusflaviplumus|GZCH13|

Chironomusflaviplumus|HJ90|

Chironomusflaviplumus|HJ06|

Chironomusflaviplumus|GXCH45|

83

96

Chironomusflaviplumus|GXCH41|

Chironomusflaviplumus|GXCH42|

lumus

Chironomusflaviplumus|HJ02|

100

74

96

Chironomusflaviplumus|GZCH23|

Chironomusflaviplumus|HJ08|

Chironomusflaviplumus|GZCH05|

94

92

Chironomusflaviplumus|GZCH10|

Chironomusflaviplumus|HJ04|

Chironomusincertipenis|GZCH48|

ipenis

Chironomuscircumdatus|CJL142

Chironomuscircumdatus|cjl177

Chironomuscircumdatus|cjl5

100

Chironomuscircumdatus|CJL168

Chironomuscircumdatus|cjl176

datus

Chironomuscircumdatus|cj7

Chironomuscircumdatus|cj4

Chironomuscircumdatus|cj173

Chironomuscircumdatus|CJL174

100

Chironomusdorsalis|CH233|

Chironomusdorsalis|LX06|

is

100

81

Chironomusdorsalis|CH23|

Chironomussp.3SC|GZCH49|

Chironomussp.3SC|GZCH10|

.3SC

Chironomussp.3SC|XL579|

Chironomusriparius|us

100

Chironomusjavanus|GXCH09|

Chironomusjavanus|GXCH46|

s

Chironomuskiiensis|CH34|

100

84

Chironomuskiiensis|HJ105|

Chironomuskiiensis|HJ106|

98

Chironomuskiiensis|HJ103|

is

Chironomuskiiensis|CH252|

Chironomuskiiensis|HJ72|

Chironomuskiiensis|XJ07|

Chironomuspseudothummi|CH325|thummi

Chironomustentans|XL584|

100

93

Chironomustentans|CH323|s

Chironomustentans|CH324|

100

Chironomusannularius|LX01|

Chironomusannularius|XL585|

rius

100

Chironomusnovosibiricus|CH198|

Chironomusnovosibiricus|CH220|

biricus

Chironomusplumosus|HJ386

100

Chironomusplumosus|HJ389

Chironomusplumosus|HJ387

us

Chironomusplumosus|HJ252

Chironomusplumosus|HJ388

图154条DNA条形码邻接树

2.4ABGD评估结果

离,当种间最小遗传距离大于种内最大遗传距离时

ABGD在线软件通过比较种内和种间的遗传距

则出现空白区,DNA条形码空白区的存在很容易将

物种分开(图2)。

68991

62

55

091

48

192

41

293

34

394

27

495

20

596

13

697

6

798

899

0369258

0000111

.......

0000000

遗传距离

图2749条DNA条形码基于K2P模型得到的遗传距离分类

基于ABGD在线软件评估摇蚊亚科OTUs的数

量,即通过设定不同的阈值P,得到不同的OTUs数

量;随着P增大,OTUs的数量减少(图3)。当P为

0.002

P为0.026

637时,

827

749

时,

被分为

DNA条形码被分为

61OTUs。即

104

OTUs

OTUs

的置

信区间可为61~104,ABGD所评估的OTUs的数量

略大于形态评估的种类。当P为0.037276时,被分

为58OTUs,最为接近邻接树法评估的分子操作单

元数量,因此ABGD方法评估749条摇蚊亚科DNA

110

100

90

80

s

70

U

T

60

O

50

40

30

20

10

0

0.001

阀值

0.010.020.030.040.06

图3ABGD在线评估OTUs的数量随P的变化

第5期

余海军等:探讨DNA条形码对摇蚊属物种界定的有效性

147

条形码的遗传距离阈值为3%~4%。

3讨论

目前为止,DNA条形码技术存在5种分析方法,

即遗传距离的分析、遗传相似度的分析、系统发育树

的分析、序列特征的分析和统计分类法的分析

[21]

而在摇蚊DNA条形码研究中,主要是基于遗传距离

和系统发育树的分析

[22-28]

基于遗传距离的分析,即通过计算DNA条形码

序列的遗传距离,从而实现物种的区分,主要分析方

法包括DNA条形码间隙和遗传距离阈值分析

[21]

DNA

间遗传距离的差异,

条形码间隙的一项非常重要指标是种内与种

当种间遗传距离大于种内遗传

距离,就会形成一个明显的空白区。本研究中种内

平均遗传为距离为1.10%,种间平均遗传距离为

14.25%

区。遗传距离阈值是指物种在能形成空白区的前提

,后者大约是前者的12.95倍,形成了空白

下,使用物种种间遗传距离与参比的遗传距离阈值

进行对比,当种间遗传距离大于参比的阈值,则可以

将物种区分为不同物种。阈值法在DNA条形码的

物种鉴定中起着不可替代的作用,然而随着DNA条

形码的研究不断出现,有学者发现不同物种DNA条

形码的阈值各不相同,没有一个统一的标准阈

[29]

。BOLD数据库最初将遗传距离1%作为生物

物种的划分阈值,由于其阈值宽泛,在一定程度上造

成了物种的鉴别过度,导致同种异名的出现,为了不

使物种混乱,近年来BOLD系统默认鉴别阈值为

3%

[30]

;Meier等

[31]

在对449个双翅目昆虫物种的研

究中,发现在物种划分时,其遗传距离大于3%;He⁃

bert等

[5]

以3%作为阈值对200个鳞翅目昆虫物种

进行鉴别;蜉蝣目

[32-34]

、襀翅目和毛翅目

[35,36]

的物种

以2%的阈值就能将物种区分开。本试验研究的物

种隶属于双翅目,通过使用ABGD方法评估得到的

遗传距离阈值为3%~4%,与Meier等

[31]

的研究相

符,且与摇蚊亚科中其他属研究的阈值差异不大,

Song等

[15]

区分多足摇蚊属的遗传距离阈值为5%~

8%,Lin等

[14]

区分长跗摇蚊属的遗传距离阈值为

其属于摇蚊亚科中比较大的属级之一,

4%~5%。本研究是分析摇蚊属物种的DNA

属内物种的

条形码,

丰富度极高,但由于时间有限,加之中国地大物博,

从而不能完全覆盖已记录所有物种和一些隐种;为

此还需要更深入的研究,才能达到对中国地区摇蚊

属遗传距离的准确界定。

系统发育树能直观地反映物种之间的亲缘关

系,本研究采用的是邻接树法,其基于遗传距离和最

小进化原理,通过自举检验法进行聚类,并通过统计

给定树分支的可信度,得出最优树

[37]

。在邻接树

中,基于54条来自实验室的DNA条形码明显分离

出12个物种,与形态学鉴定结果一致,匹配率达

92.3%

条DNA

;通过结合

条形码,分离出

BOID和

50

Genbank

个形态种,

数据库中的

其中发现本试

695

验数据Chironomuspseudothummi与参比数据Chi⁃

11聚为一支(图4),由于数据库中参

比数据11不能提供证据标本与本

研究比较,将基于本研究的数据将参比数据Chi⁃

11修改为Chironomuspseudothummi,

并将相关信息上传至BOLD数据库。

0.005

88

11

11|B|OUG07603-H11|KM967408

99

11|B|OUG08857-B05|KM909600

Chironomuspseudothummi|CH325|

11|CH-OSF86|

99

11|Finnmark434|JN265051

11|Finnmark578|JF870939

11|Finnmark725|JN265114

11|TRD-CH299|

11|TRD-CH378|

99

Chironomuspseudothummi|CH-OSF190|JN265016

Chironomuspseudothummi|CH-OSF36

12

图4Chironomuspseudothummi类群邻接树

4结论

本研究通过采集中国地区的摇蚊属昆虫12种

54

据,

个样本,

共计749

结合

条DNA

BOID

条形码,

和Genbank

运用

数据库中的相关数

ABDG法分析该数

据集遗传距离,结果显示种内与种间存在一个明显

的空白区;基于邻接树结果得出数据集分离出50个

物种,与传统形态学鉴定一致,匹配率高达92.3%,

并修正数据库中11为Chironomus

pseudothummi,证明DNA条形码能有效鉴别摇蚊属

昆虫。本研究的数据均已上传中国DNA条形码数

据库,在丰富中国摇蚊科数据库的同时,也为探索

DNA

础数据。

条形码在摇蚊昆虫中鉴别的有效性提供了基

参考文献:

1]MACHADONG,NASSARDENDCS,DOSSANTOSF,⁃

ronomuslarvae(Chironomidae:Diptera)aswaterqualityindicators

along

Ambiente

anenvironmentalgradientinaneotropicalurbanstream[J].

2015,10:298-309.

&agua-aninterdisciplinaryjournalofappliedscience,

2]王俊才,王新华.中国北方摇蚊虫[M].北京:中国言实出版社,2011.

3]edchecklistofChironomidaefromChina(Dip⁃

tera

ronomidae

).In:

Hoffrichter

A].Ananthology

O(Eds)

from

,Late

13th

20th

international

CenturyResearch

symposium

onChi⁃

on

Chironomidae[C].Achen:ShakerVerlag,2000.629-652.

4]HEBERTPDN,RATNASINGHAMS,⁃

ing

closely

animal

related

life:

species

Cytochrome

[J].Proceedings

oxidasesubunit

ofthe

1

royal

divergences

societyof

among

lon⁃

148

湖北农

[5]

don

HEBERT

series

P

biological

DN,CYWINSKA

sciences,2003

A,BALL

,270:

S

96-99.

L,icaliden⁃

tifications

ence,2003

through

,270:313-321.

DNAbarcodes[J].Proceedingsbiolologicalsci⁃

[6]PECNIKARZF,BUZANEV.20yearssincetheintroductionof

DNA

2014,

barcoding

55:4-52.

:fromtheorytoapplication[J].JApplGenet,

[7]BAKERCC,BITTLESTONLS,SANDERsJG,ting

host-associated

ofthe

communities

royalsociety

with

B:

DNA

Biological

barcodes

sciences

[J].

Philosophical

20150328.

transactions2016,371:

[8LITTLEFAIRJE,ingthefoodchain:From

sanger

946-958.

tohigh-throughputsequencing[J].Genome,2016,59:

[9]ROSLINT,ofDNAbarcodesinfoodweb

construction

2016,59:603-628.

-terrestrialandaquaticecologistsunite[J].Genome,

[10]ASHFAQM,codesforbio-surveillance:

Regulated

Genome,2016

and

economically

59:933-945.

importantarthropodplantpests[J].

[11]HODGETTSJ,OSTOJÁ-STARZEWSKIJC,PRIORT,etal.

DNA

protection

barcoding

program

for

[J

biosecurity

].Genome

,2016

Case

studies

59:1033-1048.

fromtheUKplant

[12]BRODINY,EJDUNGG,STRANDBERGJ,ingen⁃

vironmental

DNAbarcoding

and

of

biodiversity

Chironomidae

monitoring

(Diptera)

in

[J

the

].Molecular

BalticSea

ecology

using

[13]

resources

CAREW

M

2013

E,

PETTIGROVE

13:996-1004.

VJ,METZELINGL,⁃

ronmental

identification

monitoringusingnextgenerationsequencing:Rapid

tiersin

X

zoology

of

L,STUR

,2013

macroinvertebrate

E,EKREM

,10:45.

bioindicatorspecies[J].Fron⁃

[14]inggeneticdivergenceina

species-rich

One,2015,10

insect

:e0138993.

genususing2790DNAbarcodes[J].Plos

[15]SONGC,LINXL,WANGQ,codessuccessfully

delimit

cascripta

morphospecies

,2018,47:311-324.

inasuperdiverseinsectgenus[J].Zoologi⁃

[16]FOLMERO,BLACKM,HOEHW,mersforampli⁃

fication

verse

ofmitochondrialcytochromecoxidasesubunitI

[17]

biotechnology

metazoan

LINXL,YU

H

1994

invertebrates

J,ZHANG

,5:294-299.

[J].Molecularmarinebiology

from

and

di⁃

RL,dilum(Cerobregma)

heberti

Yunnan

sp.

,China

n.(

Diptera

J].Zootaxa

:Chironomidae

,2019,4571

)from

:255-262.

GaoligongMountains,

[18]PUILLANDREN,LAMBERTA,BROUILLETS,,

automatic

Molecular

barcode

ecology,

gap

2012

discovery

,21:1864-1877.

forprimaryspeciesdelimitation[J].

[19]SONGC,WANGQ,ZHANGRL,ingtheutilityof

DNA

non-biting

barcoding

midges

inspecies

(Diptera

delimitation

:Chironomidae

ofPolypedilum

)[J].Zootaxa

(Tripodura

,2016

20]

4079

KONDO

:534-550.

[NI,UENOR,OHBAYASHIK,coding

supports

Chironomidae

reclassification

)[J].Entomological

ofJapanese

science

Chironomus

,2016,

species

19:337-350.

(Diptera:

业科学

2021年

[21]杨倩倩,刘苏汶,俞晓平.DNA条形码分析方法研究进展[J].

应用生态学报,2018,29(3):1006-1014.

[22]SONGC,LIUWB,ZHANGRL,andromorphic

species

withDNA

of

barcodes

Polypedilum

from

Kieffer

Oriental

,1912

China

Diptera

J].

:Chironomidae),

[23]

gist

SONG

,2017

C,

WANG

93:95-104.

Pan-Pacificentomolo⁃

Q,SUNBJ,aKieffer,1924(Dip⁃

tera

Pacific

:Chironomidae

entomologist

a

2017

newly

,93

recorded

:218-225.

genusfromChina[J].Pan-

[24]QIX,WANGXH,ANDERSENT,eciesofManoa

Fittkau

National

(Diptera

Park,Oriental

:Chironomidae

China[J

.Zootaxa

withDNA

,2017

barcodes

,4231

from

:398-408.

Xianju

[25]GIŁKAW,PAASIVIRTAL,GADAWSKIP,logy

and

Chironomidae

molecules

say

[J]

.

Tanytarsus

Zootaxa,2018

latens

4471

.

:569-579.

fromFinland(Diptera:

[26]MAKARCHENKOEA,MAKARCHENKOMA,SEMENCHEN⁃

KO

Chaetocladius

AA,etal.

(Chaetocladius

Morphological

description

elisabethaesp.

and

nov.

DNA

(Diptera

barcoding

:Chi⁃

of

ronomidae

2018,4403

Orthocladiinae

378-388.

)fromtheMoscowRegion[J].Zootaxa,

[27]LINXL,STURE,codesandmorphologyre⁃

veal

systematics

unrecognized

&evolution

species

,2018

inChironomidae

,49:329-398.

(Diptera)[J].Insect

[28]QIX,LINXL,EKREMT,rfaceglidingspeciesof

Chironomidae:Anindependentinvasionofmarineenvironments

[29]COLLINS

anditsevolutionary

RA,CRUICKSHANK

implications[

R

J]

H.

.Zoologica

Theseven

scripta

deadly

,2018

sinsof

:1-12.

DNA

[30]

barcoding

RATNASINGHAM

[J].Molecular

S,HEBERT

ecologyresources

PDN.

BOLD

2013

,13

The

:969-975.

barcodeof

[31]MEIER

lifedata

R

system

,SHIYANG

[J].Molecular

K,VAIDYA

ecology

G

notes

,etal.

,2007

DNA

barcoding

7:355-364.

and

taxonomy

identification

indiptera

success

A

J]

tale

.Systematic

ofhighintraspecific

biology,

variabilityandlow

[32]WEBBJM,JACOBUSLM,FUNKDH,et

2006

al.A

DNA

55:715-728.

barcode

library

PLoSone

for

north

2012

American

,7:e38063.

ephemeroptera:Progressandprospects[J].

[33]ZHOUX,JACOBUSLM,DEWALTRE,roptera,

Plecoptera

insights

,andTrichopterafaunaofChurchill(

[34]

of

SCHMIDT

thenorth

into

S

American

biodiversity

,SCHMID-EGGER

benthological

patternsfrom

C,

society

DNA

MORINIÈRE

barcoding

Manitoba

2010,

J,

29

et

al.

814-837.

J]

Canada

.Journal

):

DNAbar⁃

coding

tionsfor

largely

central

supports

european

250

bees

years

(Hymenoptera

ofclassicaltaxonomy:Identifica⁃

Molecularecology

M,

resources

JANZEN

D

2015

H,

BURNS

15:985-1000.

,Apoideapartim)[J].

[35]HAJIBABAEIJM,⁃

codes

103:968-971.

distinguishspeciesoftropicallepidoptera[J].PNAS,2006,

[36]ZAHIRIR,LAFONTAINEJD,SCHMIDTBC,con⁃

tinental

species

challenge-a

of

testofDNAbarcode

Lepidoptera

performance

)[J].PLoS

for1,

one

541

2014,9:e92797.

Canadiannoctuoidea(,

[37]DUARTES,BATISTAD,BARLOCHERF,w

DNA

2015,

barcodes

56:102-108.

ofaquatichyphomycetespecies[J].Mycoscience,

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