2024年4月4日发(作者：集香天)
蔗糖是重要的光合产物，是植物体内运输的主要物质，优势碳水化合物的暂贮形式之一。
蔗糖合成酶（SS）、蔗糖磷酸合成酶（SPS）是植物体内催化蔗糖合成的两种酶。对这两种
酶活性的测定，可以了解植物组织合成蔗糖能力的高低。
【实验原理】
蔗糖合成酶催化游离果糖与葡萄糖工体UDPG反应生成蔗糖。
UDPG+果糖---蔗糖+UDP
这是一个可逆反应，平衡常数为1.3-2.0。该酶在分解方向的Km值相对较高
（30-150mmol/L），细胞中高的蔗糖浓度有利于反应向分解方向进行。蔗糖合成酶活性测定
既可在合成方向进行测定（外加底物UDPG和果糖，测产物蔗糖的量表示酶活性），也可以
在分解方向进行测定（外加蔗糖和UPD，测定果糖含量表示酶活性）。
蔗糖磷酸合成酶（SPS）催化UDPG与果糖-6-磷酸（F6P）结合形成磷酸蔗糖：
UPDG+F6P---蔗糖-6-P+UDP+H+
6-磷酸蔗糖可以经磷酸蔗糖酶（SPP）水解后形成蔗糖。实际上最近有证据证明SPS
和SPP可以在体内形成一个复合体，因此使得SPS催化的反应基本上是不可逆的。酶活性
测定是外加UDPG和F6P，测定产物蔗糖的量表示酶活性。
一般把SPS-SPP系统看作是蔗糖合成的主要途径，而把蔗糖合成酶看作是催化蔗糖分
解的。
果糖是酮糖，可与间苯二酚混合加热反应生成红色产物，在一定范围内糖的含量与反应
液颜色成正比。蔗糖在含有盐酸的间苯二酚中水解成葡萄糖和果糖，也能生成红色产物，在
480nm处可比色测定。
【实验材料】
植物茎
【仪器设备及设备】
冷冻离心机，恒温水浴，分光光度计，研钵一套，磁力搅拌器，天平（感量0.01mg），
0.1、0.5、1、5ml移液管各1个，10ml具塞试管10支，5ml量瓶一个，冰箱
【试剂药品】
1.提取缓冲液：100mmol/L Tris-HCl(PH7.0)缓冲液，内含5mmol/LMgCl
2,2mmol/LEDTA-Na 2,2%乙二醇，0.2%牛血清蛋白（BSP），2%PVP，5mmol/LDTT。
1mol/L二硫苏糖醇（DTT）溶液
【配制方法】用20ml 0.01mol/L乙酸钠溶液（pH5.2）溶解3.09g DTT，过
滤除菌后分装成1ml小份贮存于-20℃。
2.透析缓冲液：25mmol/L Tris-HCl(PH7.0)缓冲液，内含
2.5mmol/LMgCl2,1mmol/LEDTA-Na2,1%乙二醇，1mmol/LDTT。
3.酶反应液：100mmol/L Tris-HCl(PH7.0)缓冲液，内含10mmol/L果糖（10mol/L果糖
-6-磷酸代替果糖） 2mmol/LEDTA-Na2, 5mmol/L 醋酸镁，5mmol/LDTT。
5mM Tris-HCl配法：50毫升0.1M三羟甲基氨基甲烷（Tris）溶液与45.7毫升0.1M盐酸混匀后，加水
稀释至100毫升。这是pH7.1的 您要7.0的话便再加一些HCl 用pH计调到7.0。.50mM NaCl pH=7.0配法：
端直称2.92 g NaCl，加水到1 L然后用0.1 M盐酸或者0.1 M NaOH调pH到7.0
4.10mmol/LUDPG:称取0.012206gUDPG，配成2ml，浓度计为10mol/LUDPG,随配随
用。
尿苷二磷酸葡萄糖
5.2mol/LNaOH
6.30%HCl
7.0.1%间苯二酚：0.1g间苯二酚溶于100ml95%乙醇中，棕色瓶保存。
8.1mg/ml蔗糖标准液
【方法步骤】
1.酶液制备：称取1g植物叶片，置于预冷的研钵中，分批加入5ml提取缓冲液，冰浴
研磨提取，2度下10000转离心20分钟，上清液3ml装入透析袋中，透析袋置于透析缓冲液
中4度透析过夜，期间更换透析液3次，透析后酶液定容5ml备用。
2.蔗糖合成酶活性测定：取3支10ml具塞试管，加入0.4ml酶反应液，0.1mlUDPG和
0.05ml透析后的酶液，补水至1ml,于30度水浴中反应10分钟后，沸水浴3min中止反应，对
照用蒸馏水代替UDPG。
3.蔗糖含量测定：往各反应试管中加入2mol/LnaOH 0.1ml,沸水浴10min后，冷却至室
温。加30%HCl3.5ml, 0.1%间苯二酚1ml，摇匀后于80度保温10min, 冷却后480nm处比色，
测定蔗糖生成的量。
4.蔗糖磷酸合成酶反应：在酶反应液中用10mol/L果糖-6-磷酸代替果糖，其余均按蔗糖
合成酶的方法测定。
5.标准曲线制作：取7支10ml具塞试管，并按下表加入各种试剂，按上述步骤3反应并
测定其吸光度。以吸光度值为纵坐标，蔗糖含量为横坐标，绘制标准曲线，以计算反应中蔗
糖形成的数量。
管号
试剂
1
1mg/ml蔗糖标准液
（ml）
蒸馏水（ml）
蔗糖含量（mg）
A480
1.0 0.9
0 0.1
0.8
0.2
0.6
0.4
0.4
0.6
0.2
0.8
0
1.0
0 0.1
2
0.2
3
0.4
4
0.6
5
0.8
6
1.0
7
6.结果计算：蔗糖合成酶、蔗糖磷酸合成酶活力单位均为mg蔗糖/(g*FW*L)
酶活力（mg蔗糖/(g*FW*L)）=C*Vt*n/(FW*t*Vs)
式中：C是从标准曲线查得的蔗糖量（mg）；FW是样品鲜重（g）;t是反应时间（h）；
Vt是提取酶液总体积（ml）；Vs是测定时取用酶液体积（ml）；n是提取液测定中的稀释倍
数。
【注意事项】透析袋不可装满，以防止吸水涨破。
蔗糖是重要的光合产物，为植物体内运输的主要物质，又是碳水化合
物的暂贮形式之一。蔗糖合成酶（SS）、（SPS）是植物体内催化其合
成的两种酶。这两种酶在生物体内的功能有所不同。蔗糖合成酶（SS）
以游离果糖为受体，蔗糖磷酸合成酶（SPS）以果糖-6-磷酸为受体。
后者形成的蔗糖磷酸，在蔗糖磷酸合成酶的作用下形成蔗糖。一般把
蔗糖磷酸酯合成酶-蔗糖磷酸酶系统看作是蔗糖合成的主要途径，而
把蔗糖合成酶看作是蔗糖分解或形成核苷酸葡萄糖的系统。UDPG是
合成蔗糖的葡萄糖供体，故催化UDPG合成的UDPG焦磷酸化酶活力的
高低与蔗糖合成的速率有十分密切的关系。
蔗糖的合成（二条途径）：
1、蔗糖合成酶 （非光合组织）
UDPG+果糖 →蔗糖+UDP
2、磷酸蔗糖合成酶（光合组织）
UDPG+F-6-P→ 磷酸蔗糖+UDP
磷酸蔗糖+H2O→ 蔗糖+Pi
一、仪器设备
冷冻离心机、恒温水浴、分光光度计
二、试剂
HEPES-NaOH（50mmol/L，pH7.5）缓冲液，包括50mmol/L MgCI
2
；
2mmol/LEDTA；0.2%(W/V)BSA；2%PVP；
0.1%间苯二酚：称取0.1g溶解并定溶于100ml 95%乙醇中。
30%盐酸、2mol/L NaOH、100mmol/L UDPG、100mmol/L6-磷酸果糖、
100mmol/L果糖
三、操作方法
1、粗酶液制备
称取0.5g样品（植物叶片去掉主叶脉），洗净剪碎，置于预冷的研钵
中，加3ml Hepes-NaOH缓冲液，冰浴研磨，10000×g离心10min。
HEPES分子量为238.31，化学名：4-羟乙基哌嗪乙磺酸，分子式: C8H18N2O4S
2、酶活性测定
依次加入 50μL粗酶液，
50μLHepes-NaOH缓冲液pH7.5，
20μL 50 mmol/LMgCI
2
，
20μL 100mmol/L UDPG，
20μL 100mmol/L6-磷酸果糖（20μL 100mmol/L果糖），
30℃中反应30min后，加入200μL 2mol/L NaOH终止反应，沸水煮
10min，流水冷却，加入1.5ml 30%盐酸和0.5ml 0.1%间苯二酚，摇匀
后置于80℃水浴保温10min，冷却后置于480nm处，以提前杀死酶活
性为空白比色测定蔗糖含量。
同时取50μL粗酶液，加入200μL 2mol/L NaOH，以下同上操作，测
定蔗糖含量。
3、蔗糖标线制作：
取0、40、80、120、160、200μg/ml的蔗糖溶液50μL，操作同上，
然后以蔗糖浓度为纵坐标，以吸光值为横坐标，得方程。
4、计算
样品中酶活性（μg·g
﹣1
·h
﹣1
）=
式中 C—反应液催化产生的蔗糖总量（μg）；
V
1
—提取酶液时加入的缓冲液体积（ml）；
2024年4月4日发(作者：集香天)
蔗糖是重要的光合产物，是植物体内运输的主要物质，优势碳水化合物的暂贮形式之一。
蔗糖合成酶（SS）、蔗糖磷酸合成酶（SPS）是植物体内催化蔗糖合成的两种酶。对这两种
酶活性的测定，可以了解植物组织合成蔗糖能力的高低。
【实验原理】
蔗糖合成酶催化游离果糖与葡萄糖工体UDPG反应生成蔗糖。
UDPG+果糖---蔗糖+UDP
这是一个可逆反应，平衡常数为1.3-2.0。该酶在分解方向的Km值相对较高
（30-150mmol/L），细胞中高的蔗糖浓度有利于反应向分解方向进行。蔗糖合成酶活性测定
既可在合成方向进行测定（外加底物UDPG和果糖，测产物蔗糖的量表示酶活性），也可以
在分解方向进行测定（外加蔗糖和UPD，测定果糖含量表示酶活性）。
蔗糖磷酸合成酶（SPS）催化UDPG与果糖-6-磷酸（F6P）结合形成磷酸蔗糖：
UPDG+F6P---蔗糖-6-P+UDP+H+
6-磷酸蔗糖可以经磷酸蔗糖酶（SPP）水解后形成蔗糖。实际上最近有证据证明SPS
和SPP可以在体内形成一个复合体，因此使得SPS催化的反应基本上是不可逆的。酶活性
测定是外加UDPG和F6P，测定产物蔗糖的量表示酶活性。
一般把SPS-SPP系统看作是蔗糖合成的主要途径，而把蔗糖合成酶看作是催化蔗糖分
解的。
果糖是酮糖，可与间苯二酚混合加热反应生成红色产物，在一定范围内糖的含量与反应
液颜色成正比。蔗糖在含有盐酸的间苯二酚中水解成葡萄糖和果糖，也能生成红色产物，在
480nm处可比色测定。
【实验材料】
植物茎
【仪器设备及设备】
冷冻离心机，恒温水浴，分光光度计，研钵一套，磁力搅拌器，天平（感量0.01mg），
0.1、0.5、1、5ml移液管各1个，10ml具塞试管10支，5ml量瓶一个，冰箱
【试剂药品】
1.提取缓冲液：100mmol/L Tris-HCl(PH7.0)缓冲液，内含5mmol/LMgCl
2,2mmol/LEDTA-Na 2,2%乙二醇，0.2%牛血清蛋白（BSP），2%PVP，5mmol/LDTT。
1mol/L二硫苏糖醇（DTT）溶液
【配制方法】用20ml 0.01mol/L乙酸钠溶液（pH5.2）溶解3.09g DTT，过
滤除菌后分装成1ml小份贮存于-20℃。
2.透析缓冲液：25mmol/L Tris-HCl(PH7.0)缓冲液，内含
2.5mmol/LMgCl2,1mmol/LEDTA-Na2,1%乙二醇，1mmol/LDTT。
3.酶反应液：100mmol/L Tris-HCl(PH7.0)缓冲液，内含10mmol/L果糖（10mol/L果糖
-6-磷酸代替果糖） 2mmol/LEDTA-Na2, 5mmol/L 醋酸镁，5mmol/LDTT。
5mM Tris-HCl配法：50毫升0.1M三羟甲基氨基甲烷（Tris）溶液与45.7毫升0.1M盐酸混匀后，加水
稀释至100毫升。这是pH7.1的 您要7.0的话便再加一些HCl 用pH计调到7.0。.50mM NaCl pH=7.0配法：
端直称2.92 g NaCl，加水到1 L然后用0.1 M盐酸或者0.1 M NaOH调pH到7.0
4.10mmol/LUDPG:称取0.012206gUDPG，配成2ml，浓度计为10mol/LUDPG,随配随
用。
尿苷二磷酸葡萄糖
5.2mol/LNaOH
6.30%HCl
7.0.1%间苯二酚：0.1g间苯二酚溶于100ml95%乙醇中，棕色瓶保存。
8.1mg/ml蔗糖标准液
【方法步骤】
1.酶液制备：称取1g植物叶片，置于预冷的研钵中，分批加入5ml提取缓冲液，冰浴
研磨提取，2度下10000转离心20分钟，上清液3ml装入透析袋中，透析袋置于透析缓冲液
中4度透析过夜，期间更换透析液3次，透析后酶液定容5ml备用。
2.蔗糖合成酶活性测定：取3支10ml具塞试管，加入0.4ml酶反应液，0.1mlUDPG和
0.05ml透析后的酶液，补水至1ml,于30度水浴中反应10分钟后，沸水浴3min中止反应，对
照用蒸馏水代替UDPG。
3.蔗糖含量测定：往各反应试管中加入2mol/LnaOH 0.1ml,沸水浴10min后，冷却至室
温。加30%HCl3.5ml, 0.1%间苯二酚1ml，摇匀后于80度保温10min, 冷却后480nm处比色，
测定蔗糖生成的量。
4.蔗糖磷酸合成酶反应：在酶反应液中用10mol/L果糖-6-磷酸代替果糖，其余均按蔗糖
合成酶的方法测定。
5.标准曲线制作：取7支10ml具塞试管，并按下表加入各种试剂，按上述步骤3反应并
测定其吸光度。以吸光度值为纵坐标，蔗糖含量为横坐标，绘制标准曲线，以计算反应中蔗
糖形成的数量。
管号
试剂
1
1mg/ml蔗糖标准液
（ml）
蒸馏水（ml）
蔗糖含量（mg）
A480
1.0 0.9
0 0.1
0.8
0.2
0.6
0.4
0.4
0.6
0.2
0.8
0
1.0
0 0.1
2
0.2
3
0.4
4
0.6
5
0.8
6
1.0
7
6.结果计算：蔗糖合成酶、蔗糖磷酸合成酶活力单位均为mg蔗糖/(g*FW*L)
酶活力（mg蔗糖/(g*FW*L)）=C*Vt*n/(FW*t*Vs)
式中：C是从标准曲线查得的蔗糖量（mg）；FW是样品鲜重（g）;t是反应时间（h）；
Vt是提取酶液总体积（ml）；Vs是测定时取用酶液体积（ml）；n是提取液测定中的稀释倍
数。
【注意事项】透析袋不可装满，以防止吸水涨破。
蔗糖是重要的光合产物，为植物体内运输的主要物质，又是碳水化合
物的暂贮形式之一。蔗糖合成酶（SS）、（SPS）是植物体内催化其合
成的两种酶。这两种酶在生物体内的功能有所不同。蔗糖合成酶（SS）
以游离果糖为受体，蔗糖磷酸合成酶（SPS）以果糖-6-磷酸为受体。
后者形成的蔗糖磷酸，在蔗糖磷酸合成酶的作用下形成蔗糖。一般把
蔗糖磷酸酯合成酶-蔗糖磷酸酶系统看作是蔗糖合成的主要途径，而
把蔗糖合成酶看作是蔗糖分解或形成核苷酸葡萄糖的系统。UDPG是
合成蔗糖的葡萄糖供体，故催化UDPG合成的UDPG焦磷酸化酶活力的
高低与蔗糖合成的速率有十分密切的关系。
蔗糖的合成（二条途径）：
1、蔗糖合成酶 （非光合组织）
UDPG+果糖 →蔗糖+UDP
2、磷酸蔗糖合成酶（光合组织）
UDPG+F-6-P→ 磷酸蔗糖+UDP
磷酸蔗糖+H2O→ 蔗糖+Pi
一、仪器设备
冷冻离心机、恒温水浴、分光光度计
二、试剂
HEPES-NaOH（50mmol/L，pH7.5）缓冲液，包括50mmol/L MgCI
2
；
2mmol/LEDTA；0.2%(W/V)BSA；2%PVP；
0.1%间苯二酚：称取0.1g溶解并定溶于100ml 95%乙醇中。
30%盐酸、2mol/L NaOH、100mmol/L UDPG、100mmol/L6-磷酸果糖、
100mmol/L果糖
三、操作方法
1、粗酶液制备
称取0.5g样品（植物叶片去掉主叶脉），洗净剪碎，置于预冷的研钵
中，加3ml Hepes-NaOH缓冲液，冰浴研磨，10000×g离心10min。
HEPES分子量为238.31，化学名：4-羟乙基哌嗪乙磺酸，分子式: C8H18N2O4S
2、酶活性测定
依次加入 50μL粗酶液，
50μLHepes-NaOH缓冲液pH7.5，
20μL 50 mmol/LMgCI
2
，
20μL 100mmol/L UDPG，
20μL 100mmol/L6-磷酸果糖（20μL 100mmol/L果糖），
30℃中反应30min后，加入200μL 2mol/L NaOH终止反应，沸水煮
10min，流水冷却，加入1.5ml 30%盐酸和0.5ml 0.1%间苯二酚，摇匀
后置于80℃水浴保温10min，冷却后置于480nm处，以提前杀死酶活
性为空白比色测定蔗糖含量。
同时取50μL粗酶液，加入200μL 2mol/L NaOH，以下同上操作，测
定蔗糖含量。
3、蔗糖标线制作：
取0、40、80、120、160、200μg/ml的蔗糖溶液50μL，操作同上，
然后以蔗糖浓度为纵坐标，以吸光值为横坐标，得方程。
4、计算
样品中酶活性（μg·g
﹣1
·h
﹣1
）=
式中 C—反应液催化产生的蔗糖总量（μg）；
V
1
—提取酶液时加入的缓冲液体积（ml）；